鉴定调控山羊卵泡发育的功能性circRNA

Identification of functional circRNAs regulating ovarian follicle development in goats.

作者信息Jie Liu, Guanghang Feng, Conghui Guo, Zhihan Li, Dewu Liu, Guangbin Liu, Xian Zou, Baoli Sun, Yongqing Guo, Ming Deng, Yaokun Li
PMID39342142
发布时间2024-09-28
DOI10.1186/s12864-024-10834-w

实验完整度

包含RNA-seq转录组分析、qPCR/蛋白质印迹验证、以及细胞功能实验(EDU、流式细胞术)等多层级验证。

主要模型

雷州山羊大卵泡(直径>6 mm)和小卵泡(1 mm<直径<3 mm) 山羊卵泡颗粒细胞(GCs) 293T细胞

重点核对

circCFAP20DC过表达载体pLC5-circCFAP20DC的构建 circCFAP20DC过表达组与NC组的比较 细胞培养条件(90% DMEM/F12, 10% FBS, 1% PS) EdU实验(100 μM EDU孵育2小时) 细胞周期检测(流式细胞术,488 nm激发波长)

摘要

背景:环状RNA(circRNA)在哺乳动物的多种生物过程中发挥重要的调控作用。山羊的多胎性状受多种因素影响,但circRNA在山羊卵泡发育中的表达和功能尚不清楚。在本研究中,我们旨在探讨circRNA可能的调控机制,并收集了发情期雷州山羊的五组大卵泡(卵泡直径>6 mm)和小卵泡(1 mm<卵泡直径<3 mm)进行RNA测序。结果:RNA测序显示,小卵泡和大卵泡中有152个circRNA差异表达。其中,101个circRNA在大卵泡中上调,51个circRNA在小卵泡中上调。GO和KEGG富集分析显示,差异circRNA的宿主基因显著富集在重要通路中,如卵巢类固醇生成、GnRH信号通路、动物自噬和催产素信号通路。生物信号分析显示,152个差异表达的circRNA可以靶向91个差异miRNA,包括miR-101家族(chi-miR-101-3p, chi-miR-101-5p)、miR-202家族(chi-miR-202-5p, chi-miR-202-3p),60个circRNA具有翻译潜力。基于预测的测序结果,本研究构建了ceRNA网络chicirc_008762/chi-miR-338-3p/ARHGAP18和chicirc_040444/chi-miR-338-3p/STAR。重要的是,新基因circCFAP20DC在山羊中首次发现。EDU实验和流式细胞术结果表明,circCFAP20DC增强了卵泡颗粒细胞(GCs)的增殖。实时定量PCR和western blotting实验表明,circCFAP20DC激活视网膜母细胞瘤(RB)通路,促进颗粒细胞从G1期向S期进展。结论:山羊大小卵泡中的差异circRNA可能对卵泡发育具有重要的生物学功能。新基因circCFAP20DC激活RB通路,促进GCs从G1期向S期进展。这反过来又增强了山羊卵泡GCs的增殖。补充信息:在线版本包含补充材料,可在10.1186/s12864-024-10834-w获取。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
circRNA在山羊卵泡发育中的表达和功能是什么?
核心机制
circCFAP20DC通过激活RB通路,促进颗粒细胞从G1期向S期转变,从而增强细胞增殖。
主要证据
RNA-seq鉴定差异circRNA;EDU和流式细胞术显示circCFAP20DC促进增殖和S期比例增加;qPCR和Western blot显示RB通路相关蛋白(p-RB, CDK2, CCNE2)上调。
研究意义
为理解山羊卵泡发育的分子机制提供理论基础,并为地方品种资源保护及山羊多胎性状候选基因鉴定提供基础数据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

样本收集与RNA-seq

鉴定大卵泡和小卵泡中差异表达的circRNA。

从5只雷州山羊收集大卵泡和小卵泡,提取RNA,构建cDNA文库,使用Illumina HiSeq平台进行双端测序。

2

circRNA鉴定与差异表达分析

确定circRNA表达差异。

使用find_circ鉴定circRNA,使用DESeq进行差异表达分析。

3

ceRNA网络构建

预测circRNA-miRNA-mRNA调控网络。

使用miRanda预测miRNA靶基因,结合mRNA数据构建ceRNA网络。

4

circCFAP20DC鉴定

验证circCFAP20DC的环状结构和稳定性。

设计引物进行PCR、TA克隆、Sanger测序、RNase R处理、核质分离实验。

5

细胞功能实验

检测circCFAP20DC对颗粒细胞增殖和细胞周期的影响。

构建过表达载体,感染颗粒细胞,进行EdU实验和流式细胞术。

6

分子机制验证

验证circCFAP20DC对RB通路和增殖相关基因表达的影响。

提取RNA进行qPCR检测增殖和细胞周期相关基因,提取蛋白进行Western blot检测RB通路蛋白。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
TRIzol试剂Invitrogen--
TRIzol试剂TaKaRa--
Nanophotometer®分光光度计IMPLEN--
rRNA去除试剂盒Illumina--
逆转录酶Invitrogen--
DNA聚合酶NEB--
RNase HNEB--
PrimeScript™ RT试剂盒TaKaRa--
2×Pro Taq预混液----
Tap Pro Universal SYBR qPCR预混液Vazyme--
PrimeSTAR® Max DNA聚合酶Takara--
FastPure凝胶DNA提取迷你试剂盒Vazyme--
pMD™ 19-T载体克隆试剂盒Takara--
GSPure® RNase R试剂盒Geneseed--
Evo M-MLV RT反应混合物Ver.2试剂盒Accurate Bioiogy--
Hieff Clone® Plus一步克隆试剂盒Yeasen--
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo Fisher Scientific--
通用病毒浓缩试剂盒Beyotime--
FastPure细胞质和细胞核RNA纯化试剂盒ECOTOP--
Cell-LightTM EDU Apollo体外试剂盒RIBOBIO--
细胞周期检测试剂盒(红色荧光)Elabscience--
RIPA裂解液Beyotime--
5×SDS-PAGE上样缓冲液Solarbio--
聚偏二氟乙烯膜Merck--
pLC5-ciR载体Geneseed--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
样本采集
5只空怀健康雷州山羊,2岁,3胎次,发情鉴定后24小时内安乐死;每只提供一个大卵泡和2-3个小卵泡。
阅读提示:Methods: Sample collection
RNA-seq文库构建
RNA起始量3 μg;片段化至200-300 bp;文库片段筛选300-400 bp;测序平台Illumina HiSeq,双端测序。
阅读提示:Methods: cDNA library preparation
circRNA差异表达分析
差异表达阈值:|log2FoldChange| > 1,P < 0.05。
阅读提示:Methods: circRNA identification and differential analysis
细胞培养与病毒感染
颗粒细胞培养基:90% DMEM/F12, 10% FBS, 1% PS;感染时细胞融合度50%,感染后72小时收样。
阅读提示:Methods: Vector construction and lentiviral packaging
EdU实验
细胞接种96孔板4×10^4细胞/孔;感染后72小时加入100 μM EdU孵育2小时。
阅读提示:Methods: EdU cell proliferation
细胞周期检测
细胞接种6孔板,感染后72小时收集细胞;使用Cell Cycle Assay Kit (Red Fluorescence)检测,激发波长488 nm。
阅读提示:Methods: Cell cycle assays
Western blot
蛋白提取在感染后72小时;使用RIPA裂解液;SDS-PAGE胶浓度10%;PVDF膜。
阅读提示:Methods: Western blot
统计检验
所有实验组设三个生物学重复;数据以均值±标准差表示;t检验用于两组比较,单因素方差分析用于多组比较;显著性阈值P<0.05。
阅读提示:Methods: Statistical analysis