拯救背胰动脉血管功能障碍可预防他克莫司诱导的小鼠葡萄糖代谢紊乱

Rescuing vascular dysfunction in dorsal pancreatic arteries prevents tacrolimus-induced glucose metabolism disorder in mice.

作者信息Lingyan Fei, Honghong Wang, Dongliang Zhao, Xiaohua Wang, Jizhen Ren, Lanyun Liu, Chun Tang, Yan Lei, Qingqing Wang, Yuanpeng Nie, Yang Liu, Na Li, Ming Zhong, Nan Xu, Jin Wei, Pontus B Persson, Andraes Patzak, Pratik H Khedkar, Zhihua Zheng, Shan Jiang
PMID40495121
期刊Mol Med
发布时间2025-06-11
DOI10.1186/s10020-025-01282-7

实验完整度

包含体外血管张力测定(wire myography)、胰岛分离、qPCR、Western blot、免疫组化/免疫荧光、血液流变学测量及体内动物模型等多个独立实验层级,并进行功能验证和机制验证。

主要模型

C57BL/6小鼠Tac诱导高血糖模型 离体背胰动脉和肾叶间动脉环 分离的胰岛 肾脏组织

重点核对

Tac剂量5 mg/kg/day腹腔注射,持续6个月 缬沙坦剂量30 mg/kg/day灌胃 GTT前禁食16小时,葡萄糖1.5 g/kg腹腔注射 ITT前禁食6小时,胰岛素1 U/kg腹腔注射 肾素和Ang II ELISA检测

摘要

免疫抑制剂他克莫司(Tac)的长期不良反应,如肾毒性、肝毒性和糖尿病,已被广泛报道。接受Tac治疗的实体器官移植患者中,高达33.6%出现高血糖;然而,其潜在机制仍知之甚少。在此,利用Tac诱导的高血糖小鼠模型,我们发现Tac诱导的体重减轻、高血糖、低胰岛素血症、葡萄糖不耐受和胰岛素抵抗可通过肾素-血管紧张素系统(RAS)抑制剂缬沙坦得到改善。胰腺的组织学和免疫荧光分析显示,Tac处理小鼠的胰岛面积和β细胞质量减少。此外,与对照小鼠相比,从Tac处理小鼠分离的胰岛显示细胞增殖标志物(Ki67、Ccna2和Ccnd1)下调,而凋亡标志物(DNA片段化、Bax和Caspase3)上调。Tac还上调了胰腺中缺氧相关标志物,包括缺氧诱导因子-1α(HIF-1α)及其下游因子(Adm、Hmox1和Vegfa)、CD31和吡莫硝唑加合物。此外,Tac处理导致胰动脉血管功能障碍。所有这些不良影响可被缬沙坦部分或完全消除。Tac还增加了肾组织(1.00±0.06 vs 1.29±0.04,p<0.05)和血清(28.35±4.29 ng/mL vs 51.99±4.95 ng/mL,p<0.05)中肾素的水平。缬沙坦抑制RAS可保护Tac诱导的肾叶间动脉血管功能障碍。总的来说,我们的数据揭示了一种先前未描述的机制,其中Tac诱导的肾叶间动脉血管功能障碍导致RAS激活。缬沙坦阻断RAS可减轻背胰动脉的血管功能障碍和胰岛缺氧,进而预防Tac诱导的β细胞功能障碍和葡萄糖代谢紊乱。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
他克莫司(Tac)诱导的葡萄糖代谢紊乱是否涉及背胰动脉血管功能障碍及肾素-血管紧张素系统(RAS)激活?
核心机制
Tac诱导肾叶间动脉血管功能障碍,导致肾灌注不足和缺氧,进而激活RAS;激活的RAS通过引起背胰动脉血管功能障碍,减少胰腺血流量,导致胰岛缺氧,最终引起β细胞功能障碍和葡萄糖代谢紊乱。
主要证据
小鼠模型显示Tac处理导致体重减轻、高血糖、低胰岛素血症、葡萄糖不耐受和胰岛素抵抗;分离的胰岛显示增殖标志物下调、凋亡标志物上调;血管张力测定显示背胰动脉和肾叶间动脉对ACh舒张受损,对Ang II、PE、U46619收缩增强;Tac增加血清和肾组织肾素及Ang II水平。
研究意义
本研究揭示RAS抑制可能是Tac诱导的葡萄糖代谢紊乱的新的治疗策略,并为PTDM的新治疗方法铺平道路,重点关注改善背胰动脉血管功能。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立Tac诱导高血糖小鼠模型并评估缬沙坦的保护作用

验证RAS抑制剂缬沙坦是否能改善Tac诱导的葡萄糖代谢紊乱

C57BL/6小鼠分为对照组、缬沙坦组、Tac组和Tac+缬沙坦组,分别给予溶剂、缬沙坦(30 mg/kg/day,灌胃)、Tac(5 mg/kg/day,腹腔注射)或两者联用,持续6个月。记录体重、随机和空腹血糖、血清胰岛素、HOMA-IR、HOMA-β,并进行GTT和ITT。

2

评估胰岛形态和β细胞功能

检测Tac对胰岛和β细胞的影响以及缬沙坦的改善作用

通过H&E染色、胰岛素和胰高血糖素免疫荧光染色评估胰岛面积和α/β细胞质量;通过qPCR检测胰岛素生物合成相关基因(Ins1, Ins2, MafA, Pdx-1)的表达。

3

检测β细胞增殖和凋亡

探究Tac是否引起β细胞增殖和凋亡失衡,缬沙坦是否改善

通过免疫荧光共染胰岛素和Ki67或TUNEL评估β细胞增殖和凋亡;通过qPCR检测增殖标志物(Ccna2, Ccnd1)和凋亡相关基因(Bax, Caspase3, Bcl2)的表达。

4

检测胰岛缺氧

验证Tac是否诱导胰岛缺氧,缬沙坦是否缓解

通过免疫组化检测CD31、pimonidazole加合物和HIF-1α;通过Western blot检测HIF-1α和pimonidazole加合物;通过qPCR检测HIF-1α及其下游靶基因(Adm, Hmox1, Vegfa)的表达。

5

评估背胰动脉血管功能和胰腺血流量

检测Tac是否引起背胰动脉血管功能障碍和胰腺血流减少,缬沙坦是否改善

使用wire myography测量背胰动脉对ACh的舒张和对Ang II、PE、U46619的收缩反应;使用非放射性黑色微球技术测量胰腺血流量。

6

检测RAS激活

验证Tac是否激活系统RAS

通过ELISA检测血清Ang II和肾素水平;通过Western blot和免疫组化检测肾组织肾素表达。

7

评估肾叶间动脉血管功能和肾脏血流

验证Tac是否引起肾叶间动脉血管功能障碍和肾血流减少,缬沙坦是否改善

使用wire myography测量肾叶间动脉对ACh的舒张和对Ang II、PE、U46619的收缩反应;使用微球技术测量肾脏血流量。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
他克莫司MCE, USAHY-13756
缬沙坦Aladdin, ChinaV129241
Accu-Check血糖仪----
小鼠胰岛素ELISA试剂盒Cusabio, ChinaCSB-E05071m
非放射性黑色微球E-Z Trac, IMT; Irvine, USA--
血管紧张素II----
U46619----
乙酰胆碱----
小鼠Ang II ELISA试剂盒Elabscience Biotechnology, ChinaE-EL-M2612
小鼠肾素ELISA试剂盒Elabscience Biotechnology, ChinaE-EL-M0061
Liberase TLRoche Diagnostics, Japan05401020001
RNeasy小型试剂盒Qiagen, Valencia, USA--
逆转录试剂盒Bio-rad, USA--
SYBR Green预混液Bio-rad, USA--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
小鼠品系(C57BL/6)、性别(雄性)、年龄(8-10周)、Tac剂量(5 mg/kg/day)和给药方式(腹腔注射)、缬沙坦剂量(30 mg/kg/day)和给药方式(灌胃)、处理持续时间(6个月)
阅读提示:Methods: Experimental animal
血糖和胰岛素测量
血糖仪型号(Accu-Check)、ELISA试剂盒(CSB-E05071m)及操作步骤、HOMA-IR和HOMA-β计算公式
阅读提示:Methods: Blood glucose, plasma insulin measurements and HOMA-IR, HOMA-β index calculation
葡萄糖耐量和胰岛素耐量试验
GTT前禁食时间(16 h)、葡萄糖剂量(1.5 g/kg)和途径(腹腔注射)、ITT前禁食时间(6 h)、胰岛素剂量(1 U/kg)和途径(腹腔注射)、血糖测定时间点(0、30、60、90、120 min)
阅读提示:Methods: GTT and ITT measurements
血流量测量
微球类型(非放射性黑色微球,直径10 µm)、注射量(100 µl,约1.5×10^5)、参考血样采集速率(0.4 ml/min)和时长(60 s)、计算方程
阅读提示:Methods: Blood flow measurements
血管反应性测量
动脉类型(背胰动脉和肾叶间动脉)、血管环长度(2 mm)、Krebs–Henseleit溶液成分、KPSS浓度(80 mM KCl)、诱导剂浓度范围(Ang II 10^-12至10^-6 mol/L,U46619 10^-6至10^-11 mol/L,PE 10^-10至10^-5 mol/L,ACh 10^-9至10^-5 mol/L)、温度(37°C)
阅读提示:Methods: Measurement of vasoreactivity in dorsal pancreatic and renal interlobar arteries
胰岛分离
Liberase TL浓度(0.24 g/l)、消化时间(37°C,24 min)、缓冲液成分(HBSS含25 mmol/l HEPES)
阅读提示:Methods: Pancreatic islet isolation
qPCR
RNA提取试剂盒(RNeasy mini kit)、逆转录试剂盒(Bio-rad)、SYBR Green supermix(Bio-rad)、引物序列(见补充表S1)、计算方法(2^-ΔΔCt)
阅读提示:Methods: Quantitative Polymerase Chain Reaction (qPCR)