验证iRFA后残留肿瘤中YAP激活
检测iRFA是否诱导YAP激活并改变其亚细胞定位。
对小鼠皮下Hepa1-6肿瘤进行iRFA处理,收集残留肿瘤组织,通过免疫组化检测核YAP表达;体外对Hepa1-6和Hep3B细胞进行不同温度处理,通过免疫荧光和Western blot检测YAP核转位和磷酸化水平,并通过RT-qPCR检测下游靶基因表达。
Verteporfin-loaded hydrogel targeting YAP-mediated MDSCs recruitment for the treatment of residual tumors after incomplete radiofrequency ablation.
包含体外细胞实验(热应激、YAP敲低)、动物模型(皮下HCC iRFA模型)、流式细胞术、水凝胶表征与体内治疗实验等多个独立证据层级,并进行功能与机制验证。
Hepa1-6小鼠肝癌细胞系 Hep3B人肝癌细胞系 C57BL/6小鼠皮下Hepa1-6肝癌模型 不完全射频消融(iRFA)残留瘤模型
YAP在iRFA残留肿瘤中的激活状态及核转位 MDSCs相关趋化因子(CXCL1、CXCL2、CXCL5、CXCL17、CCL2)的表达变化 VP对YAP核转位及趋化因子表达的抑制效果 QCS/TA@VP水凝胶的缓释特性(释放时间、pH影响) QCS/TA@VP治疗显著减少MDSCs浸润并增加CD8+ T细胞
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
检测iRFA是否诱导YAP激活并改变其亚细胞定位。
对小鼠皮下Hepa1-6肿瘤进行iRFA处理,收集残留肿瘤组织,通过免疫组化检测核YAP表达;体外对Hepa1-6和Hep3B细胞进行不同温度处理,通过免疫荧光和Western blot检测YAP核转位和磷酸化水平,并通过RT-qPCR检测下游靶基因表达。
评估iRFA是否促进MDSCs浸润和CD8+ T细胞减少。
建立皮下HCC模型并进行iRFA处理,治疗7天后取材,通过流式细胞术分析肿瘤中MDSCs(CD11b+Gr1+)、CD8+ T细胞和GzmB+CTL的比例。
探究热应激是否通过YAP上调MDSCs相关趋化因子。
对Hepa1-6和Hep3B细胞进行热应激处理,通过RT-qPCR检测CXCL1、CXCL2、CXCL5、CXCL17和CCL2 mRNA表达;并利用YAP敲低细胞或VP处理进一步验证趋化因子表达的YAP依赖性。
确认VP是否能抑制热应激诱导的YAP核转位和下游基因表达。
对Hepa1-6和Hep3B细胞进行热应激并加入VP处理,通过免疫荧光检测YAP核定位,Western blot检测总YAP和p-YAP水平,RT-qPCR检测CYR61、CTGF及趋化因子表达。
开发一种能够局部持续释放VP的可注射水凝胶,并评估其理化性质。
将QCS和TA溶解后混合形成水凝胶,负载VP;通过SEM观察微观结构,FTIR分析相互作用,流变学测试剪切变稀和自修复性能,压缩和拉伸测试力学性能,药物释放实验测定VP释放曲线,并通过ICG标记的荧光成像监测体内滞留。
验证QCS/TA@VP水凝胶作为iRFA辅助治疗能否抑制残留肿瘤生长并激活抗肿瘤免疫。
在iRFA模型中,将PBS、空白水凝胶、游离VP或QCS/TA@VP注入消融腔,监测肿瘤生长曲线,终点分析肿瘤体积和重量,通过流式分析MDSCs和CD8+T细胞比例,Kaplan-Meier生存分析,并进行H&E和免疫组化评估Treg和免疫浸润。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | 维替泊芬 | Selleck Chemicals | S1786 |
| Western blot | 抗YAP抗体 | Cell Signaling Technology | 14074S |
| 抗磷酸化YAP抗体 | Cell Signaling Technology | 13008T | |
| 免疫荧光 | Alexa Fluor® 488标记的山羊抗兔IgG | Abcam | ab150077 |
| 水凝胶制备 | 季铵化壳聚糖 | Shanghai Yuanye Biotechnology Co., Ltd. | S24030 |
| 单宁酸 | Aladdin | T308008 | |
| 细胞培养 | 杜氏改良Eagle培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | MIKX | MK1123 | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| RNA提取 | RNAiso Plus试剂 | Vazyme Biotech | -- |
| cDNA合成 | HiScript III逆转录试剂盒 | Vazyme Biotech | -- |
| qPCR | ChamQ通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme Biotech | -- |
| CFX96 Touch™实时荧光定量PCR系统 | Bio-Rad Laboratories | -- | |
| Western blot | 硝酸纤维素膜 | Pall | -- |
| iBright™ CL750成像系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 免疫荧光(封闭) | 山羊血清 | Boster Biological Technology | AR1009 |
| Triton X-100 | -- | -- | |
| 免疫荧光成像 | Zeiss LSM 880共聚焦激光扫描显微镜 | -- | -- |
| 流式分析 | 抗CD16/32抗体 | Elabscience | E-AB-F0997A |
| Percp/Cy5.5-抗CD45 | BioLegend | 103132 | |
| FITC-抗CD11b | BioLegend | 101205 | |
| PE/Cy7-抗Gr-1 | BioLegend | 108415 | |
| BV421-抗F4/80 | BioLegend | 123137 | |
| BV605-抗CD86 | BioLegend | 105037 | |
| PE/Cy7-抗CD206 | BioLegend | 141719 | |
| APC/Cy7-抗CD3 | BioLegend | 100222 | |
| BV605-抗CD4 | BioLegend | 100451 | |
| FITC-抗CD8 | BioLegend | 553030 | |
| PE-抗颗粒酶B | BioLegend | 372207 | |
| CytoFLEX LX流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- | |
| 体内成像 | 吲哚菁绿 | -- | -- |
| 组织学染色 | Masson三色染色 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源(Hepa1-6和Hep3B)、培养条件(DMEM+10% FBS+1%青霉素-链霉素,37°C,5% CO2) 阅读提示:Methods: Cell lines and animals |
| 热应激处理 | 处理温度(37、42、44、46°C)及处理时间(文中未明确说明) 阅读提示:Results: Activation of YAP in residual tumor after iRFA, Figure 2C |
| YAP敲低 | shRNA序列(三个shRNAs)、敲低效率(YAP-sh2约79%)、筛选药物(嘌呤霉素2 μg/mL) 阅读提示:Methods: Establishment of Yap1 knockout Hepa1-6 cell line |
| iRFA动物模型 | 小鼠品系(C57BL/6雌性,4-6周龄)、肿瘤细胞接种量(1×10⁶)、肿瘤起始体积(约300 mm³)、iRFA操作及残余存活确认 阅读提示:Methods: In vivo experiment, Results: Activation of YAP in residual tumor after iRFA |
| 水凝胶制备与给药 | QCS/TA浓度(4% w/v,体积比2:3)、VP载荷(3 mg/mL)、注射体积(100 μL)、VP剂量(100 mg/kg)、给药途径(瘤内注射到消融腔) 阅读提示:Methods: Preparation of hydrogel, In vivo experiment |
| 流式分析 | 取样时间点(第7天)、单细胞悬液制备方法、抗体克隆号及荧光标记、每个样本获取CD45+事件数(1×10⁴)、分析细胞亚群(MDSCs、CD8+T、GzmB+CTL等) 阅读提示:Methods: Flow cytometry analysis, Figure S4 |
| 药物释放实验 | 释放介质(PBS含140 mM NaCl,pH 7.4和6.5)、温度(37°C)、取样时间点(文中未明确列出所有时间点)、UV-Vis检测波长(430 nm) 阅读提示:Methods: Drug release tests, Results: Preparation and characterization of QCS/TA@VP hydrogel |