ATAC-seq分析染色质可及性差异
鉴定HCC与正常组织间差异可及的染色质区域(DARs)及其相关信号通路和转录因子。
对4对HCC肿瘤和癌旁正常组织进行ATAC-seq测序,使用MAnorm2算法识别DARs,并进行KEGG通路富集和转录因子基序分析。
Integrative analysis based on ATAC-seq and RNA-seq reveals a novel oncogene PRPF3 in hepatocellular carcinoma.
包含ATAC-seq和RNA-seq多组学分析、体外细胞功能实验(增殖、迁移、侵袭)、体内小鼠移植瘤实验及ChIP-seq验证,功能与机制验证完整。
HCC细胞系(MHCC-97h、Huh7、HepG2、Jhh-7) 正常肝细胞系L02 BALB/c裸鼠皮下移植瘤模型 HCC患者肿瘤及癌旁组织样本
ATAC-seq使用4对HCC肿瘤及癌旁组织样本 siRNA敲低PRPF3和ZNF93(siPRPF3-1/2, siZNF93-1/2) PRPF3和ZNF93过表达慢病毒感染HCC细胞 细胞增殖、迁移和侵袭检测(CCK-8、EdU、Transwell、划痕实验) 体内实验:4周龄雌性BALB/c裸鼠,每组4只,皮下注射6×10^6个细胞
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定HCC与正常组织间差异可及的染色质区域(DARs)及其相关信号通路和转录因子。
对4对HCC肿瘤和癌旁正常组织进行ATAC-seq测序,使用MAnorm2算法识别DARs,并进行KEGG通路富集和转录因子基序分析。
识别HCC中差异表达基因(DEGs),并与DARs关联。
从TCGA获取LIHC RNA-seq数据(371肿瘤,50正常),使用edgeR筛选DEGs(|log2FC|>1, p<0.05),并与DARs进行相关性分析。
验证PRPF3在HCC中的表达水平及其与预后的关系。
通过TCGA数据、qRT-PCR、Western blot和免疫组化染色检测PRPF3表达,并利用K-M曲线分析预后。
验证PRPF3对HCC细胞增殖、迁移和侵袭的影响。
在MHCC-97h和Huh7细胞中敲低或过表达PRPF3,通过CCK-8、集落形成、EdU、Transwell和划痕实验检测细胞功能。
验证PRPF3过表达对肿瘤生长的影响。
将稳定过表达PRPF3的Huh7细胞皮下注射到裸鼠,比较肿瘤体积和重量。
预测并验证调控PRPF3的上游转录因子。
使用MEME FIMO扫描DARs中的转录因子结合位点,筛选结合于PRPF3启动子区域的候选因子,并通过ChIP-seq数据和表达相关性验证ZNF93。
验证ZNF93对HCC细胞增殖、迁移和侵袭的影响。
在MHCC-97h和Huh7细胞中敲低或过表达ZNF93,进行CCK-8、集落形成、EdU、Transwell和划痕实验,并评估体内肿瘤生长。
验证PRPF3是否介导ZNF93的促癌作用。
在ZNF93过表达的Huh7细胞中敲低PRPF3,检测细胞的增殖、迁移和侵袭能力。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| ATAC-seq测序 | FASTX | -- | -- |
| Bowtie2 | -- | -- | |
| SAMtools | -- | -- | |
| ATAC-seq数据比对 | MACS2 | -- | -- |
| 差异可及性分析 | MAnorm2 | -- | -- |
| 基因注释 | ChIPseeker | -- | -- |
| 通路富集分析 | ClusterProfiler | -- | -- |
| 基序发现 | HOMER | -- | -- |
| RNA-seq差异表达分析 | edgeR | -- | -- |
| 生存分析 | survival R包 | -- | -- |
| survminer | -- | -- | |
| 转录因子结合位点扫描 | MEME FIMO | -- | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 基因敲低转染 | 小干扰RNA | Genepharma | -- |
| 基因过表达转染 | 慢病毒 | OBIO | -- |
| qRT-PCR | TRIzol试剂 | Vazyme Biotech | -- |
| ExScript RT-PCR试剂盒 | TaKaRa | -- | |
| SYBR Green预混液 | Vazyme Biotech | -- | |
| EdU增殖检测 | EdU检测试剂盒 | Elabscience | #E-CK-A376 |
| 蛋白提取 | RIPA裂解液 | -- | -- |
| 蛋白分离 | SDS-PAGE凝胶电泳 | -- | -- |
| 蛋白转移 | PVDF膜 | -- | -- |
| 蛋白检测 | 化学发光检测法 | -- | -- |
| 图像定量 | ImageJ软件 | -- | -- |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂 | -- | -- |
| 细胞侵袭实验 | 基质胶 | -- | -- |
| 显微镜观察 | 倒置显微镜 | -- | -- |
| 统计绘图 | GraphPad Prism 8.0 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 样本收集 | 肿瘤和癌旁组织样本数量(4对),距离肿瘤边缘>1cm,患者性别、年龄、病理类型 阅读提示:Methods - Samples, Table 1 |
| ATAC-seq | 测序平台(上海博奥生物技术公司),比对参数(Bowtie2,映射质量≥30),峰识别(MACS2),差异分析(MAnorm2,M值阈值>0.5或<-0.5) 阅读提示:Methods - ATAC-seq data processing and analysis |
| RNA-seq分析 | TCGA LIHC数据(371肿瘤,50正常),差异表达阈值(|log2FC|>1, p<0.05) 阅读提示:Methods - RNA-seq data processing |
| 细胞培养和转染 | 细胞系(MHCC-97h, Huh7, HepG2, Jhh-7, L02),培养基(DMEM+10%FBS),siRNA序列(siPRPF3-1/2, siZNF93-1/2, siNC),慢病毒构建(OBIO) 阅读提示:Methods - Cell lines and transfection, Table S1/S2 |
| qRT-PCR和Western blot | 内参基因(β-actin),RNA提取试剂(TRIzol),逆转录试剂盒(ExScript RT-PCR kit),SYBR Green Master Mix,抗体信息 阅读提示:Methods - Quantitative RT-PCR and Western blotting, Table S3/S4 |
| 细胞增殖和迁移实验 | CCK-8(3000细胞/孔,孵育2h),集落形成(1000细胞/孔,14天),EdU检测,Transwell(4×10^4细胞,24h),划痕实验(观察0,24,48h) 阅读提示:Methods - Cell proliferation, colony formation, and EdU incorporation assays; Cell migration and scratch assay |
| 体内实验 | 裸鼠品系(BALB/c,雌性,4周龄),每组数量(n=4),注射细胞数(6×10^6),测量时间(第14天),肿瘤体积公式 阅读提示:Methods - In vivo proliferation assay in mice |
| 转录因子预测 | MEME FIMO扫描参数,启动子区域(TSS上游2kb至下游100bp),筛选标准(结合位点位于启动子区域) 阅读提示:Methods - Identification of upstream transcription factors (TFs) |