建立L5脊神经压迫动物模型并验证模型特点
模拟临床神经根病中的神经根压迫,建立行为学测试平台。
使用直径0.5mm的套管压迫大鼠L5脊神经,通过LFB和HE染色验证L5神经变性而L4神经完好,并通过von Frey测试、热板测试和步态分析评估疼痛行为,同时检测L5 DRG中炎症因子表达。
Activation of TLR4/CCL2 in Intact Neurons Drives Radicular Injury-Induced Global Nerve Trunk Hypersensitivity in Radiculopathy Preclinical Models.
包含L5脊神经压迫大鼠模型、体内行为学测试、RNA-seq、免疫荧光、流式细胞术、原代DRG神经元培养及体外共培养验证,涉及体外与体内多层次功能验证
雄性Sprague-Dawley大鼠L5脊神经压迫模型 原代大鼠DRG神经元
L5脊神经压迫模型中L4神经纤维未损伤(LFB染色验证) TAK-242给药剂量和途径(3mg/kg,腹腔注射,术前30分钟) DAMPs(如Il1a、A2m)在坐骨神经中的表达变化(POD3) L4 DRG中CCL2表达的时空变化(POD3和POD7) TLR4拮抗剂TAK-242对疼痛行为的影响(von Frey测试、热板测试、步态分析)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟临床神经根病中的神经根压迫,建立行为学测试平台。
使用直径0.5mm的套管压迫大鼠L5脊神经,通过LFB和HE染色验证L5神经变性而L4神经完好,并通过von Frey测试、热板测试和步态分析评估疼痛行为,同时检测L5 DRG中炎症因子表达。
揭示L5损伤后L4 DRG中发生的关键分子通路变化。
对L4 DRG进行RNA-seq,通过GO和KEGG富集分析识别炎症和趋化因子信号通路;通过qPCR验证Ccl2表达上调;通过流式细胞术检测CD68+巨噬细胞浸润;通过免疫荧光定位CCL2表达于神经元。
探索L5损伤后坐骨神经中可能激活未损伤L4神经元的DAMPs。
对POD3的坐骨神经进行RNA-seq,分析DAMP相关基因表达;通过LFB和HE染色观察轴突变性和炎症;通过qPCR验证Il1a和A2m的表达。
验证TLR4在L4 DRG CCL2上调中的作用及其对疼痛行为的贡献。
术前30分钟腹腔注射TLR4拮抗剂TAK-242(3mg/kg),POD3检测L4 DRG中CCL2的mRNA和蛋白水平,并评估von Frey、热板和步态分析的行为学变化。
证实TLR4激动剂可直接诱导原代DRG神经元表达CCL2。
取4周龄大鼠L4-L6 DRG培养原代神经元,用LPS(TLR4激动剂)刺激,检测Ccl2 mRNA和蛋白水平;另外,将L5压迫后的坐骨神经与神经元共培养,并施加TAK-242,观察Ccl2表达变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型建立 | 套管 | -- | -- |
| 药物处理 | TAK-242 | MCE | HY-11109 |
| 二甲基亚砜 | -- | -- | |
| 行为学测试 | 电子von Frey测痛仪 | Bioseb | -- |
| 热板仪 | Ugo Basile | -- | |
| 步态分析 | CatWalk自动步态分析系统 | Noldus Information Technology | -- |
| RNA提取和qPCR | 细胞RNA纯化试剂盒 | EZbioscience | -- |
| RNA纯化试剂盒 | EZbioscience | -- | |
| Nanodrop分光光度计 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 逆转录和qPCR | 4×逆转录预混液 | EZbioscience | -- |
| 2×SYBR Green qPCR预混液 | EZbioscience | -- | |
| qPCR | QuantStudio 7 Flex实时荧光定量PCR系统 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 组织染色 | Luxol Fast Blue溶液 | Servicebio | -- |
| 显微镜 | Nikon | -- | |
| RNA-seq | NEBNext Ultra RNA文库制备试剂盒(Illumina) | NEB | -- |
| AMPure XP纯化系统 | Beckman Coulter | -- | |
| USER酶 | NEB | -- | |
| Phusion高保真DNA聚合酶 | NEB | -- | |
| Agilent Bioanalyzer 2100系统 | Agilent | -- | |
| 流式细胞术 | 木瓜蛋白酶溶液 | Shanghai Yuanye Biological Technology Co., Ltd. | -- |
| 染色缓冲液 | MeilunBio | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| PE标记抗大鼠CD45抗体 | Biolegend | -- | |
| FITC标记抗大鼠CD68抗体 | Invitrogen | -- | |
| 流式细胞仪CytoFlex | Beckman Coulter | -- | |
| 细胞培养 | 0.25%胰蛋白酶-EDTA | Gibco | -- |
| 0.1%胶原酶II | Fushenbio | -- | |
| DMEM培养基 | Gibco | -- | |
| Neurobasal完全培养基 | Gibco | -- | |
| B27添加剂 | Gibco | -- | |
| L-谷氨酰胺 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | -- | |
| 细胞培养箱 | Thermo | -- | |
| 药物处理(体外) | 脂多糖 | MCE | -- |
| 免疫荧光染色 | OCT包埋剂 | Sakura Finetek | -- |
| 冰冻切片机 | Leica | -- | |
| 牛血清白蛋白 | SigmaAldrich | -- | |
| 抗β3-微管蛋白抗体 | Proteintech Group | -- | |
| 抗3PGDH抗体 | Santa Cruz | -- | |
| 抗CCL2抗体 | Affinity | -- | |
| 驴抗小鼠IgG(H+L)交叉吸附二抗Alexa Fluor 488 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 驴抗兔IgG(H+L)交叉吸附二抗Alexa Fluor 568 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| DAPI | -- | -- | |
| 共聚焦显微镜 | Olympus | -- | |
| Leica SP8共聚焦显微镜 | Leica | -- | |
| ELISA | CCL2 ELISA试剂盒 | Elabscience | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | L5脊神经压迫模型的建立方法:手术步骤、套管尺寸、术后护理;动物品系、性别、周龄 阅读提示:Materials and Methods: Animals and L5 Spinal Nerve Compression Model; Figure 1 |
| 药物处理 | TAK-242的剂量、给药途径、给药时间;DMSO用量 阅读提示:Materials and Methods: TAK-242 Treatment in vivo; Figure 4 |
| 行为学测试 | von Frey测试的具体参数(探针类型、刺激次数、间隔)、热板测试的温度和截止时间、步态分析参数和数据处理方法 阅读提示:Materials and Methods: Von Frey Test, Hotplate Test, Gait Analysis; Figure 1 |
| 分子检测 | L4 DRG和坐骨神经的取材时间点、RNA提取方法、qPCR引物序列和内参基因;DAMP检测的基因 阅读提示:Materials and Methods: RNA Isolation and Real-Time Quantitative PCR; Figure 2, Figure 3 |
| 体外实验 | 原代DRG神经元的分离和培养条件(酶浓度、时间、培养基)、LPS处理浓度和时间、共培养体系中TAK-242浓度、处理时间 阅读提示:Materials and Methods: Primary Culture of Rat DRG Neurons and Treatment; Figure 5 |