体外OGD/Rx模型中CA IX定位和表达分析
评估缺血样应激对CA IX在神经元中亚细胞定位和表达水平的影响。
对大鼠原代皮层神经元进行免疫荧光染色,分析正常、OGD和OGD/Rx条件下CA IX的表达和定位。
Pharmacological inhibition of carbonic anhydrases with a positively charged pyridinium sulfonamide phenocopies the neuroprotective effects of Car9 genetic ablation in a murine setting of oxygen/glucose deprivation followed by re-oxygenation and is associated with improved neuronal function in ischemic rats.
包含体外OGD/Rx神经元模型、Car9基因敲除小鼠、大鼠tMCAO模型,以及免疫荧光、Western blot、MTT等功能和机制验证,证据层级独立。
大鼠原代皮层神经元 小鼠原代皮层神经元(野生型和Car9-KO) 大鼠tMCAO脑缺血模型
神经元的来源和培养条件(E17.5 Wistar大鼠或C57BL/6J小鼠) OGD时长(3小时)和复氧时长(21或24小时) C18处理浓度(3 nM、10 nM、30 nM、100 nM)和预处理时间(16小时) C18给药剂量(5 mg/kg)和给药方式(脑室内注射,缺血后100分钟和3小时)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估缺血样应激对CA IX在神经元中亚细胞定位和表达水平的影响。
对大鼠原代皮层神经元进行免疫荧光染色,分析正常、OGD和OGD/Rx条件下CA IX的表达和定位。
验证CA IX缺失是否可以保护神经元免受OGD/Rx损伤。
比较野生型和Car9-KO小鼠原代皮层神经元在OGD/Rx后的细胞活力,并检测HIF-1α表达。
评估C18的毒性及其对OGD/Rx诱导的神经元损伤的保护作用。
用不同浓度C18处理大鼠原代皮层神经元,进行MTT分析,评估细胞活力。
验证C18的神经保护作用是否特异性地依赖于CA IX抑制。
用C18处理野生型和Car9-KO小鼠神经元,比较OGD/Rx后的细胞活力。
确定CA IX在正常脑区的分布及其在缺血后的表达变化。
对大鼠脑切片进行免疫荧光染色,分析纹状体、皮层等区域的CA IX表达;在tMCAO后6小时和24小时分析CA IX表达变化。
评估C18在体内对大鼠缺血性脑损伤的治疗效果。
对tMCAO大鼠脑室内注射C18,评估梗死体积和神经功能评分,并进行蛋白表达分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 马血清 | -- | -- | |
| 谷氨酰胺 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 阿糖胞苷 | -- | -- | |
| 木瓜蛋白酶 | -- | -- | |
| 牛血清白蛋白 | -- | -- | |
| 多聚-D-赖氨酸 | -- | -- | |
| 药物处理 | C18 | -- | -- |
| 乙酰唑胺 | -- | -- | |
| 细胞活力检测 | MTT | -- | -- |
| Western blot | NuPAGE Bis-Tris 4-12%梯度凝胶 | Invitrogen | -- |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Sigma Aldrich | -- | |
| BioRad蛋白定量试剂盒 | BioRad | -- | |
| ECL检测试剂 | Amersham | -- | |
| Chemi Doc成像系统 | BioRad | -- | |
| X光胶片 | Fujifilm | -- | |
| 免疫荧光 | Hoechst染色 | -- | -- |
| Fluoromount水溶性封片剂 | Sigma | -- | |
| 蔡司LSM 700激光共聚焦显微镜 | Zeiss | -- | |
| 动物实验 | 七氟烷 | -- | -- |
| 尼龙缝线 | -- | -- | |
| 激光多普勒血流仪 | -- | -- | |
| Western blot | 抗CA IX抗体(M75) | -- | -- |
| 抗GRP78抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-166351 | |
| 抗BiP抗体(#3183) | Cell Signaling Technologies | -- | |
| 抗剪切的Caspase-3抗体(#9661) | Cell Signaling Technologies | -- | |
| 抗nNOS抗体(#4231) | Cell Signaling Technologies | -- | |
| 抗SOD1抗体(#37385) | Cell Signaling Technologies | -- | |
| 抗CA II抗体(G-2) | Santa Cruz Biotechnology | sc-48351 | |
| 抗NF-κB p65抗体(D14E12) | Cell Signaling Technologies | 8242 | |
| 抗CA XII抗体(A-3) | Santa Cruz Biotechnology | sc-374313 | |
| 抗CA IX抗体(PA5-77885) | Invitrogen | -- | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-81178 | |
| 免疫荧光 | 抗βIII微管蛋白抗体 | Santa Cruz Biotechnology | -- |
| 抗NeuN抗体 | Elabscience | -- | |
| 抗CRM1抗体(C-1) | Santa Cruz Biotechnology | sc-74454 | |
| Alexa-488偶联二抗 | Jackson Laboratories | -- | |
| Alexa-546偶联二抗 | Jackson Laboratories | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外OGD/Rx模型 | 神经元类型和来源(大鼠或小鼠)、OGD时长(3小时)、复氧时长(21小时)、培养基成分、缺氧装置 阅读提示:Methods 3.2 Primary cortical neurons和3.3 Treatments |
| 药物处理 | C18浓度(3 nM、10 nM、30 nM、100 nM)、预处理时间(16小时)、给药时机(预处理或OGD期间)、溶剂对照(20% DMSO) 阅读提示:Methods 3.3 Treatments和Results第1.2节 |
| 细胞活力检测 | MTT浓度(0.5 mg/mL)、孵育时间(1小时)、检测波长(540 nm) 阅读提示:Methods 3.4 Cell viability assay |
| 基因敲除小鼠 | Car9基因敲除策略(插入PGK-NEO cassette)、小鼠遗传背景(C57BL/6JOlaHsd) 阅读提示:Results第1.2节和Methods 3.1 Animals |
| 体内tMCAO模型 | 大鼠品系(Sprague Dawley)、缺血时间(100分钟)、C18剂量(5 mg/kg)和给药方式(脑室内注射)、给药时间点(缺血后100分钟和3小时) 阅读提示:Methods 3.6 Transient middle cerebral artery occlusion (tMCAO) and drug administration |
| 梗死体积评估 | 切片厚度(40 μm)、染色方法(Nissl染色)、计算方式(面积×厚度,并校正水肿) 阅读提示:Methods 3.8 Evaluation of the infarct volume |
| 神经功能评分 | 一般神经功能评分(包括毛发、耳位、眼况、姿势等)和局灶评分(体对称、步态、攀爬等)的具体标准 阅读提示:Methods 3.7 Neurological scores |
| 蛋白表达分析 | 蛋白提取方法和裂解液成分、SDS-PAGE电泳条件、抗体稀释比例、内参(β-actin) 阅读提示:Methods 3.5 Tissue processing, immunostaining, and confocal immunofluorescence |