细胞活力测定
评估KMUP-3对RAW264.7巨噬细胞的细胞毒性。
RAW264.7细胞与不同浓度KMUP-3孵育24小时,MTT法检测细胞活力。
Xanthine Derivative KMUP-3 Alleviates Periodontal Bone Resorption by Inhibiting Osteoclastogenesis and Macrophage Pyroptosis.
体外RAW264.7细胞实验验证抗破骨、抗炎、抗焦亡作用,体内大鼠结扎牙周炎模型验证骨保护效果,包含Western blot、ELISA、micro-CT等多层级验证。
RANKL预处理的RAW264.7巨噬细胞 结扎诱导的实验性牙周炎大鼠模型
RAW264.7细胞系(BCRC6001) RANKL浓度20 ng/mL,预处理24小时 Pg-LPS浓度1 μg/mL KMUP-3浓度1, 5, 10 μM 体内实验:30只雄性Wistar大鼠,分为5组,给药剂量KMUP-3 1 mg/kg,DOX 20 mg/kg,腹腔注射每日一次,持续30天
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估KMUP-3对RAW264.7巨噬细胞的细胞毒性。
RAW264.7细胞与不同浓度KMUP-3孵育24小时,MTT法检测细胞活力。
建立RANKL预处理的RAW264.7细胞模型,并观察Pg-LPS对破骨细胞形成的影响。
RAW264.7细胞在分化培养基中用RANKL(20 ng/mL)预处理24小时,然后加入Pg-LPS(1 μg/mL)和不同浓度KMUP-3共培养。
检测破骨细胞形成和活性。
细胞固定后进行TRAP染色,计数TRAP阳性多核细胞(≥3个核),并测定TRAP活性。
评估破骨细胞成熟和多核化。
细胞固定、透化、封闭后,用phalloidin(Alexa Fluor Plus 647)染色,共聚焦显微镜观察并定量F-actin环面积和核数。
检测KMUP-3对Pg-LPS诱导的NO产生的影响。
Griess试剂测定培养上清中亚硝酸盐积累。
检测KMUP-3对Pg-LPS诱导的炎症因子和iNOS分泌的影响。
收集条件培养基,ELISA检测iNOS、TNF-α、IL-6、MCP-1、IL-1β水平。
检测KMUP-3对TLR4/NF-κB通路和NLRP3炎症小体相关蛋白表达的影响。
收集细胞裂解液,SDS-PAGE分离,转膜,抗体孵育,ECL检测。
评估KMUP-3对结扎诱导牙周炎大鼠牙槽骨丢失的保护作用。
将30只雄性Wistar大鼠随机分为5组,结扎第二上颌磨牙,腹腔注射给药30天,收集龈沟液。
评估牙槽骨丢失程度。
扫描固定上颌骨样本,测量CEJ-ABC距离及骨体积/组织体积、骨小梁厚度、骨小梁分离度。
评估体内破骨细胞数量。
大鼠上颌骨组织切片进行TRAP染色,计数TRAP阳性破骨细胞。
评估体内炎症水平。
收集大鼠龈沟液,ELISA检测IL-1β水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞活力测定 | MTT粉末 | Sigma-Aldrich | M5655 |
| 细胞培养 | DMEM-F12培养基 | GIBCO BRL Life Technologies | -- |
| α-MEM培养基 | GIBCO BRL Life Technologies | -- | |
| 胎牛血清 | GIBCO BRL Life Technologies | -- | |
| 链霉素 | GIBCO BRL Life Technologies | -- | |
| 青霉素 | GIBCO BRL Life Technologies | -- | |
| 细胞刺激 | 牙龈卟啉单胞菌脂多糖 | InvivoGen | tlrl-pglps |
| 破骨细胞分化 | 重组小鼠RANKL | R&D Systems | 462-TEC-010 |
| TRAP染色 | TRAP染色试剂盒 | Sigma-Aldrich | 387A |
| 荧光染色 | 鬼笔环肽(Alexa Fluor Plus 647) | Invitrogen | -- |
| 封片 | 封片剂 | Dako | S3023 |
| ELISA | 小鼠iNOS ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-M0696 |
| 小鼠TNF-α ELISA试剂盒 | R&D Systems | DY410 | |
| 小鼠IL-6 ELISA试剂盒 | R&D Systems | DY406 | |
| 小鼠MCP-1 ELISA试剂盒 | R&D Systems | DY479 | |
| 小鼠IL-1β ELISA试剂盒 | R&D Systems | DY401 | |
| 大鼠IL-1β ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-R0012 | |
| Western blotting | Bio-Rad蛋白检测试剂 | Bio-Rad | #5000002 |
| 抗iNOS抗体 | Abcam | ab15323 | |
| 抗TLR4抗体 | GeneTex | GTX13867 | |
| 抗TRAF6抗体 | Cell signaling | #67591 | |
| 抗磷酸化IκBα(Ser32/36)抗体 | Cell signaling | #9246 | |
| 抗IκBα抗体 | Abcam | ab7217 | |
| 抗NF-κB p65抗体 | Santa Cruz | sc-8008 | |
| 抗NF-κB p65(Ser276)抗体 | GeneTex | GTX54672 | |
| 抗NLRP3抗体 | Taiclone | tcba2712 | |
| 抗PYCARD抗体 | Taiclone | tcba1690 | |
| 抗Caspase 1抗体 | Proteintech | #22915-1-AP | |
| 抗IL-1β抗体 | GeneTex | GTX74034 | |
| 抗β-actin抗体 | Sigma-Aldrich | A5441 | |
| 二抗 | Merck Millipore | -- | |
| 增强化学发光试剂 | Merck Millipore | -- | |
| 动物实验 | 甘油 | Sigma-Aldrich | G2025 |
| 多西环素 | Sigma-Aldrich | D3072 | |
| 滤纸条(Periopaper) | ProFlow Inc. | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与刺激 | RAW264.7细胞系(BCRC6001);培养基DMEM-F12含10% FBS;分化培养基α-MEM含1% FBS;RANKL浓度20 ng/mL预处理24 h;Pg-LPS浓度1 μg/mL;KMUP-3浓度1, 5, 10 μM;加药顺序:KMUP-3提前1 h加入 阅读提示:Methods 2.2, 2.3, 2.5; Figure 1C |
| 破骨细胞形成检测 | TRAP染色试剂盒(Sigma-Aldrich 387A);TRAP阳性多核细胞定义为≥3个核;TRAP活性检测条件:50 mM柠檬酸缓冲液,10 mM酒石酸钠,3.7 mM 4-硝基苯基磷酸酯,37°C,30 min,405 nm读取吸光度 阅读提示:Methods 2.4; Figure 1D-F |
| NO和炎症因子检测 | Griess试剂成分(1%磺胺,0.1% N-1-萘基乙二胺二盐酸盐);ELISA试剂盒货号:iNOS (E-EL-M0696), TNF-α (DY410), IL-6 (DY406), MCP-1 (DY479), IL-1β (DY401) 阅读提示:Methods 2.6, 2.7; Figures 2D,E, 3E-H |
| Western blot | 抗体列表及稀释比(文中未明确说明稀释比);蛋白质分离SDS-PAGE 10%-12%;ECL检测;ImageJ定量 阅读提示:Methods 2.8; Figures 2F, 3A,C, 4A,E |
| 动物模型 | 动物品系:雄性Wistar大鼠,4周龄,180-200 g;分组:Sham, KMUP-3 (1 mg/kg), Ligature, Ligature+KMUP-3, Ligature+DOX (20 mg/kg);给药途径:腹腔注射,每日1次,持续30天;结扎位置:上颌第二磨牙 阅读提示:Methods 2.9; Figure 5 |
| 骨微结构和组织学分析 | micro-CT设备:SkyScan 1076;参数测量:CEJ-ABC距离、BV/TV、Tb.Th、Tb.Sp;TRAP染色切片厚度5 μm;统计分析方法:one-way ANOVA, Tukey's post hoc, p<0.05 阅读提示:Methods 2.10, 2.11; Figure 5 |