筛选与验证候选基因
寻找与DOR相关的潜在关键基因。
对DOR患者和对照组颗粒细胞进行RNA测序,结合WGCNA和DEGs分析,筛选出5个候选基因;随后通过基因负荷分析在POI队列中验证。
CKAP5 deficiency induces premature ovarian insufficiency.
研究包含患者转录组分析、基因负荷分析、杂合敲除小鼠模型、单细胞测序及体外功能实验等多个独立证据层级,并进行机制验证。
DOR患者颗粒细胞 Ckap5杂合敲除小鼠 HEK293T细胞 POI患者外周血
DOR患者与对照组各5例,颗粒细胞RNA测序 POI患者93例与健康对照465例的基因负荷分析 Ckap5杂合敲除小鼠(C57BL/6J背景)卵巢表型 HEK293T细胞siRNA敲低CKAP5后DNA损伤修复和自噬检测 POI患者CKAP5变异(c.630+7_630+11delCAAAA)功能验证
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
寻找与DOR相关的潜在关键基因。
对DOR患者和对照组颗粒细胞进行RNA测序,结合WGCNA和DEGs分析,筛选出5个候选基因;随后通过基因负荷分析在POI队列中验证。
评估Ckap5单倍剂量不足对卵巢功能和生育力的影响。
利用CRISPR/Cas9技术生成Ckap5杂合敲除小鼠,通过基因分型、Western blot和IHC确认蛋白缺失,随后进行卵巢组织学、激素水平及生育力检测。
解析Ckap5杂合敲除小鼠卵巢中细胞组成和转录变化。
对3月龄Ckap5+/-小鼠和对照卵巢进行scRNA-seq,分析细胞类型比例、差异表达基因及通路富集。
评估Ckap5缺陷对卵母细胞质量的影响。
对超排后收集的GV卵母细胞进行Smart-seq2测序,比较Ckap5+/+和Ckap5+/-的差异表达基因和通路。
验证CKAP5对DNA损伤修复和自噬通路的分子机制。
在HEK293T细胞中敲低CKAP5,并通过Western blot、免疫荧光检测DNA损伤修复相关蛋白(ATM、CHK2、P53、SMC3等)和自噬标志物(LC3、P62、ATG7等)的变化;利用etoposide诱导DSBs,EBSS和CQ处理细胞以分析自噬通量。
确定CKAP5变异是否导致功能丧失。
对两个POI家系进行WES和Sanger测序,鉴定出CKAP5杂合变异;通过minigene实验和细胞实验验证变异导致剪接异常和蛋白截短。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 颗粒细胞分离 | 淋巴细胞分离液 | Solarbio | P8800 |
| 动物实验 | Ckap5基因敲除小鼠 | -- | -- |
| 激素检测 | 小鼠ELISA试剂盒 | JonlnBio | JL10239, JL10432, JL11232 |
| 组织学 | 天狼星红染色试剂盒 | Solarbio | G1472 |
| 卵母细胞收集 | M2培养基 | Sigma-Aldrich | M7167 |
| ROS检测 | DCFH-DA试剂 | Boxbio | AKCE002-1 |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Basal Media | L110KJ |
| 胎牛血清 | Every Green | 11011-8611 | |
| 细胞处理 | 厄尔平衡盐溶液 | Beyotime | C0213 |
| 氯喹 | Sigma-Aldrich | 50-63-5 | |
| 基因沉默 | riboFECT CP转染试剂 | Ribobio | SIGS0003355-4 |
| 质粒转染 | PolyJet体外DNA转染试剂 | SignaGen | SL100688 |
| Lipofectamine 2000转染试剂 | ThermoFisher | 11668027 | |
| 蛋白质提取 | RIPA裂解液 | NCM | WB3100 |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | Abiowell | AWB0159a | |
| Western blot | 非蛋白封闭液 | Boster | AR0041 |
| 免疫荧光 | DAPI染液 | Beyotime | P0131 |
| 免疫组化 | DAB显色液 | ZSGB-BIO | ZLI-9018 |
| 凋亡检测 | TUNEL检测试剂盒 | Elabscience | E-CK-A331 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本收集 | DOR患者和对照组的纳入标准、样本量(各5例) 阅读提示:Methods: Clinical samples |
| 基因负荷分析 | POI患者93例、对照465例的测序深度、变异过滤阈值、统计方法(SKAT-O) 阅读提示:Methods: Gene burden analysis |
| 动物模型 | Ckap5杂合敲除小鼠的遗传背景(C57BL/6J)、基因敲除策略(删除外显子3-6)、饲养条件 阅读提示:Methods: Animals; Results: Fig. 2c-d |
| 卵巢组织学 | 组织固定、切片厚度(4 μm)、染色方法(H&E、PSR)、各阶段卵泡计数标准 阅读提示:Methods: Histology of ovarian tissue; Figure legends |
| 激素检测 | 小鼠月龄(3、6、9个月)、每组样本量(n=4)、ELISA试剂盒 阅读提示:Methods: Mouse serum hormone assay |
| 生育力测试 | 交配周期(8-36周)、雌雄比例(1:1)、记录指标(每窝产仔数、总产仔数) 阅读提示:Methods: Fertility test |
| 单细胞转录组 | 小鼠年龄(3个月)、细胞数过滤标准、批次效应校正方法(Harmony)、聚类分辨率(0.2) 阅读提示:Methods: Analysis of scRNA-seq data of ovaries |
| 卵母细胞测序 | 超排方案(10 IU PMSG)、卵母细胞收集时间(44-48h)、测序平台(DNBSEQ) 阅读提示:Methods: Oocyte collection; Oocyte RNA sequencing and analysis |
| 细胞实验 | HEK293T细胞来源、siRNA浓度(100 nM)、转染时间(72 h)、etoposide浓度(100 nM)、EBSS处理时间(6h)、CQ浓度(20 μM) 阅读提示:Methods: Gene silencing; Plasmid generation and transfection; Results: Fig. 4 |
| 患者变异验证 | 家系成员WES和Sanger测序、minigene构建和转染条件(Lipofectamine 2000,24h) 阅读提示:Methods: Minigene assay; Results: CKAP5 variant causes clinical POI |