α7nAChR参与瑞芬太尼预处理对缺血/再灌注大鼠肝脏保护作用的研究

Involvement of α7nAChR in the hepatic-protective effect of remifentanil preconditioning in ischemia/reperfusion rats.

作者信息Chaoxiong Zhou, Yuan Ma, Da Qiu, Qianjin He, Qinshu Xiao, Yaohua Wu, Quanshui Hao, Huaping Wang
PMID41466476
期刊Hereditas
发布时间2025-12-29
DOI10.1186/s41065-025-00601-6

实验完整度

包含体内大鼠肝I/R模型和体外BRL-3A细胞H/R模型,结合α7nAChR拮抗剂和shRNA敲低的功能缺失验证,以及组织学和分子检测。

主要模型

大鼠肝缺血再灌注(I/R)模型 BRL-3A大鼠正常肝细胞 BRL-3A细胞缺氧/复氧(H/R)模型

重点核对

遗传背景:Sprague-Dawley雄性大鼠,8-9周龄,体重250-280g 缺血时间:45分钟;再灌注时间:120分钟 瑞芬太尼剂量:0.4、2、10 μg/kg/min静脉输注15分钟 α7nAChR拮抗剂MLA:5 mg/kg静脉注射 BRL-3A细胞H/R处理:缺氧6小时(1% O2)复氧6小时

摘要

肝缺血再灌注(I/R)损伤是肝移植和肝切除等肝脏手术中不可避免的过程,严重损害术后肝功能。近年研究表明,瑞芬太尼等麻醉药具有肝脏保护作用。然而,瑞芬太尼保护作用的确切机制仍不清楚。本研究成功建立了大鼠肝I/R损伤模型和肝细胞BRL-3A缺氧/复氧(H/R)模型,并给予瑞芬太尼预处理(RPC)。采用生化检测测定肝功能酶活性,通过HE染色和TUNEL染色评估肝损伤程度。通过CCK-8法和流式细胞术分别测定BRL-3A细胞的存活率和凋亡率。使用ELISA定量促炎细胞因子水平。采用qRT-PCR和Western blotting评估α7烟碱型乙酰胆碱受体(α7nAChR)的表达和NF-κB的磷酸化。进行α7nAChR的功能缺失实验,以进一步阐明瑞芬太尼保护肝脏免受I/R损伤的潜在分子机制。结果表明,RPC显著减轻了I/R大鼠的肝功能障碍,减少了肝细胞坏死和凋亡,并抑制了炎症。此外,RPC保护BRL-3A细胞免受H/R诱导的损伤和炎症。值得注意的是,RPC上调了I/R肝组织和H/R暴露的BRL-3A细胞中α7nAChR的表达,同时抑制NF-κB磷酸化。然而,给予α7nAChR拮抗剂或敲低α7nAChR后,RPC对肝I/R损伤和H/R诱导的BRL-3A细胞损伤的保护作用被消除。综上所述,这些数据揭示了瑞芬太尼肝保护作用的新机制,即瑞芬太尼通过上调α7nAChR抑制NF-κB活化介导的炎症来减轻肝I/R损伤。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
瑞芬太尼预处理是否通过调节α7nAChR抑制NF-κB介导的炎症从而减轻肝缺血/再灌注损伤?
核心机制
瑞芬太尼通过上调α7nAChR表达,抑制NF-κB p65磷酸化,减少促炎细胞因子释放,从而减轻肝I/R损伤。
主要证据
体内大鼠肝I/R模型和体外BRL-3A H/R模型中,RPC上调α7nAChR表达并抑制NF-κB磷酸化;α7nAChR拮抗剂MLA或shRNA敲低α7nAChR部分逆转了RPC的保护作用。
研究意义
该发现为瑞芬太尼在肝切除和肝移植等肝脏手术中的临床应用提供了理论依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立动物模型

构建肝I/R损伤大鼠模型以评估瑞芬太尼的保护作用

雄性SD大鼠禁食16小时,麻醉后开腹,用无损伤血管夹夹闭肝中叶和左叶的血管蒂,缺血45分钟后恢复血流再灌注120分钟,建立肝I/R模型。

2

瑞芬太尼预处理

评估不同剂量瑞芬太尼预处理对肝I/R损伤的影响

在肝I/R术前25分钟开始,以0.4、2、10 μg/kg/min剂量静脉输注瑞芬太尼15分钟,随后停药10分钟。

3

检测肝功能与炎症指标

评估肝损伤程度和炎症反应

收集血清和肝组织,通过生化检测测定ALT和AST活性,ELISA检测IL-1β、IL-6、TNF-α水平,HE染色和TUNEL染色评估组织病理学和细胞凋亡。

4

α7nAChR表达分析

检测I/R损伤和瑞芬太尼预处理对α7nAChR表达的影响

采用qRT-PCR和Western blotting检测肝组织中α7nAChR的mRNA和蛋白表达水平。

5

α7nAChR拮抗剂干预

验证α7nAChR在RPC保护肝I/R损伤中的作用

在瑞芬太尼处理前5分钟静脉注射α7nAChR拮抗剂MLA(5 mg/kg),然后进行后续检测。

6

建立体外H/R模型

模拟体内I/R条件以研究细胞水平机制

BRL-3A细胞以1×10^5/孔接种于6孔板,24小时后,在缺氧条件(1% O2, 5% CO2, 94% N2)下培养6小时,然后转入正常培养基中在常氧条件下培养6小时,建立H/R模型。

7

瑞芬太尼预处理细胞

评估瑞芬太尼预处理对H/R诱导细胞损伤的保护作用

在H/R暴露前,用不同浓度瑞芬太尼(0.1、1、10、100 ng/mL)预处理BRL-3A细胞60分钟。

8

细胞功能检测

评估细胞活力、凋亡和损伤

使用CCK-8测定细胞活力,流式细胞术检测凋亡率,生化方法检测培养上清中LDH活性,ELISA检测炎症因子分泌。

9

α7nAChR基因敲低

验证α7nAChR在瑞芬太尼保护作用中的必要性

设计三条shRNA靶向α7nAChR,包装成慢病毒感染BRL-3A细胞(MOI=30),筛选干扰效率最高的shRNA,然后进行后续功能实验。

10

机制验证

确定α7nAChR表达与NF-κB信号通路的关系

Western blotting检测α7nAChR、NF-κB p65和p-NF-κB p65的蛋白水平,验证下游信号通路。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

检测细胞活力和凋亡
细胞功能缺失实验

产品清单

实验环节名称品牌货号
甲基牛扁亭碱(MLA)MedChemExpress--
TUNEL反应液Servicebio--
最低必需培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素溶液Cellverse--
聚凝胺----
CCK-8溶液Beyotime--
Annexin V-FITCBeyotime--
碘化丙啶(PI)染色液Beyotime--
ELISA试剂盒Elabscience--
LDH、ALT和AST检测试剂盒Nanjing Jiancheng--
TRIzol试剂Invitrogen--
第一链cDNA合成试剂盒ELK Biotechnology--
SYBR Green PCR预混液ELK Biotechnology--
RIPA裂解液Thermo Scientific--
α7nAChR抗体Santa Cruz Biotechnology--
NF-κB p65抗体Cell Signaling Technology--
磷酸化NF-κB p65 (Ser536)抗体Cell Signaling Technology--
GAPDH抗体Abcam--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
动物品系:SD大鼠,雄性,8-9周龄,250-280g;禁食时间:16小时;麻醉:2%戊巴比妥钠(50 mg/kg);缺血时间:45分钟;再灌注时间:120分钟;样本量:n=8
阅读提示:Materials and methods: Animals, Hepatic I/R injury in vivo
瑞芬太尼预处理
瑞芬太尼剂量:0.4、2、10 μg/kg/min;输注时间:15分钟;停药时间:10分钟;给药时机:术前25分钟开始
阅读提示:Materials and methods: Hepatic I/R injury in vivo, Results: Fig.1 legend
α7nAChR拮抗剂干预
MLA剂量:5 mg/kg;给药时间:瑞芬太尼处理前5分钟
阅读提示:Materials and methods: Hepatic I/R injury in vivo, Results: Fig.3 legend
体外H/R模型
细胞密度:1×10^5/孔(6孔板);缺氧条件:1% O2, 5% CO2, 94% N2;缺氧时间:6小时;复氧时间:6小时
阅读提示:Materials and methods: Hepatocyte hypoxia-reoxygenation (H/R) injury model in vitro
瑞芬太尼细胞预处理
瑞芬太尼浓度:0.1、1、10、100 ng/mL;预处理时间:60分钟;后续使用浓度:10 ng/mL
阅读提示:Materials and methods: CCK-8 assay, Results: Fig.4 legend
α7nAChR基因敲低
shRNA序列:sh-α7nAChR-3#;MOI:30;感染后检测时间:48小时;Polybrene存在
阅读提示:Materials and methods: Cell culture and infection, Results: Fig.4C-D legend