构建表达质粒
生成编码嵌合重链和轻链的质粒,用于表达Fab_CH1IgA及其突变体
通过PCR扩增VH基因、Cα1基因和κ轻链基因,连接为全长嵌合重链基因和轻链基因,分别克隆到pcDNA3.4载体中;通过定点诱变引入突变。
Characterization of adalimumab Fab variants with the CH1 domain replaced by the Cα1 domain of IgA.
包含体外表达纯化、DSC热稳定性分析、SPR结合动力学分析、以及基于晶体结构的点突变验证,构成至少两个独立证据层级的功能与机制验证。
IgG1型阿达木单抗Fab(野生型Fab) IgA型嵌合Fab(Fab_CH1IgA) Fab_CH1IgA点突变体(P124T、Y211K)
CHO细胞表达系统及培养条件:ExpiCHO-S细胞,37°C,8% CO2,培养10天 使用Protein L-Agarose HC和Resource S阳离子交换色谱纯化,洗脱缓冲液及梯度条件 DSC测量条件:0.2 mg/mL,50 mM KH2PO4,pH 6.5,扫描速率90°C/h SPR分析条件:Biacore 8K,CM5芯片,捕获His-tagged TNFα,Fab浓度64–0.5 nM,接触和 dissociation时间分别为120 s和300 s
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
生成编码嵌合重链和轻链的质粒,用于表达Fab_CH1IgA及其突变体
通过PCR扩增VH基因、Cα1基因和κ轻链基因,连接为全长嵌合重链基因和轻链基因,分别克隆到pcDNA3.4载体中;通过定点诱变引入突变。
在CHO细胞中表达Fab_CH1IgA及其突变体,并纯化至均一
使用ExpiFectamine CHO转染试剂盒瞬时转染ExpiCHO-S细胞,培养后收集上清,经Protein L-Agarose HC亲和色谱和Resource S阳离子交换色谱纯化。
比较Fab_CH1IgA与野生型Fab的二级结构和热稳定性
通过圆二色谱(CD)检查二级结构,使用差示扫描量热法(DSC)测定热变性中点温度(Tm)。
评估Fab变体与人TNFα的结合动力学
使用表面等离子体共振(SPR)在Biacore 8K仪器上分析Fab变体与His-tagged TNFα的相互作用。
验证Pro124和Tyr211在V–C界面中的功能作用
基于IgA1 Fab晶体结构(PDB: 3QNY)和IgG1型阿达木单抗Fab结构(PDB: 4NYL),将Fab_CH1IgA中的Pro124和Tyr211分别突变为Thr和Lys,并通过DSC和SPR分析其影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 载体构建 | pcDNA3.4载体 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 细胞培养与转染 | ExpiCHO-S细胞 | -- | -- |
| ExpiFectamine CHO转染试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 蛋白纯化 | 蛋白L琼脂糖HC | Protenova | -- |
| Resource S色谱柱 | Cytiva | -- | |
| ÄKTA纯化系统 | Cytiva | -- | |
| DSC分析 | PEAQ-DSC仪器 | Malvern | -- |
| SPR分析 | Biacore 8K仪器 | Cytiva | -- |
| CM5传感器芯片 | Cytiva | -- | |
| His标签人TNFα | Elabscience | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 表达与纯化 | 转染试剂盒、细胞系、培养条件、纯化柱类型及洗脱条件 阅读提示:Methods 2.2节 |
| DSC热稳定性分析 | 蛋白浓度、缓冲液、pH、扫描速率、拟合模型 阅读提示:Methods 2.3节 |
| SPR结合动力学 | 芯片类型、捕获蛋白浓度、Fab浓度范围、接触/解离时间、再生条件、拟合模型 阅读提示:Methods 2.4节 |
| 点突变设计 | 突变位点(P124T、Y211K)、突变方法 阅读提示:Methods 2.1节;Results 3.4节;图4 |