评估GLSP对自然衰老小鼠血管老化的影响
验证GLSP是否能缓解自然衰老小鼠的血管老化表型。
16月龄C57BL/6J小鼠分为对照组、GLSP低剂量和高剂量组,灌胃处理6个月,检测体重、脏器指数、血清血脂、背部毛发、血管通透性(伊文思蓝)、衰老细胞(SA-β-gal染色)、细胞增殖(PH3)、血管结构(HE染色)、胶原沉积(天狼星红染色)和弹性纤维断裂(EVG染色)。
GLSP mitigates vascular aging by promoting Sirt7-mediated Keap1 deacetylation and Keap1-Nrf2 dissociation.
包含老龄小鼠、apoE-/-小鼠动脉粥样硬化模型、VD3/尼古丁诱导钙化模型及VSMCs体外实验等多个证据层级,并有Sirt7抑制剂、Co-IP和分子对接等机制验证。
老龄C57BL/6J小鼠 apoE-/-动脉粥样硬化小鼠 VD3和尼古丁诱导的血管钙化小鼠模型 人主动脉平滑肌细胞(HASMCs)
自然衰老小鼠模型(16月龄C57BL/6J雄性小鼠)经GLSP灌胃处理6个月,剂量为351或702 mg/kg/天 apoE-/-小鼠喂食高脂饮食(21%脂肪,0.15%胆固醇)并给予GLSP 351 mg/kg/天,持续9个月 血管钙化模型:小鼠第1天灌胃尼古丁(20 mg/kg),第1-4天皮下注射VD3(5.5×10^5 IU/kg),随后GLSP治疗8周 体外VSMCs衰老模型:Ang II(0.6 μM)处理5天,同时给予GLSP单体成分GAA、GAB、GAG、GAC6、GMT各10 μM Sirt7抑制剂97491(5 μM)用于前2天以抑制Sirt7去乙酰化酶活性
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证GLSP是否能缓解自然衰老小鼠的血管老化表型。
16月龄C57BL/6J小鼠分为对照组、GLSP低剂量和高剂量组,灌胃处理6个月,检测体重、脏器指数、血清血脂、背部毛发、血管通透性(伊文思蓝)、衰老细胞(SA-β-gal染色)、细胞增殖(PH3)、血管结构(HE染色)、胶原沉积(天狼星红染色)和弹性纤维断裂(EVG染色)。
探究GLSP是否通过调节细胞周期和衰老相关分泌表型来缓解血管老化。
通过免疫荧光和蛋白质印迹检测主动脉中P16、P21、P53、Rb、γH2AX、p-Chk1的表达,以及SASP因子(IL-1β、TNF-α、MMP3、MMP13、ICAM-1、VCAM-1、IL-6、IL-1α)的表达,并用ELISA检测血清TNF-α和IL-1β水平。
探究GLSP是否通过减轻氧化应激和改善线粒体功能来缓解血管老化。
通过DHE和MitoSOX染色检测总ROS和线粒体ROS,通过免疫荧光检测蛋白质氧化、脂质过氧化和DNA氧化损伤,通过TOM20染色检测线粒体含量,通过LC3和P62免疫荧光检测自噬通量,检测血清MDA和CAT水平,通过蛋白质印迹检测NQO1、HMOX1、PINK1和P62表达。
验证GLSP是否能缓解年龄相关动脉粥样硬化,并探讨其机制。
apoE-/-小鼠喂食高脂饮食并给予GLSP(351 mg/kg/天)9个月,检测主动脉斑块面积(油红O染色)、主动脉根部斑块面积、坏死核心和纤维帽厚度(HE染色)、斑块内平滑肌细胞含量(αSMA免疫荧光)、腹腔巨噬细胞炎症因子和泡沫细胞形成(油红O染色)、外周血促炎单核细胞比例(流式细胞术)、斑块内衰老标志物P16表达等。
验证GLSP是否能缓解老龄和VD3/尼古丁诱导的血管钙化。
在自然衰老小鼠中检测主动脉钙化(茜素红S染色)和钙化相关基因(RUNX2、BMP2、ALP)与αSMA共定位;在VD3和尼古丁诱导的钙化小鼠中,通过茜素红S、Von Kossa染色和钙含量测定评估钙化程度,并通过免疫荧光、qRT-PCR和蛋白质印迹检测钙化相关分子表达。
在体外验证GLSP三萜类活性成分是否能抑制VSMCs衰老和钙化。
用Ang II诱导HASMCs衰老,同时给予GLSP单体成分(GAA、GAB、GAG、GAC6、GMT),检测SA-β-gal染色、衰老标志物p16/p21、炎症因子IL-6和TNF-α、总ROS和线粒体ROS、线粒体膜电位(JC-1)、NAD+/NADH比例;同时用高磷培养基诱导钙化,检测茜素红染色和钙含量。
探索GLSP缓解血管老化的分子机制,寻找关键靶点。
对老龄小鼠对照组和GLSP处理组主动脉进行RNA测序,分析差异表达基因,并进行KEGG和GO富集分析,发现Sirt7是唯一显著上调的Sirtuin家族成员。
阐明GLSP通过Sirt7调控Keap1-Nrf2信号通路的分子机制。
使用Sirt7抑制剂97491处理VSMCs,检测衰老和钙化表型;通过分子对接预测Sirt7与Keap1结合;通过免疫共沉淀(co-IP)检测Sirt7与Keap1互作、Keap1乙酰化水平及Keap1-Nrf2结合;通过核质分离检测Nrf2核转位。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 免疫荧光和蛋白质印迹 | P16抗体 | Proteintech | 10883-1-AP |
| P21抗体 | Proteintech | 67362-1-Ig | |
| P53抗体 | Proteintech | 60283-2-Ig | |
| TNF-α抗体 | Proteintech | 60291-1-Ig | |
| MMP3抗体 | Proteintech | 66338-1-Ig | |
| MMP13抗体 | Proteintech | 18165-1-AP | |
| 免疫荧光 | TOM20抗体 | Proteintech | 66777-1-Ig |
| 免疫荧光和蛋白质印迹 | Arg1抗体 | Proteintech | 66129-1-Ig |
| 免疫荧光 | αSMA抗体 | Proteintech | 67735-1-Ig |
| 免疫荧光和蛋白质印迹 | ABCG1抗体 | Proteintech | 13578-1-AP |
| Sirt7抗体 | Proteintech | 12994-1-AP | |
| 蛋白质印迹 | HMOX1抗体 | Proteintech | 66743-1-Ig |
| NQO1抗体 | Proteintech | 67240-1-Ig | |
| 免疫荧光和蛋白质印迹 | LC3抗体 | Proteintech | 14600-1-AP |
| P62抗体 | Proteintech | 31403-1-AP | |
| 蛋白质印迹 | PINK1抗体 | Proteintech | 23274-1-AP |
| 免疫荧光和蛋白质印迹 | BMP2抗体 | Proteintech | 66383-1-Ig |
| 蛋白质印迹 | IL-6抗体 | Proteintech | 26404-1-AP |
| 免疫共沉淀和蛋白质印迹 | Keap1抗体 | Proteintech | 60027-1-Ig |
| 蛋白质印迹 | Nrf2抗体 | Proteintech | 16396-1-AP |
| 免疫荧光 | IL-1β抗体 | Santa Cruz | sc-515598 |
| ICAM-1抗体 | Santa Cruz | sc-107 | |
| VCAM-1抗体 | Santa Cruz | sc-13160 | |
| CD68抗体 | Santa Cruz | sc-20060 | |
| 免疫荧光和蛋白质印迹 | SR-A抗体 | Santa Cruz | sc-20445 |
| RUNX2抗体 | Santa Cruz | sc-390351 | |
| ALP抗体 | Santa Cruz | sc-365765 | |
| 蛋白质印迹 | Osx抗体 | Santa Cruz | sc-393060 |
| 免疫荧光 | 3-硝基酪氨酸抗体 | BIOSS | bs-8551R |
| 4-羟基壬烯醛抗体 | BIOSS | bs-6313R | |
| 8-氧鸟嘌呤抗体 | Sigma-Aldrich | MAB3560 | |
| PH3抗体 | Abcam | ab177218 | |
| 蛋白质印迹 | γH2AX抗体 | Abcam | ab81299 |
| p-Chk1抗体 | Abcam | ab278717 | |
| 流式细胞术 | CD11b抗体 | BioLegend | 101263 |
| CCR2抗体 | BioLegend | 150627 | |
| Ly6C抗体 | BioLegend | 128017 | |
| 衰老检测 | 衰老β-半乳糖苷酶染色试剂盒 | Beyotime | C0602 |
| 线粒体膜电位检测 | 线粒体膜电位检测试剂盒(JC-1) | Beyotime | C2006 |
| 代谢检测 | NAD+/NADH检测试剂盒(WST-8) | Beyotime | S0175 |
| 胶原染色 | 改良天狼星红染色试剂盒 | Solarbio | G1472 |
| 弹性纤维染色 | 胶原纤维和弹性纤维染色试剂盒 | Solarbio | G1597 |
| 钙染色 | 茜素红S溶液 | Solarbio | G3280 |
| 氧化应激检测 | 二氢乙啶 | Thermo Fisher Scientific | D11347 |
| 线粒体ROS检测 | MitoSOX | Thermo Fisher Scientific | M36008 |
| 细胞培养 | DMEM/F-12培养基 | Gibco | 11330032 |
| 氧化应激检测 | 丙二醛(MDA)比色检测试剂盒 | Elabscience | E-BC-K025-M |
| 抗氧化检测 | 过氧化氢酶(CAT)活性检测试剂盒 | Elabscience | E-BC-K031-M |
| 炎症因子检测 | 小鼠TNF-α ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-M3063 |
| 小鼠IL-1β ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-M0037 | |
| 脂质染色 | 油红O粉末 | Sigma-Aldrich | 1320-06-5 |
| 钙含量检测 | 钙比色检测试剂盒 | Sigma-Aldrich | MAK022 |
| RNA提取 | MolPure® 细胞/组织总RNA提取试剂盒 | Yeasen | 19221ES50 |
| 逆转录 | HiScript II逆转录试剂盒 | Vazyme | R223 |
| qRT-PCR | Ultra SYBR Mixture | Cowin | CW2601H |
| 细胞培养 | 胎牛血清 | VivaCell | C04001-500 |
| 青霉素-链霉素 | Servicebio | G4003-100 mL | |
| 药物处理 | 灵芝孢子粉 | 浙江寿仙谷 | 20231202Y |
| 灵芝酸A | 成都普思 | 81907-62-2 | |
| 灵芝酸B | 成都普思 | 81907-61-1 | |
| 灵芝酸G | 成都普思 | 98665-22-6 | |
| 灵芝酸C6 | 成都普思 | 105742-76-5 | |
| 灵芝三醇 | 成都普思 | 106518-63-2 | |
| Sirt7抑制剂97491 | MedChemexpress | HY-135899 | |
| 血管通透性检测 | 伊文思蓝 | -- | -- |
| 细胞培养 | 血管紧张素II | Sigma-Aldrich | A6778 |
| 免疫共沉淀 | RIPA裂解液 | Beyotime | P0013B |
| 蛋白质提取 | 蛋白酶和磷酸酶抑制剂 | Beyotime | P1045 |
| 免疫共沉淀 | 免疫沉淀缓冲液 | Beyotime | P0013 |
| 蛋白酶和磷酸酶抑制剂 | Beyotime | P1046 | |
| Protein A/G PLUS-琼脂糖 | Thermo Fisher Scientific | 78610 | |
| 细胞培养 | 抗坏血酸 | -- | -- |
| 磷酸二氢钠 | -- | -- | |
| 磷酸氢二钠 | -- | -- | |
| 免疫荧光 | 增强免疫染色通透缓冲液 | Beyotime | P0097 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 自然衰老小鼠模型 | 小鼠品系、月龄、性别、GLSP剂量和给药时间 阅读提示:Methods: Experimental animals in aging studies |
| 动脉粥样硬化模型 | apoE-/-小鼠月龄、性别、高脂饮食成分、GLSP剂量和给药时间 阅读提示:Methods: Experimental animals in aging studies |
| 血管钙化模型 | 尼古丁剂量、VD3剂量、给药途径和时间、GLSP剂量和给药时间 阅读提示:Methods: Experimental animals in aging studies |
| 细胞衰老模型 | Ang II浓度、处理时间、GLSP单体成分浓度、Sirt7抑制剂浓度和处理时间 阅读提示:Methods: Cellular senescence model and cellular calcification model |
| 细胞钙化模型 | 磷酸盐浓度、抗坏血酸浓度、处理时间、Sirt7抑制剂浓度和处理时间 阅读提示:Methods: Cellular senescence model and cellular calcification model |
| Keap1乙酰化检测 | 免疫沉淀抗体、乙酰化抗体、细胞/组织裂解条件 阅读提示:Methods: Detection of Keap1 acetylation by co-immunoprecipitation (Co-IP) |