双载自愈合水凝胶对耐甲氧西林金黄色葡萄球菌感染伤口愈合的协同抗菌和抗炎潜力

Synergistic antibacterial and anti-inflammatory potentials of dual-loaded self-healing hydrogel for methicillin-resistant Staphylococcus aureus-infected wound healing.

作者信息Sangyu Hu, Weigang Zhong, Yuzhu Pei, Yutong Zhou, Jianfeng Wang, Xuming Deng, Zihao Teng, Lei Xu
PMID41659029
发布时间2026-01
DOI10.1016/j.jpha.2025.101376

实验完整度

包含体外抗菌机制验证、水凝胶表征、细胞和溶血毒性实验,以及MRSA感染小鼠伤口模型的体内疗效评估。

主要模型

MRSA菌株USA300、USA400和NCTC 8325-4 Caco-2细胞 BALB/c小鼠MRSA感染皮肤伤口模型

重点核对

MRSA菌株接种量:5×10^5 CFU/mL(MIC测定) 去甲替林与阿莫西林联合浓度 水凝胶中阿莫西林和去甲替林含量(5 mg和10 mg) 小鼠伤口感染菌量:10^7 CFU 动物分组:6组,每组n=6

摘要

耐药菌感染和持续性生物膜定植的出现对有效的伤口愈合和再生构成了严峻挑战,迫切需要创新治疗策略来应对这些紧迫的临床危机。在此,去甲替林(一种美国食品药品监督管理局(FDA)批准的新型三环类抗抑郁药)被发现能有效增强β-内酰胺类抗生素对耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(MRSA)的杀菌活性。机制上,去甲替林通过破坏微生物铁稳态、增强芬顿化学介导的氧化应激,并伴随通过三羧酸(TCA)循环失调和膜不稳定化进行的代谢重编程来发挥作用。为增强联合治疗在伤口管理中的治疗潜力,通过氧化透明质酸(OHA)和ε-多聚赖氨酸(PLL)的分子交联,构建了双载自愈合水凝胶OHA-PLL@AN,其具有优异的生物相容性和抗菌潜力。OHA-PLL@AN的治疗效果在MRSA感染的皮肤伤口小鼠模型中进一步得到验证。OHA-PLL@AN治疗显著减弱了炎症反应,同时促进血管生成并加速皮肤伤口愈合。总之,这些发现强调了具有抗感染和抗炎特性的双载自愈合水凝胶OHA-PLL@AN作为耐药菌感染伤口治疗的新型治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
去甲替林作为抗生素佐剂是否能增强β-内酰胺类抗生素对MRSA的抗菌活性,以及双载自愈合水凝胶OHA-PLL@AN是否能有效促进MRSA感染伤口愈合?
核心机制
去甲替林通过破坏细菌铁稳态、促进芬顿反应介导的氧化应激(ROS、H2O2、·OH增加),并降低SOD活性,同时引起TCA循环失调和膜去极化,从而增强MRSA对β-内酰胺类抗生素的敏感性。
主要证据
体外实验包括MIC测定、时间-杀菌曲线、生物膜抑制、膜通透性、ROS和铁含量测定;体内实验采用MRSA感染小鼠伤口模型,通过伤口愈合面积、细菌载量、H&E和Masson染色、ELISA及免疫组化评估。
研究意义
本研究为耐药菌感染伤口治疗提供了一种双载自愈合水凝胶OHA-PLL@AN,具有抗菌和抗炎协同作用,有望成为替代传统抗生素疗法的新策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

评估去甲替林与β-内酰胺类抗生素的协同抗菌活性

验证去甲替林是否能增强β-内酰胺类抗生素对MRSA的抗菌效果。

通过棋盘微量稀释法测定MIC和FICI,并采用时间-杀菌曲线、生长曲线和纸片扩散法评估协同作用。

2

评估去甲替林对生物膜形成的影响

研究去甲替林联合阿莫西林是否抑制MRSA生物膜形成和清除成熟生物膜。

通过结晶紫染色法评估生物膜形成和成熟生物膜清除效果。

3

研究去甲替林对细菌细胞膜的影响

探究去甲替林是否破坏细菌细胞膜完整性和膜电位。

使用SEM观察形态,LIVE/DEAD染色、PI摄取和DiSC3(5)荧光探针检测膜通透性和膜电位。

4

研究去甲替林对氧化应激和铁稳态的影响

验证去甲替林是否通过促进氧化损伤和铁稳态失调来增强抗生素活性。

使用DCFH-DA、HPF和试剂盒检测ROS、H2O2、·OH、SOD活性、Fe2+含量和NAD+/NADH。

5

构建并表征双载自愈合水凝胶OHA-PLL@AN

开发具有自愈合、粘附性和pH响应性药物释放性能的水凝胶。

通过OHA和PLL的席夫碱交联制备水凝胶,并表征其流变学、自愈合、拉伸和粘附性能,以及药物释放。

6

评估水凝胶的体外生物相容性和抗菌活性

验证水凝胶的细胞相容性、血液相容性和抗菌效果。

通过LDH释放、活/死染色和溶血实验评估细胞毒性;通过OD600和菌落计数评估抗菌活性。

7

评估水凝胶在MRSA感染小鼠伤口中的疗效

验证OHA-PLL@AN水凝胶在体内能否促进伤口愈合并发挥抗炎和血管生成作用。

建立MRSA感染伤口模型,分组治疗,观测伤口愈合、细菌载量、组织病理、炎症因子和巨噬细胞极化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
胰蛋白胨大豆肉汤Hopebio--
去甲替林Desite Biotechnology--
阿莫西林Macklin Biochemical--
头孢他啶----
头孢匹罗----
DMEM培养基----
胎牛血清----
LDH细胞毒性检测试剂盒Roche--
Calcein-AM/PI染色试剂盒Solarbio--
荧光显微镜IX73Olympus--
扫描电子显微镜SIGMA 300ZEISS--
LIVE/DEAD BacLight细菌活力检测试剂盒Thermo Fisher Scientific--
碘化丙啶Sigma-Aldrich--
DiSC3(5)Aladdin--
增强型ATP检测试剂盒Beyotime--
DCFH-DABeyotime--
总超氧化物歧化酶检测试剂盒Beyotime--
HPFMaokang--
过氧化氢检测试剂盒Beyotime--
NAD+/NADH检测试剂盒Beyotime--
细胞亚铁离子比色检测试剂盒Elabscience--
TRIzolTransGen Biotech--
StarScript Pro全合一RT Mix(含gDNA去除剂)GenStar--
2× RealStar通用SYBR qPCR预混液GenStar--
7500 Fast实时荧光定量PCR系统ABI QuantStudio1, Thermo Fisher Scientific--
流变仪Discovery HR-3TA Instruments--
高效液相色谱系统LC-2010A HTShimadzu Corporation--
C18色谱柱----
Agilent C18色谱柱Agilent Technologies--
BALB/c小鼠Liaoning Changsheng Technology Industrial Co., Ltd.--
TNF-α ELISA试剂盒BioLegend--
IL-6 ELISA试剂盒BioLegend--
抗CD31抗体Servicebio--
抗CD68抗体Servicebio--
抗CD86抗体Abways--
抗CD206抗体Proteintech--
GraphPad Prism 8.0----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
体外抗菌活性评估
细菌菌株和接种浓度(5×10^5 CFU/mL);药物浓度(如去甲替林、阿莫西林)及组合比例;孵育时间和温度
阅读提示:材料与方法 2.2-2.4 节
生物膜抑制实验
细菌浓度(1×10^6 CFU/mL);药物浓度和组合;孵育时间(24小时形成,12小时成熟);结晶紫染色方法
阅读提示:材料与方法 2.6 节
细胞膜功能检测
药物处理浓度和时间;PI和DiSC3(5)浓度;荧光测量条件(Ex/Em波长)
阅读提示:材料与方法 2.9-2.11 节
氧化应激和铁稳态检测
药物浓度系列;DCFH-DA、HPF浓度;试剂盒使用步骤;RT-qPCR引物和参考基因
阅读提示:材料与方法 2.13-2.16 节
水凝胶制备和表征
OHA和PLL浓度、体积比;药物含量;pH和温度对药物释放的影响;流变学参数设置
阅读提示:材料与方法 2.17-2.20 节
体内伤口愈合实验
小鼠品系、性别、年龄和数量;感染菌量(10^7 CFU);治疗分组和给药方案;取材时间点
阅读提示:材料与方法 2.22 节