转录组数据获取与差异表达基因筛选
识别与SCHA抗炎作用相关的差异表达基因。
从GEO数据库获取GSE181614和GSE205795转录组数据集,使用R limma包进行数据预处理和差异表达分析,筛选|fold change|>1.5且调整后P<0.05的DEGs,并取两个数据集共有的DEGs作为SCHA相关基因。
Illuminating the therapeutic potential of Schisandrin a against rheumatoid arthritis by targeting ferroptosis: An integrated bioinformatics and experimental study.
包含转录组生物信息学分析、分子对接与动力学模拟、细胞功能实验(CCK-8、ELISA、qPCR、Western blot)、铁死亡标志物检测和透射电镜形态学验证等多个独立证据层级,并包含功能与机制验证。
MH7A人成纤维样滑膜细胞系 LPS诱导的MH7A炎症细胞模型
SCHA处理浓度:60、120、240 μM LPS刺激浓度和时间:10 μg/ml,6 h SCHA处理时间:24 h 内参基因GAPDH用于qPCR和Western blot 统计学方法:one-way ANOVA和Dunnett's多重比较检验
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
识别与SCHA抗炎作用相关的差异表达基因。
从GEO数据库获取GSE181614和GSE205795转录组数据集,使用R limma包进行数据预处理和差异表达分析,筛选|fold change|>1.5且调整后P<0.05的DEGs,并取两个数据集共有的DEGs作为SCHA相关基因。
揭示共有DEGs参与的主要生物学功能和通路,特别是铁死亡通路。
使用Metascape对共有DEGs进行GO和通路富集分析,并利用R GSEA包进行基因集富集分析,评估铁死亡基因集在不同样本组中的富集方向。
预测蛋白-蛋白相互作用并识别关键枢纽基因。
使用String数据库预测共有DEGs的蛋白互作,导入Cytoscape可视化,计算节点度数和聚类系数,结合网络密度和中心性分析鉴定关键节点。
预测SCHA与铁死亡相关蛋白TXNRD1、LPCAT3和SLC7A11的结合模式和亲和力。
使用AutoDock Vina进行分子对接,SCHA结构来自PubChem,蛋白结构来自AlphaFold或PDB晶体结构,对TXNRD1和SLC7A11限定已知结合位点,对LPCAT3全蛋白对接,共进行100次独立对接,选择最低结合自由能构象进行分析。
评估SCHA-蛋白复合物的动态稳定性。
使用GROMACS 2020.4对最佳对接构象进行100ns分子动力学模拟,分析RMSD、RMSF、Rg、SASA、氢键和相互作用能,并进行主成分分析(PCA)评估构象变化。
建立LPS诱导的RA FLS炎症细胞模型,用于后续药效评估。
培养人FLS细胞系MH7A,使用10 μg/ml LPS刺激6小时建立炎症模型。
评估SCHA对正常和LPS诱导的MH7A细胞的细胞毒性及保护作用。
使用CCK-8试剂盒检测不同浓度SCHA处理24小时后细胞活力。
验证SCHA对LPS诱导的促炎细胞因子表达的抑制作用。
收集细胞培养上清,使用ELISA试剂盒检测IL-6、TNF-α和IL-1β蛋白水平;提取总RNA,通过qPCR检测mRNA水平。
评估SCHA对LPS诱导的铁死亡相关生化指标及线粒体超微结构的影响。
收集细胞裂解液,检测GSH-Px、MDA、SOD、Fe2+水平;使用DCFH-DA探针通过流式细胞术检测ROS;使用透射电子显微镜观察线粒体形态。
验证SCHA对铁死亡关键基因TXNRD1、LPCAT3和SLC7A11表达的影响。
提取RNA进行qPCR检测mRNA表达;提取总蛋白进行Western blot分析蛋白水平表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | -- | |
| 炎症模型建立 | 脂多糖 | Sigma-Aldrich | -- |
| 药物处理 | 五味子甲素 | Sigma-Aldrich | -- |
| 阳性对照 | Erastin | Sigma-Aldrich | -- |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Dojindo | -- |
| 细胞因子检测 | IL-6 ELISA试剂盒 | Elabscience | -- |
| TNF-α ELISA试剂盒 | Elabscience | -- | |
| IL-1β ELISA试剂盒 | Elabscience | -- | |
| 氧化应激检测 | 谷胱甘肽过氧化物酶检测试剂盒 | Solarbio | -- |
| 丙二醛检测试剂盒 | Solarbio | -- | |
| 超氧化物歧化酶检测试剂盒 | Solarbio | -- | |
| 亚铁离子检测试剂盒 | Solarbio | -- | |
| ROS检测 | DCFH-DA探针 | Solarbio | CA1410 |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| RNA定量 | NanoDrop分光光度计 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 逆转录 | PrimeScript逆转录试剂盒 | Takara | -- |
| qPCR | SYBR Premix Ex TaqII试剂 | Takara | -- |
| ABI 7500 Fast系统 | Applied Biosystems | -- | |
| Western blot蛋白提取 | RIPA裂解液 | Beyotime Biotechnology | -- |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Beyotime Biotechnology | -- | |
| 蛋白质定量 | BCA蛋白检测试剂盒 | Beyotime Biotechnology | -- |
| Western blot转膜 | PVDF膜 | Millipore | -- |
| Western blot抗体孵育 | TXNRD1抗体 | Cell Signaling Technology | -- |
| LPCAT3抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| SLC7A11抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| Western blot二抗孵育 | HRP偶联二抗 | Abcam | -- |
| Western blot显影 | ECL底物试剂盒 | Beyotime Biotechnology | -- |
| 透射电镜染色 | 醋酸铀 | -- | -- |
| 柠檬酸铅 | -- | -- | |
| 分子模拟 | Gaussian 16 | -- | -- |
| AutoDock Vina | -- | -- | |
| AutoDockTools | -- | -- | |
| GROMACS 2020.4 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与炎症模型建立 | MH7A细胞系来源、培养基(RPMI-1640含10% FBS和1%青霉素-链霉素)、LPS浓度(10 μg/ml)和刺激时间(6 h) 阅读提示:Methods 2.6 Cell culture and inflammatory model establishment |
| 药物处理 | SCHA浓度(60, 120, 240 μM)和处理时间(24 h);Erastin浓度(10 μM)作为阳性对照 阅读提示:Methods 2.8 ELISA assay |
| 细胞活力检测 | 细胞接种密度(1×10^4 cells/well)、SCHA浓度范围(15–240 μM)、CCK-8孵育时间(1 h) 阅读提示:Methods 2.7 Cell viability assay |
| 铁死亡标志物检测 | 生化检测试剂盒(Solarbio)、ROS探针DCFH-DA浓度(10 μmol/L)和孵育时间(30 min) 阅读提示:Methods 2.9 Ferroptosis biomarkers detection |
| 基因表达验证 | qPCR内参基因GAPDH、Western blot抗体规格(Cell Signaling Technology, 1:1000)和蛋白上样量(30 μg) 阅读提示:Methods 2.10 qPCR analysis和2.11 Western blotting analysis |