Pim-1激酶通过调控动力相关蛋白1保护肝脏免受缺血再灌注损伤

Pim-1 kinase protects the liver from ischemia reperfusion injury by regulating dynamics-related protein 1.

作者信息Yan-Dong Sun, Qing-Guo Xu, De-Shu Dai, Shu-Xian Wang, Xin-Qiang Li, Shang-Heng Shi, Peng Jiang, Yan Jin, Xin Wang, Yong Zhang, Feng Wang, Peng Liu, Bing-Liang Zhang, Tian-Xiang Li, Chuan-Shen Xu, Bin Wu, Jin-Zhen Cai
PMID39055921
期刊iScience
发布时间2024-06-28
DOI10.1016/j.isci.2024.110280

实验完整度

高

包含体外细胞缺氧复氧模型、小鼠肝脏IR模型、临床患者样本三个独立证据层级,并进行了功能获得与缺失验证、机制验证(Drp1磷酸化及线粒体易位)和表观调控验证。

主要模型

MIHA细胞缺氧复氧模型 小鼠肝脏缺血再灌注模型 肝移植患者临床样本

重点核对

MIHA细胞缺氧复氧处理时间(0, 2, 6, 12小时) 小鼠缺血1小时再灌注时间(0, 6, 12, 24小时) Pim-1抑制剂TCS Pim-1给药剂量5 mg/kg,腹腔注射5天 siRNA敲低和慢病毒过表达Pim-1的MIHA细胞系 临床样本量(n=20),血清ALT/AST检测

摘要

肝缺血再灌注(IR)损伤显著影响肝移植的成功率,然而目前的治疗方法仍然不足。本研究探讨了原癌基因丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶(Pim-1)在肝脏IR中的作用,该领域此前尚未被探索。利用小鼠肝脏IR体内模型和MIHA细胞缺氧复氧体外模型,我们观察到IR后Pim-1表达增加,并与血清丙氨酸氨基转移酶(ALT)和天冬氨酸氨基转移酶(AST)水平呈负相关。Pim-1表达增加通过修饰Drp1磷酸化稳定线粒体膜,减少线粒体分裂和细胞凋亡,从而减轻肝脏损伤。此外,我们发现肝脏IR期间Pim-1表达的升高依赖于组蛋白H3赖氨酸9的三甲基化。这些发现强调了靶向Pim-1治疗肝脏IR的重要性和潜在临床应用,提供了一种新的治疗途径。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Pim-1在肝脏缺血再灌注损伤中的表达变化及其对肝细胞凋亡和线粒体动力学的影响机制。
核心机制
在肝脏IR中,Pim-1通过维持Drp1 Ser637位点的磷酸化,抑制Drp1向线粒体外膜转运,减少线粒体过度分裂,稳定线粒体膜,从而抑制细胞凋亡;此外,Pim-1的表达上调依赖于H3K9me3的转录激活。
主要证据
在MIHA细胞缺氧复氧模型和小鼠肝脏IR模型中,Pim-1过表达或敲低实验证实了Pim-1抑制凋亡并调控Drp1磷酸化;体内抑制Pim-1加重肝损伤;临床肝移植样本显示Pim-1与ALT/AST负相关,且高Pim-1患者恢复更好。
研究意义
本研究首次揭示Pim-1在肝脏IR中的保护作用,为肝IR的治疗提供了新的潜在靶点,并可能提高肝移植成功率、减少术后排斥,具有临床应用价值。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立体外和体内模型并检测Pim-1表达

研究Pim-1在肝脏IR中是否表达变化。

构建MIHA细胞缺氧复氧模型和C57BL/6J小鼠肝脏IR模型,通过Western blot、qPCR、H&E染色和免疫组化检测Pim-1表达。

2

分析Pim-1与肝损伤的临床相关性

探讨Pim-1表达与肝移植患者肝损伤指标的相关性。

收集肝移植患者再灌注前后肝组织和血清样本,通过qPCR、Western blot、免疫组化检测Pim-1表达,并关联血清ALT/AST水平及临床预后。

3

验证Pim-1对肝细胞凋亡的影响

验证Pim-1是否抑制缺氧复氧诱导的肝细胞凋亡。

在MIHA细胞中敲低和过表达Pim-1,进行缺氧复氧处理,检测凋亡相关蛋白和TUNEL染色。

4

体内抑制Pim-1验证其对IR损伤的影响

验证抑制Pim-1是否加重小鼠肝脏IR损伤。

腹腔注射Pim-1抑制剂TCS Pim-1后建立小鼠肝脏IR模型,通过H&E、免疫组化、TUNEL和血清ALT/AST检测评估损伤。

5

探究Pim-1对Drp1磷酸化和线粒体转位的影响

阐明Pim-1是否通过调控Drp1的磷酸化状态和线粒体转位来保护线粒体。

在体外敲低Pim-1和体内抑制Pim-1的模型中,通过Western blot和免疫荧光检测Drp1磷酸化及线粒体定位。

6

评估Pim-1对线粒体形态和细胞色素c释放的影响

验证Pim-1维持线粒体形态完整性并抑制凋亡信号。

通过透射电子显微镜观察肝组织和MIHA细胞线粒体形态,并检测细胞色素c在胞质和线粒体的分布。

7

探究H3K9me3对Pim-1表达的转录调控

探讨Pim-1上调是否依赖于H3K9me3的表观遗传修饰。

通过Western blot检测H3K9me3表达,使用ChIP-qPCR检测H3K9me3与Pim-1启动子的结合,使用chaetocin抑制H3K9me3并检测Pim-1表达和启动子活性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Cas9XGUMD-B301
青霉素-链霉素SolarbioP1400
胰蛋白酶-EDTASolarbioT1320
胎牛血清Cas9XFBP-C520
Lipofectamine 3000转染试剂ThermoFisherL3000001
TCS PIM-1 1(Pim-1激酶抑制剂)Medchem expressHY-18086
TRIzol试剂Invitrogen15596026CN
二甲基亚砜SolarbioD8371
TUNEL检测试剂盒ElabscienceE-CK-A321&E-CK-A322
H&E染色试剂盒BeyotimeC0105S
ALT检测试剂盒NJBIC009-2-1
AST检测试剂盒NJBIC010-2-1
BCA蛋白定量试剂盒SolarbioPC0020
BeyoECL Plus化学发光试剂BeyotimeP0018S
PIM-1抗体Abcamab308006
Caspase3抗体Cell Signaling9662
Cleaved Caspase3抗体Cell Signaling9664
β-actin抗体Proteintech66009-1-Ig
p-Drp1抗体Cell Signaling3455
T-Drp1抗体Cell Signaling8570
H3K9me3抗体Abcamab8898
COX IV抗体AffinityAF5468
H3抗体Cell Signaling4499
Bax抗体AffinityAF0120
Bcl-2抗体AffinityAF6139
细胞色素c抗体Cell Signaling11940
Mff抗体Abcamab129075
Fis1抗体Abcamab156865
线粒体分离试剂BeyotimeC3601
GoScript逆转录混合物Promega--
GoTaq qPCR预混液Promega--
自动生化分析仪HitachiLabospect
透射电子显微镜Hitachi7500
MIHA细胞系FENGHUISHENGWUCL-0469
C57BL/6J小鼠Experimental Animal Center of Qingdao University--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞缺氧复氧模型
缺氧时间、复氧时间、细胞培养条件
阅读提示:STAR★Methods: Hypoxia/reoxygenation (HR) model
小鼠肝脏IR模型
缺血时间、再灌注时间、小鼠品系、给药剂量
阅读提示:STAR★Methods: Mouse model of hepatic ischemia‒reperfusion and drug treatment
Pim-1敲低和过表达
siRNA序列、慢病毒构建、转染条件、筛选浓度
阅读提示:STAR★Methods: Cell culture and transfection
凋亡检测
TUNEL试剂盒、染色步骤、定量方法
阅读提示:STAR★Methods: Terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick end labeling (TUNEL) assay
Drp1机制研究
磷酸化位点、线粒体分离方法、蛋白定量
阅读提示:STAR★Methods: Separation of mitochondria and cytoplasmic proteins
表观调控研究
ChIP步骤、chaetocin浓度、荧光素酶报告基因构建
阅读提示:STAR★Methods: Chromatin immunoprecipitation assay (ChIP) 和 结果部分