体内ICH模型建立与神经元死亡检测
确认ICH超急性期神经元发生铁死亡
通过纹状体注射自体血建立ICH小鼠模型,在不同时间点(3、6、12小时)检测凋亡标志物(cleaved caspase 9)、PI染色、MDA含量和线粒体形态,并使用Fer-1验证铁死亡
Fto-dependent Vdac3 m6A Modification Regulates Neuronal Ferroptosis Induced by the Post-ICH Mass Effect and Transferrin.
文中未明确说明
原代皮层神经元 ICH小鼠模型(自体血注射) ICH占位效应小鼠模型(水凝胶注射)
体内ICH模型采用30 μL自体血注射至纹状体,占位效应模型注射水凝胶 体外使用50 μmol/L Hemin处理6小时,静水压60 kPa维持6小时 Fto过表达通过AAV9-hSyn病毒注射纹状体,或质粒转染原代神经元 Vdac3 m6A位点突变(GAC至GCC)用于功能验证 神经元铁死亡检测指标:MDA含量、Gpx4蛋白、LPO水平、线粒体形态(TEM)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认ICH超急性期神经元发生铁死亡
通过纹状体注射自体血建立ICH小鼠模型,在不同时间点(3、6、12小时)检测凋亡标志物(cleaved caspase 9)、PI染色、MDA含量和线粒体形态,并使用Fer-1验证铁死亡
验证血肿占位效应和转铁蛋白是否诱导神经元死亡
使用水凝胶注射模拟占位效应,注射自体血和转铁蛋白,通过PI染色评估神经元死亡
验证静水压和转铁蛋白对神经元铁死亡的影响
原代皮层神经元分别接受hemin处理模拟脑出血环境,静水压处理模拟占位效应,检测LPO、Gpx4蛋白、铁含量
探讨神经元铁死亡是否伴随m6A水平变化及Fto表达变化
使用Dot blot和免疫荧光检测脑组织和神经元中的m6A水平,Western blot检测Fto蛋白水平
系统性鉴定与铁死亡相关的m6A甲基化靶基因
对ICH小鼠脑组织进行纳米孔直接RNA测序,通过m6A峰分析、motif分析、差异表达基因和KEGG通路富集,筛选出Vdac3
验证Vdac3是Fto调控的m6A修饰靶点,并探究其功能
通过MeRIP验证Vdac3 mRNA m6A水平变化,RIP验证Fto与Vdac3 mRNA的结合,构建Vdac3突变体(GAC→GCC)确认m6A位点功能
验证Fto过表达是否能减轻神经元铁死亡
在体外原代神经元中过表达Fto,在体内通过AAV在神经元特异性过表达Fto,然后检测铁死亡指标和神经元死亡
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型 | 异氟烷蒸发器 | RWD | -- |
| 立体定位仪 | RWD | 7100-S | |
| 微量进样器 | Hamilton | 1705 | |
| 原代神经元培养 | 胰蛋白酶 | Gibco | 25200072 |
| 培养基 | Gibco | A3653401 | |
| 体外ICH模型 | 血红素 | MCE | HY19424 |
| 药物处理 | Ferrostatin-1 | Sigma Aldrich | SML0583 |
| 质粒转染 | Lipofectamine 3000 | Thermo Fisher Scientific | L3000015 |
| 动物实验 | AAV-hSyn-Fto-3FLAG-MCS-SV40 (AAV9) | Genechem | -- |
| AAV-hSyn-3FLAG-MCS-SV40 (AAV9) | Genechem | -- | |
| 直接RNA测序 | Oxford Nanopore DRS试剂盒 | Oxford Nanopore Technologies | SQK-RNA002 |
| 细胞死亡检测 | 碘化丙啶 | Sigma-Aldrich | -- |
| 免疫荧光 | 小鼠抗NeuN抗体 | Abcam | ab104224 |
| 兔抗Trf抗体 | Abcam | ab313583 | |
| 兔抗Fto抗体 | Abcam | ab280081 | |
| 兔抗m6A抗体 | Synaptic Systems | 202003 | |
| 二抗 | Thermo Fisher Scientific | A-21206 | |
| 二抗 | Thermo Fisher Scientific | A-31570 | |
| MDA测定 | MDA裂解液 | Abcam | ab118970 |
| Western blot | BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | P0012 |
| 硝酸纤维素膜 | Millipore | -- | |
| 抗β-actin抗体 | CST | ab8226 | |
| 抗转铁蛋白抗体 | Abcam | ab313583 | |
| 兔抗FTO抗体 | Abcam | ab280081 | |
| 兔抗VDAC3抗体 | Invitrogen | PA5-87973 | |
| 二抗 | Santa Cruz | -- | |
| qRT-PCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | 15596026CN |
| High-Capacity RNA-to-cDNA™ 试剂盒 | Invitrogen | k1622 | |
| PowerUp™ SYBR™ Green 预混液 | Invitrogen | A25742 | |
| RIP | RNA免疫沉淀试剂盒 | BersinBio | Bes5101 |
| MeRIP | N6-甲基化RNA免疫沉淀试剂盒 | BersinBio | Bes5203 |
| 脂质过氧化物检测 | 脂质过氧化物试剂 | Invitrogen | -- |
| Dot blot | Dynabeads mRNA纯化试剂盒 | Invitrogen | -- |
| Amersham Hybond N+ 膜 | -- | -- | |
| 铁含量测定 | 亚铁离子比色法测定试剂盒 | Elabscience | E-BC-K881-M |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | C57小鼠品系、体重、年龄、性别;立体定位坐标;自体血注射量(30 μL)、注射速率(0.5 μL/min)、深度(3.0和3.5 mm) 阅读提示:Materials and Methods:Animals, ICH Mouse Model |
| 占位效应模型 | 水凝胶制备条件(N-异丙基丙烯酰胺1 g + 19 mL蒸馏水,加入1 mL 1.2 μg/mL过硫酸铵,60°C氮气下振荡30 min);注射体积和位置 阅读提示:Materials and Methods:ICH Mass Effect Mouse Model |
| 体外模型 | 原代神经元培养条件(取材天数、消化时间、培养基更换频率);hemin浓度(50 μmol/L)和处理时间(6 h);静水压压力(60 kPa)、升压时间(10 min)、维持时间(6 h) 阅读提示:Materials and Methods:Primary Neuron Culture, In vitro ICH Model, Hydrostatic Pressure Model |
| 药物处理 | Fer-1剂量(2 mg/kg)、给药途径(腹腔注射)、给药时间(ICH后立即)、溶剂(DMSO和0.9%生理盐水) 阅读提示:Materials and Methods:Drug Administration |
| 质粒转染 | Fto过表达质粒和Vdac3突变体质粒来源(Genechem);转染试剂Lipofectamine 3000使用比例(1:2)、孵育时间(5 min)、转染时间(72 h) 阅读提示:Materials and Methods:Plasmid Intervention in vitro |
| AAV注射 | AAV血清型(AAV9)、启动子(hSyn)、注射体积(0.5 μL)、注射速率(60 nL/min)、坐标(前囟后0.8 mm、中线旁2 mm、深度-3.5 mm)、表达时间(3周) 阅读提示:Materials and Methods:Adeno-associated Virus Delivery |
| Vdac3 m6A位点突变 | Vdac3 mRNA上m6A基序(GAC)突变位点(第4个GAC位点突变为GCC) 阅读提示:Results:Vdac3 is Implicated in the Ferroptosis Pathway Modulated by m6A Methylation, 图7H |
| 直接RNA测序 | 测序平台(PromethION)、试剂盒(SQK-RNA002)、分析软件及参数(Guppy 3.2.6, Fclmr2 0.1.2, Minimap2 2.17-r941, Tombo, MINES) 阅读提示:Materials and Methods:Direct RNA Sequencing |