饲料制备与动物分组
制备含不同剂量栅藻提取物的饲料,并建立实验分组。
将栅藻提取物以0、0.75、1.5 mg/kg添加到基础饲料中,分为对照组、PbExt0.75组和PbExt1.5组。共120尾尼罗罗非鱼随机分配到6个网箱(每箱20尾),每组两个重复。
Dietary Pediastrum boryanum microalgal extract improves growth, enhances immunity, and regulates immune-related genes in Nile tilapia.
包含体内饲养实验(生长性能、血清生化、免疫、抗氧化)和分子实验(qRT-PCR)及组织病理学检查,多个独立证据层级。
尼罗罗非鱼(Oreochromis niloticus)
P. boryanum提取物添加剂量:0、0.75、1.5 mg/kg 实验周期:8周 鱼体初始体重:57.5 ± 2.5 g 每组重复数:2个重复,每个重复20尾鱼
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
制备含不同剂量栅藻提取物的饲料,并建立实验分组。
将栅藻提取物以0、0.75、1.5 mg/kg添加到基础饲料中,分为对照组、PbExt0.75组和PbExt1.5组。共120尾尼罗罗非鱼随机分配到6个网箱(每箱20尾),每组两个重复。
评估栅藻提取物对尼罗罗非鱼生长性能的影响。
实验结束后,每组取6尾鱼(每个网箱3尾),测定终末体重、体长、增重率、肥满度和特定生长率。
评估栅藻提取物对尼罗罗非鱼非特异性免疫力的影响。
采集血清,使用ELISA试剂盒测定溶菌酶活性和IgM水平。
评估栅藻提取物对尼罗罗非鱼抗氧化状态的影响。
分光光度法测定血清MDA水平及SOD、CAT、GSH活性。
评估栅藻提取物对肝功能酶和蛋白质水平的影响。
测定血清ALT、AST、总蛋白和白蛋白水平。
评估栅藻提取物对肝脏免疫和应激相关基因表达的影响。
提取肝脏RNA,逆转录合成cDNA,通过qRT-PCR检测TNF-α、IL-10、TGF-β1和HSP70基因的表达。
评估栅藻提取物对肝脏、脾脏和肠道组织形态的影响。
取肝脏、脾脏和肠道组织,固定、包埋、切片,进行H&E染色,观察组织结构并测量肠道绒毛高度、宽度、隐窝深度及绒毛表面积。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 饲料制备 | 栅藻 | -- | -- |
| 绞肉机 | Moulinex | ME605131 | |
| 样本采集 | 三卡因甲磺酸盐 | Sigma-Aldrich | E10521-10G |
| RNA保护液 | Sigma Aldrich | -- | |
| 血清免疫指标测定 | 鱼溶菌酶ELISA试剂盒 | MyBioSource | -- |
| 鱼IgM ELISA试剂盒 | CUSABIO BIOTECH CO., Ltd | CSBE-12045Fh | |
| 抗氧化状态测定 | 分光光度计 | -- | 6745 UV/Vis. Spectrophotometer |
| 诊断试剂盒 | Biodiagnostics | -- | |
| ELISA试剂盒 | Elabscience® | -- | |
| 血清生化指标测定 | 总蛋白和白蛋白检测试剂盒 | VitroScient | -- |
| ALT和AST试剂盒 | Spinreact | -- | |
| RNA提取 | Genzol™ | Geneaid Biotech Ltd | -- |
| RNA浓度测定 | Nanodrop分光光度计 | Quawell | Q5000 |
| cDNA合成 | TOPscript™ RT DryMIX(dT18) cDNA合成试剂盒 | Enzynomics Co. Ltd. | -- |
| qRT-PCR | Solg™ 2X实时PCR Smart mix | SolGent Co., Ltd. | -- |
| QuantStudio1™实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems™ Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 组织病理学检查 | 光学显微镜 | Olympus | CX 31 |
| 数码相机 | Olympus | DP 21 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 饲料制备 | P. boryanum提取物添加剂量:0、0.75、1.5 mg/kg;提取方法:100g藻粉用1L蒸馏磁化水70°C提取2小时 阅读提示:Materials and Methods, Diet preparation |
| 动物饲养 | 初始体重:57.5 ± 2.5 g;每组重复数:2个重复,每个重复20尾鱼;饲养周期:8周;投喂率:体重的3% 阅读提示:Materials and Methods, Experimental design and rearing Fish |
| 生长性能评估 | 采样数:每组6尾鱼;麻醉剂:30 mg/L MS-222 阅读提示:Materials and Methods, Growth performance assessment |
| 血清免疫指标测定 | 使用ELISA试剂盒测定溶菌酶和IgM,波长450 nm 阅读提示:Materials and Methods, Evaluation of serum immunological parameters; Figure 2 legend |
| 抗氧化状态测定 | MDA、GSH、SOD检测试剂盒(Biodiagnostics),CAT检测试剂盒(Elabscience);波长534、405、560、240 nm 阅读提示:Materials and Methods, Determination of antioxidant status and oxidative stress markers; Figure 3 legend |
| 基因表达分析 | 引物序列见参考文献;qRT-PCR条件:95°C 20s,然后40个循环60°C 40s、72°C 30s;使用2^-ΔΔCT方法 阅读提示:Materials and Methods, RNA Extraction...; Figure 5 legend |
| 组织病理学检查 | 固定:10%中性福尔马林;切片厚度:5 µm;染色:H&E 阅读提示:Materials and Methods, Histopathological examination; Figure 6 and 7 legends |