Raptor表达和mTORC1信号改变
验证在P301S小鼠海马中Raptor表达和mTORC1活性是否改变。
通过Western blot和免疫荧光检测不同月龄(3、6、9个月)P301S小鼠和WT小鼠海马中Raptor表达,并检测mTORC1信号通路组分(p-mTOR、p-P70 S6K)和自噬标志物(LC3、P62)。
USP9X-mediated deubiquitination of Raptor contributes to autophagy impairment and memory deficits in P301S mice.
包含体外细胞实验(HEK293T、HEK293T-P301S、HEK293T-Tau)和体内动物模型(P301S小鼠)两个独立证据层级,并进行了功能验证(自噬、tau降解)和机制验证(USP9X去泛素化)。
P301S小鼠(tau蛋白病模型) HEK293T细胞 HEK293T-P301S细胞(表达P301S突变tau) HEK293T-Tau细胞(稳定表达GFP-Tau)
Raptor在P301S小鼠海马中的表达水平(6月龄和9月龄) Raptor敲低对mTORC1激活和自噬标志物(LC3-II/I、P62)的影响 USP9X与Raptor的相互作用(免疫共沉淀) WP1130对USP9X、Raptor、tau及自噬的影响 Raptor敲低对认知行为(NOR和MWM测试)的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证在P301S小鼠海马中Raptor表达和mTORC1活性是否改变。
通过Western blot和免疫荧光检测不同月龄(3、6、9个月)P301S小鼠和WT小鼠海马中Raptor表达,并检测mTORC1信号通路组分(p-mTOR、p-P70 S6K)和自噬标志物(LC3、P62)。
评估Raptor敲低对P301S小鼠认知功能、突触和神经元完整性的影响。
双侧向6月龄P301S小鼠海马CA3区注射AAV-shRaptor或对照病毒,1个月后进行行为学测试(NOR和MWM),并通过Western blot、电子显微镜、Golgi染色、Nissl染色和TUNEL染色评估突触、神经元和凋亡。
验证Raptor敲低是否通过激活自噬来减少tau积累。
分析海马组织中mTORC1活性、自噬标志物、自噬体数量、总tau和磷酸化tau水平,并使用sarkosyl分级、免疫组化和免疫荧光检测tau病理。
在细胞模型中验证Raptor对自噬和tau水平的影响。
在HEK293T和HEK293T-P301S细胞中瞬时转染Raptor过表达质粒或shRaptor,检测自噬标志物和tau水平。
研究USP9X是否通过去泛素化Raptor导致其水平升高。
通过qPCR、Western blot和免疫荧光检测Raptor mRNA和USP9X水平,通过免疫共沉淀检测USP9X和Raptor的相互作用。
验证抑制USP9X是否能促进自噬和tau降解,并证实通过Raptor和自噬依赖的机制。
在HEK293T-P301S细胞中,给予WP1130处理,检测USP9X、Raptor、自噬标志物和tau水平,并通过Raptor过表达或CQ处理进行回复实验。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| Opti-MEM培养基 | Invitrogen | -- | |
| Neofect转染试剂 | Neofect | TF201201 | |
| 药物处理 | WP1130 | MedChemExpress | HY-13264 |
| 氯喹 | Sigma-Aldrich | C6628 | |
| MG132 | MedChemExpress | HY-13259 | |
| 动物实验 | pAAV-U6-shRNA(Rptor)-CMV-EGFP-WPRE | OBIO Biotech | -- |
| pAAV-U6-shRNA(NC2)-CMV-EGFP-WPRE | OBIO Biotech | -- | |
| 细胞培养 | pLKO.1-shRNA-Raptor质粒 | Addgene | 1857 |
| EGFP-pRK5-HA-Raptor质粒 | Tsingke Biotechnology | -- | |
| EGFP-C1-P301S质粒 | OBIO Biotech | -- | |
| 免疫组化/免疫荧光 | DAB显色试剂 | Servicebio | G1212 |
| 免疫荧光 | DAPI染料 | Servicebio | G1012 |
| 抗荧光淬灭封片剂 | Servicebio | G1401 | |
| 三色多重荧光染色试剂盒 | RecordBio | RC0086-23R | |
| 尼氏染色 | 甲苯胺蓝试剂 | Servicebio | G1036 |
| TUNEL染色 | 一步法TUNEL原位凋亡检测试剂盒 | Elabscience | -- |
| 高尔基染色 | FD快速高尔基染色试剂盒 | FD Neuro Technologies | PK401 |
| 免疫共沉淀 | Protein A+G琼脂糖珠 | Beyotime | P2012 |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Thermo Fisher Scientific | 15596018 |
| qPCR | 逆转录试剂盒 | Takara | RR037 |
| 一步法SYBR PrimeScript PLUS RT-PCR试剂盒 | Takara | RR096A | |
| 蛋白质印迹 | RIPA裂解液 | Servicebio | G2006 |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime Biotechnology | -- | |
| 硝酸纤维素膜 | Whatman | 10600002 | |
| 快速封闭液 | epizyme | PS108 | |
| 快速剥离缓冲液 | cwbio | CW0056S | |
| ECL成像系统 | Clinx Science Instruments Co., Ltd. | 610007-8Q | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂 | Dojindo | -- |
| 电子显微镜 | JEM-1400透射电子显微镜 | JEOL LTD | -- |
| 行为分析 | MWZ-100系统 | Techman | -- |
| 图像采集 | OLYMPUS SV120扫描显微镜 | OLYMPUS | -- |
| 尼康光学显微镜 | Nikon | -- | |
| qPCR | ABI StepOnePlus实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型与立体定向注射 | P301S小鼠品系、年龄(6月龄)、性别(雄性)、注射部位(海马CA3区)、病毒类型和滴度、注射体积(500 nl)和注射速率(100 nl/min) 阅读提示:Materials and Methods: Animals, Stereotactic brain injection |
| 行为学测试 | 注射后时间(1个月)、NOR测试盒尺寸(50x50 cm)、熟悉和测试时间(5分钟)、MWM训练天数(5天)、平台位置、探针试验时长(60秒) 阅读提示:Materials and Methods: Behavior tests |
| 细胞培养与转染 | 细胞系(HEK293T、HEK293T-P301S、HEK293T-Tau)、培养基(DMEM+10% FBS)、转染试剂(Neofect)、质粒DNA量(1 µg)、转染时间(24-36小时) 阅读提示:Materials and Methods: Cell culture, transfection and plasmids |
| 药物处理 | WP1130浓度(5 µM)和处理时间(24小时)、CQ浓度(20 µM)、MG132浓度(20 µM)、CHX浓度(20 µg/ml) 阅读提示:Materials and Methods: Drug administration |
| 蛋白质印迹 | 一抗稀释度(见表1)、二抗稀释度、上样量、转膜条件、封闭条件 阅读提示:Materials and Methods: Protein extraction and Western blot; Table 1 |