下丘脑下行通路抑制交感张力传播糖皮质激素诱导的内皮损伤和股骨头坏死

Inhibition of sympathetic tone via hypothalamic descending pathway propagates glucocorticoid-induced endothelial impairment and osteonecrosis of the femoral head.

作者信息Wenkai Shao, Bo Wang, Ping Wang, Shuo Zhang, Song Gong, Xiaodong Guo, Deyu Duan, Zengwu Shao, Weijian Liu, Lei He, Fei Gao, Xiao Lv, Yong Feng
PMID39516484
期刊Bone Res
发布时间2024-11-08
DOI10.1038/s41413-024-00371-3

实验完整度

包含临床样本、小鼠模型、细胞共培养和转录组测序等多个独立证据层级,并进行了功能验证(RU486、6-OHDA、Adrb2敲除、PFKFB3过表达)和机制验证(信号通路、ChIP)。

主要模型

C57BL/6小鼠MPS诱导的GC-ONFH模型 人股骨头样本和血清(ARCO分期) 原代小鼠股骨头内皮细胞 小鼠骨髓间充质干细胞(BMSCs)

重点核对

MPS剂量和给药方案:20mg/kg肌注,每周前3天,连续3周 RU486在PVN的微量注射:1mg/mL,每侧0.25μL,隔天一次,持续6周 6-OHDA交感神经切除术:首次100mg/kg,第二次250mg/kg,腹腔注射 Adrb2激动剂克伦特罗剂量:2mg/kg皮下注射,隔天一次 AAV-Pfkfb3尾静脉注射:1×10^11 vg(100μL)

摘要

股骨头坏死(ONFH)是糖皮质激素(GC)治疗的常见并发症。最新进展表明,交感神经调节骨稳态,而GC降低交感张力。在此,我们表明交感张力显著降低与GC诱导的ONFH发病机制密切相关。GC激活糖皮质激素受体(GR)但阻碍下丘脑室旁核(PVN)神经元上盐皮质激素受体(MR)的激活。这破坏了皮质类固醇受体(GR/MR)的平衡,随后减少了PVN中的交感输出。血管内皮细胞通过引发成年雄性小鼠每日注射甲泼尼龙(MPS)3天后内皮细胞凋亡,对交感张力抑制迅速作出反应,我们发现MPS处理的ONFH小鼠股骨头中H型血管显著减少。重要的是,在PVN中使用GR抑制剂(RU486)治疗可促进MR的激活并重新平衡GR和MR的比例,从而有效增强交感输出,表现为PVN和交感节后神经元中酪氨酸羟化酶表达增加,以及MPS处理小鼠血清和股骨头骨髓中去甲肾上腺素水平升高。重新平衡皮质类固醇受体可减轻GC诱导的内皮损伤和ONFH,并促进股骨头中血管生成与成骨偶联,而这些效应被6-OHDA化学交感神经切除术或肾上腺素能受体-β2(Adrb2)敲除所消除。此外,在体内激活Adrb2信号足以挽救GC诱导的ONFH表型。机制上,去甲肾上腺素通过Adrb2-环磷酸腺苷反应元件结合蛋白(CREB)信号增加关键糖酵解基因6-磷酸果糖-2-激酶/果糖-2,6-二磷酸酶3(PFKFB3)的表达。内皮特异性过表达PFKFB3可减轻内皮损伤并防止MPS处理的Adrb2敲除小鼠发生严重骨坏死。因此,GC通过下丘脑下行通路抑制交感张力,进而作为GC诱导ONFH的介质。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
糖皮质激素如何通过下丘脑交感下行通路导致股骨头坏死?
核心机制
GC破坏下丘脑室旁核GR/MR平衡,抑制交感输出,导致去甲肾上腺素减少,通过Adrb2/CREB信号下调PFKFB3介导的内皮糖酵解,从而损害H型血管生成和成骨偶联。
主要证据
临床样本显示TH+神经减少和NE降低;小鼠模型显示MPS降低交感张力并诱导内皮凋亡;RU486恢复交感输出改善骨微结构;6-OHDA和Adrb2敲除消除保护作用;Adrb2激动剂和PFKFB3过表达挽救表型。
研究意义
本研究揭示下丘脑-骨轴在GC诱导ONFH中的作用,为治疗提供新策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本分析

观察GC诱导ONFH患者交感神经系统变化及其与病理的关联。

收集临床血清和股骨头标本,通过ELISA检测神经递质,H&E和免疫荧光评估病理和TH+神经密度。

2

小鼠模型建立与表型分析

验证GC处理是否诱导小鼠ONFH并伴随交感神经功能障碍。

12周龄雄性C57BL/6小鼠注射MPS或溶剂,通过μCT、H&E和免疫荧光评估骨微结构和交感神经。

3

下丘脑PVN中GR/MR平衡的操纵

检验PVN中GR抑制能否恢复交感输出并改善ONFH。

通过立体定位注射RU486至PVN,检测核GR/MR、pCREB/TH表达、血清和骨髓NE水平及骨微结构。

4

交感神经切除术对ONFH的影响

确定交感神经完整性的作用。

用6-OHDA化学切除交感神经,评估MPS和RU486治疗效果。

5

Adrb2激动剂和敲除实验

验证Adrb2在交感调节中的作用。

使用克伦特罗激活Adrb2,或使用Adrb2敲除小鼠,评估对ONFH的影响。

6

内皮细胞代谢和信号机制研究

阐明NE通过Adrb2/CREB/PFKFB3信号调控内皮糖酵解的机制。

分离股骨头内皮细胞,RNA-seq、qRT-PCR、Western blot、Seahorse和代谢物检测,以及siRNA、抑制剂和过表达实验。

7

内皮PFKFB3过表达在体内的作用

评估内皮PFKFB3过表达是否挽救Adrb2敲除小鼠的GC诱导ONFH。

通过AAV-Tie2载体过表达PFKFB3,进行μCT、H&E和免疫荧光分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
甲泼尼龙Pfizer--
RU486Sigma-AldrichM8046
6-羟基多巴胺Sigma-AldrichH4381
克伦特罗----
EBM-2培养基Lonza00190860
胎牛血清Gibco--
青霉素/链霉素Gibco--
内皮补充物和生长因子LonzaCC-4176
胶原酶ASigma-AldrichSCR136
Dynabeads羊抗大鼠IgGThermo Fisher Scientific11035
EMCN抗体Santa Cruzsc-65495
APC-CD31Biolegend160209
PE-Cy7-Ter119Biolegend116221
PE-Cy7-CD45Biolegend982310
DAPIServicebioG1407
RNA提取纯化试剂盒Tiangen BiotechDP432
VAHTS mRNA-seq v3建库试剂盒----
高灵敏度葡萄糖-6-磷酸检测试剂盒Sigma-AldrichMAK021
乳酸检测试剂盒Sigma-AldrichMAK064
Seahorse XFe96细胞外通量分析仪Seahorse Bioscience--
Matrigel基质胶BD Bioscience--
茜素红S染液BeyotimeC0148S
成骨诱导培养基CyagenMUXMT-90021
TRIzol试剂Invitrogen15596026
Taq SYBR Green PCR预混液InvitrogenA25777
PVDF膜----
增强化学发光底物试剂盒Pierce Biotechnology32132
β-肌动蛋白抗体Proteintech81115-1-RR
cAMP ELISA试剂盒Cayman Chemical581001
PKA激酶检测试剂盒Abcamab139435
RiboFECT CP转染试剂盒RiboBioC10511
ChIP试剂盒Thermo Fisher Scientific26156
Ad-Pfkfb3腺病毒Huameng Biotechnology--
rAAV-mTie2-Pfkfb3-FLAG-GFP----
显微CT(SkyScan 1176)Bruker--
荧光显微镜(Olympus BX51)Olympus--
共聚焦显微镜(Zeiss LSM800)Zeiss--
ImageJ软件NIH--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
GC诱导ONFH模型建立
MPS剂量、给药方式(肌注)、给药频率(每周前3天,共3周)、小鼠品系(C57BL/6J)、年龄(12周龄)、性别(雄性)
阅读提示:见Materials and methods中“Animals and in vivo treatments”及Figure 1f
PVN微量注射
RU486剂量(1mg/mL,0.5μL)、注射体积(0.25μL/侧)、注射频率(隔天一次,持续6周)、立体定位坐标(-0.9mm,±0.2mm,3.6mm)、麻醉和术后护理
阅读提示:见“Stereotaxic procedure”及Figure 2g
交感神经切除术
6-OHDA剂量(首次100mg/kg,第二次250mg/kg)、给药途径(腹腔注射)、时间(MPS前一周)、维持频率(每4周)
阅读提示:见“Animals and in vivo treatments”及Figure 3a
Adrb2激动剂处理
克伦特罗剂量(2mg/kg)、给药途径(皮下)、频率(隔天一次,6周)
阅读提示:见“Animals and in vivo treatments”及Figure 4j
内皮PFKFB3过表达
AAV剂量(1×10^11 vg, 100μL)、给药途径(尾静脉)、小鼠年龄(8周龄)、转染时间(1个月)
阅读提示:见“Adenovirus transduction of ECs”及Figure S14a