GPX4抑制增强Tempol在结肠癌和胃癌细胞系中的促氧化和内质网应激效应

GPX4 Inhibition Enhances the Pro-Oxidant and ER Stress Effects of Tempol in Colon and Gastric Cancer Cell Lines.

作者信息Gorkem Ozdemir, Halil Mahir Kaplan
PMID41150804
发布时间2025-10-16
DOI10.3390/cimb47100856

实验完整度

包含体外细胞实验,测定细胞活力、氧化应激标志物和ER应激蛋白,并使用Bliss分析评估协同作用,但缺少动物实验和机制验证(如脂质过氧化、铁死亡标志物)。

主要模型

人结肠癌细胞系HT29 人胃腺癌细胞系CRL-1739

重点核对

细胞系:HT29和CRL-1739 处理浓度:Tempol 2 mM,ML210 0.05 μM 处理时间:48小时 检测指标:细胞活力、H2O2、TOS、TAS、ER应激蛋白(ATF6、GRP78、IRE1α) 统计分析:Bliss独立性分析

摘要

Tempol,一种合成的氮氧化物,表现出双重抗氧化和促氧化活性,需要毫摩尔浓度才能诱导氧化应激,这限制了其治疗用途。谷胱甘肽过氧化物酶4(GPX4)是一种关键的脂质过氧化物酶,可防止铁死亡,其抑制已被作为使癌细胞对氧化应激敏感的策略。为了增强Tempol的功效,我们研究了其与人结肠癌(HT29)和胃癌(CRL-1739)细胞系中GPX4抑制剂ML210的相互作用。我们在体外实验中量化了细胞活力、氧化应激标志物(H2O2、总氧化状态(TOS)和总抗氧化状态(TAS))以及内质网(ER)应激蛋白(ATF6、GRP78和IRE1α)。使用Bliss独立性分析评估协同作用。Tempol(2 mM)和ML210(0.05 μM)的组合显著降低了两种细胞系的活力。Bliss分析显示细胞毒性具有轻微/中度协同作用(HT29中Δ = +0.15;CRL-1739中Δ = +0.26),H2O2积累具有强协同作用(多个重复中Δ = +1.92–2.23)。相反,TOS在两种细胞系中均表现出中度至强拮抗作用,TAS表现出轻微协同或拮抗作用。ER应激标志物表现出标志物和细胞系特异性协同作用:ATF6显示强协同作用,IRE1α在两种细胞系中均显示轻微协同作用,GRP78激活高度可变,在CRL-1739细胞中显示强协同作用,但在HT29细胞中显示中度拮抗作用。这些发现表明Tempol和ML210的协同作用是ROS池特异性和ER通路选择性的。这些发现表明ML210通过靶向GPX4增强Tempol的促氧化压力,选择性放大H2O2积累和ER应激参与,而不会破坏整体氧化还原平衡。本研究为胃和结肠癌中的氧化还原-蛋白质稳态共靶向提供了机制依据,并为体内验证奠定了基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Tempol与GPX4抑制剂ML210联合使用是否能在结肠癌和胃癌细胞系中协同增强氧化应激和内质网应激,从而增强细胞毒性?
核心机制
ML210通过抑制GPX4,增强Tempol的促氧化压力,选择性放大H2O2积累和内质网应激参与(特别是ATF6通路),而不崩溃整体氧化还原平衡。
主要证据
在HT29和CRL-1739细胞中,联合处理显著降低细胞活力(近50%),Bliss分析显示H2O2强协同(Δ = +1.92–2.23),ATF6强协同(Δ = +0.86–1.38),而TOS和TAS无协同或拮抗。
研究意义
为结肠癌和胃癌中的氧化还原-蛋白质稳态共靶向提供了机制依据,并建立了体内验证的基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

剂量-反应和单药活性测定

确定Tempol和ML210在两种细胞系中的半数抑制浓度(IC50)及单药细胞毒性。

使用MTT法测定不同浓度Tempol和ML210处理48小时后的细胞活力,并通过非线性回归计算IC50。

2

联合细胞毒性和Bliss协同分析

评估Tempol和ML210联合处理对细胞活力的影响,并确定协同作用。

以Tempol(2 mM)和ML210(0.05 μM)联合处理细胞48小时,测定细胞活力,并使用Bliss独立性分析计算协同指数Δ。

3

氧化应激标志物检测

测定联合处理对细胞内H2O2、总氧化状态(TOS)和总抗氧化状态(TAS)的影响,以评估氧化应激的ROS池特异性。

使用试剂盒分别量化细胞内H2O2水平、TOS和TAS,并对结果进行Bliss独立性分析。

4

内质网应激标志物检测

评估联合处理对内质网应激蛋白(ATF6、GRP78、IRE1α)表达的影响,并分析协同作用。

使用ELISA试剂盒量化ATF6、GRP78和IRE1α的蛋白水平,并进行Bliss独立性分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
McCoy's 5A培养基Sigma-Aldrich--
F-12培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素Sigma-Aldrich--
链霉素Sigma-Aldrich--
TempolSigma-Aldrich--
ML210Sigma-Aldrich--
二甲基亚砜Sigma-Aldrich--
RIPA裂解液Sigma-Aldrich--
钒酸钠----
蛋白酶抑制剂混合物----
Bradford染料试剂Bio-Rad Laboratories--
牛血清白蛋白----
MTT细胞增殖与细胞毒性检测试剂盒ElabscienceE-CK-A341
过氧化氢检测试剂盒Abcamab102500
总氧化状态检测试剂盒Rel Assay Diagnostics--
总抗氧化状态检测试剂盒Rel Assay Diagnostics--
IRE1α ELISA试剂盒Novus BiologicalsNBP3-49699
GRP78 ELISA试剂盒Novus BiologicalsNBP2-62145
ATF6 ELISA试剂盒Novus BiologicalsNBP2-69885
酶标仪EL800BioTek InstrumentsEL800
GraphPad PrismGraphPad Software--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源(ATCC)、培养基(McCoy's 5A、F-12)、血清浓度(10%)、抗生素浓度(100 μg/mL链霉素、100 U/mL青霉素)、培养条件(37°C、5% CO2)、传代周期(4-5天)、细胞代数(3-15,CRL-1739为5-12)
阅读提示:Methods中的Cell Culture小节
药物处理
药物浓度(Tempol 2 mM、ML210 0.05 μM)、溶剂(DMSO)、处理时间(48小时)、对照组(新鲜培养基)
阅读提示:Methods中的Cell Culture和Cell Viability and IC50 Determination小节
细胞活力检测
细胞接种密度(1 × 10^4 cells/well)、处理时间(48小时)、MTT试剂盒(Elabscience,cat# E-CK-A341)、检测波长(570 nm)
阅读提示:Methods中的Cell Viability and IC50 Determination小节
氧化应激标志物检测
H2O2试剂盒(Abcam,cat# ab102500)、TOS和TAS试剂盒(Rel Assay Diagnostics)、检测波长(H2O2未明确,TOS/TAS为660 nm)、重复数(H2O2未明确,TOS/TAS为6次独立重复)
阅读提示:Methods中的Quantification of Oxidative Stress Markers小节
ER应激标志物检测
ELISA试剂盒(Novus Biologicals,ATF6 cat# NBP2-69885,GRP78 cat# NBP2-62145,IRE1α cat# NBP3-49699)、重复数(6次独立重复)
阅读提示:Methods中的Quantification of ER Stress Markers (ELISA)小节