ATG7敲低对PB-HSPCs髓系分化的影响
探究ATG7在人类髓系/粒细胞分化中对MPs增殖的作用
使用慢病毒shRNA敲低PB-HSPCs中的ATG7,经IL-3和G-CSF诱导髓系分化,通过流式、细胞周期和凋亡检测评估MPs增殖。
Autophagy is essential for human myelopoiesis.
包含体外细胞系、CRISPR敲除、shRNA敲低、过表达回补、RNA-seq、CoIP、共定位分析及CFU等多种独立证据层级,并进行了功能与机制验证。
人外周血动员的CD34+ HSPCs H1人胚胎干细胞(H1 hESCs)及其来源的HSPCs MS5共培养体系
ATG7敲低或敲除的效率验证 髓系分化过程中MPs的增殖能力与细胞周期分布 p53蛋白水平及p53信号通路相关基因表达 自噬活性(LC3B斑点)及Baf-A1抑制自噬的影响 ATG7突变体(ATG7▲C)是否恢复自噬及MP增殖
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究ATG7在人类髓系/粒细胞分化中对MPs增殖的作用
使用慢病毒shRNA敲低PB-HSPCs中的ATG7,经IL-3和G-CSF诱导髓系分化,通过流式、细胞周期和凋亡检测评估MPs增殖。
揭示ATG7敲低导致MPs增殖缺陷的分子机制
对SCR或shATG7转导的PB-HSPCs分化第7天的mCherry+CD45+细胞进行RNA-seq,分析差异表达基因及通路富集。
验证ATG7在hESC造血分化中对MPs增殖的必要性
通过CRISPR/Cas9在H1 hESCs中敲除ATG7,利用单层分化方案获得HSPCs,再经IL3/G-CSF诱导或MS5共培养或CFU实验检测MPs生成与增殖。
确认ATG7通过自噬依赖方式调控MPs增殖
在ATG7−/− hESCs中通过Tet-on系统过表达全长ATG7或自噬缺陷突变体ATG7▲C,检测自噬恢复情况及MPs增殖;另在H1细胞过表达ATG7进行CFU和MS5共培养。
证明自噬通过降解p53调控MPs增殖
通过WB检测ATG7缺陷细胞中p53蛋白水平;通过CoIP检测p53与LC3B结合;通过免疫荧光检测p53与LAMP2共定位;使用Baf-A1抑制自噬观察p53积累及增殖影响;并通过shRNA敲低p53看是否回救增殖缺陷。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | mTeSR1培养基 | Stem Cell Technologies | -- |
| 基质胶 | BD Biosciences | -- | |
| 基因编辑 | PX459载体 | -- | -- |
| Accutase酶 | Sigma | -- | |
| Y-27632 | Sigma | -- | |
| 嘌呤霉素 | Gibco | -- | |
| 多西环素 | Beyotime | -- | |
| 基因敲低 | pLKO.1-mCherry/GFP载体 | -- | -- |
| SCGM培养基 | CellGenix | -- | |
| 干细胞因子 | PeproTech | -- | |
| 促血小板生成素 | PeproTech | -- | |
| Flt3配体 | PeproTech | -- | |
| 造血分化 | 骨形态发生蛋白4 | PeproTech | -- |
| 激活素A | Sino Biological | -- | |
| 碱性成纤维细胞生长因子 | Sino Biological | -- | |
| CHIR99021 | Selleck | -- | |
| LY294002 | Selleck | -- | |
| A8301 | Selleck | -- | |
| IWR-1-endo | Selleck | -- | |
| 血管内皮生长因子 | Sino Biological | -- | |
| SB431542 | Selleck | -- | |
| 白细胞介素3 | Sino Biological | -- | |
| 白细胞介素6 | Sino Biological | -- | |
| 髓系分化 | RPMI 1640培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | VISTECH | -- | |
| GlutaMAX添加剂 | Gibco | -- | |
| 粒细胞集落刺激因子 | Sino Biological | -- | |
| 人白细胞介素3 | Sino Biological | -- | |
| 流式细胞术 | CytoFLEX流式细胞仪 | Beckman | -- |
| 细胞周期分析 | Click-iT EdU Pacific Blue流式细胞术检测试剂盒 | Invitrogen | -- |
| DAPI | Beyotime | -- | |
| 细胞周期与凋亡分析试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 凋亡分析 | Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒 | Vazyme | -- |
| qRT-PCR | RaPure总RNA微量提取试剂盒 | Magen | -- |
| HiScript II第一链cDNA合成试剂盒 | Vazyme | -- | |
| ChamQ SYBR qPCR预混液 | Vazyme | -- | |
| CFX96实时荧光定量PCR仪 | Bio-Rad | -- | |
| 免疫共沉淀 | Triton X-100 | Sigma | -- |
| 甘油 | DAMAO | -- | |
| 蛋白A/G琼脂糖珠 | Novex | -- | |
| CFU实验 | Methocult H4435甲基纤维素培养基 | Stem Cell Technologies | -- |
| 吉姆萨染色 | May-Grunwald-Giemsa染液 | Baso | -- |
| MS5共培养 | DuP-697 | BioVision | -- |
| 白细胞介素2 | PeproTech | -- | |
| 白细胞介素15 | Sino Biological | -- | |
| OP9-hDL4共培养 | 白细胞介素7 | Sino Biological | -- |
| 免疫荧光 | LSM800共聚焦显微镜 | Carl Zeiss | -- |
| RNA-seq | MoFlo Astrios流式分选仪 | Beckman | -- |
| TRIzol试剂 | Invitrogen | -- | |
| VAHTS mRNA-seq V3文库制备试剂盒(Illumina) | Vazyme | -- | |
| NextSeq 500 Mid Output测序试剂盒 | Illumina | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| ATG7敲低与髓系分化 | PB-HSPCs的分离或冻存来源;慢病毒感染前培养时间30 h;感染时间36 h;MOI=100或150;髓系分化培养基中G-CSF和hIL3浓度分别为100 ng/mL和20 ng/mL;分化时间及检测时间点 阅读提示:Methods: Gene knockdown in PB-HSPCs or hESC-HSPCs; Myeloid/granulocyte differentiation; Figure 1 legend |
| ATG7敲除hESCs生成与分化 | H1 hESCs的基因敲除效率;单层造血分化方案中细胞因子组合及时间;髓系分化及MS5共培养的细胞数和因子浓度;CFU实验接种细胞数和培养时间 阅读提示:Methods: Gene knockout and overexpression in hESCs; Hematopoietic differentiation with hESCs; MS5 co-culture assay; CFU assay; Figure 3 legend |
| 自噬活性检测 | Baf-A1处理浓度和时间(50 nM,2 h);LC3B斑点的观察和分析参数 阅读提示:Figure 1B-1C legend; Methods: Immunofluorescence and data processing |
| p53蛋白检测与机制验证 | 分化天数(第6天);CoIP中细胞裂解量和抗体;免疫荧光共定位分析中Manders'系数计算 阅读提示:Figure 5A-5E legend; Methods: CoIP; Immunofluorescence and data processing |
| RNA-seq分析 | 取样时间点(第7天);分选标记(mCherry+CD45+);差异基因筛选阈值;测序平台 阅读提示:Figure 2A legend; Methods: RNA-seq and analysis |