构建体内AS模型并检测STX17表达
验证STX17在AS中的表达变化
使用6周龄ApoE KO小鼠(n=8)喂食高脂饮食12周建立AS模型,对照组为喂食普通饮食的ApoE KO小鼠和C57BL/6J小鼠。通过血脂检测、HE染色、Masson染色和油红O染色评估模型构建,并通过Western blot检测主动脉血管中STX17表达。
Exacerbation of atherosclerosis by STX17 knockdown: Unravelling the role of autophagy and inflammation.
研究包含体内动物模型和体外细胞模型,并进行了功能验证(迁移、成管)和机制验证(自噬流、炎症、STING),但分子机制探索仅在体外进行,缺乏体内敲除验证。
ApoE敲除(KO)小鼠高脂饮食模型 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)ox-LDL处理模型
动物模型:6周龄ApoE KO小鼠,Western diet喂养12周 细胞模型:HUVECs,ox-LDL处理浓度100 μg/mL,时间48 h STX17敲低:shRNA-STX17慢病毒,MOI=10-30 STING敲低:siRNA,浓度50 nM,转染6 h 自噬流检测:mRFP-GFP-LC3腺病毒,MOI=500
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证STX17在AS中的表达变化
使用6周龄ApoE KO小鼠(n=8)喂食高脂饮食12周建立AS模型,对照组为喂食普通饮食的ApoE KO小鼠和C57BL/6J小鼠。通过血脂检测、HE染色、Masson染色和油红O染色评估模型构建,并通过Western blot检测主动脉血管中STX17表达。
在细胞水平验证STX17表达变化
使用ox-LDL处理HUVECs建立体外AS模型,检测不同浓度和处理时间下STX17表达。通过划痕实验和管形成实验验证细胞损伤。
确定STX17对HUVECs功能的影响
使用shRNA-STX17慢病毒感染HUVECs敲低STX17,通过CCK8检测增殖,划痕实验检测迁移,管形成实验检测血管生成。
探索STX17敲低对自噬流和溶酶体的影响
通过Western blot检测自噬相关蛋白LC3 II、P62、LAMP1和cathepsin D的表达,并使用mRFP-GFP-LC3双荧光腺病毒监测自噬流。
确定STX17敲低对HUVECs炎症反应的影响
通过ELISA检测ox-LDL诱导的HUVECs上清中TNF-α、IL-6、IL-8和MCP-1的水平。
确认STX17与STING之间的相互作用
通过Western blot检测STX17敲低后STING表达水平,使用Co-IP和免疫荧光共定位验证相互作用。
确定STING敲低对自噬流的影响
使用STING-siRNA转染HUVECs敲低STING,通过qPCR和Western blot验证敲低效率,并检测自噬相关蛋白LC3 II和p62的表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型 | 西方饮食(高脂饮食) | -- | -- |
| 细胞培养 | 内皮细胞培养基 | ScienCell | -- |
| 胎牛血清 | ScienCell | -- | |
| 内皮细胞生长补充剂 | ScienCell | -- | |
| 青霉素和链霉素 | ScienCell | -- | |
| 氧化低密度脂蛋白 | Yiyuan Biotechnologies | YB-002 | |
| 慢病毒感染 | shSTX17慢病毒 | HANBIO | pHBLV-U6-MCS-CMV-ZsGreen-PGK-PURO |
| 自噬流分析 | mRFP-GFP-LC3腺病毒 | HANBIO | -- |
| siRNA转染 | Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Thermo Scientific | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| qRT-PCR | HiScript III 一步法反转录预混液(qPCR专用) | Vazyme | -- |
| ChamQ通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme | -- | |
| Western blot | BCA蛋白定量试剂盒 | Solarbio | PC0020 |
| 5×蛋白上样缓冲液 | Yamei | LT101 | |
| PVDF膜 | Millipore | IPVH00010 | |
| 脱脂牛奶 | BioFroxx | 1172GR100 | |
| STX17抗体 | Sigma | HPA001204 | |
| LC3 I/II抗体 | CST | 12741 | |
| SQSTM1/p62抗体 | Abcam | ab109012 | |
| LAMP1抗体 | Abcam | ab108597 | |
| 组织蛋白酶D抗体 | Abcam | ab6313 | |
| STING抗体 | Abcam | ab239074 | |
| β-微管蛋白抗体 | Proteintech | 66240-1-Ig | |
| GAPDH抗体 | ZSGB-BIO | TA-08 | |
| β-肌动蛋白抗体 | ZSGB-BIO | TA-09 | |
| 辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔IgG | -- | -- | |
| 辣根过氧化物酶标记的山羊抗小鼠IgG | -- | -- | |
| 免疫共沉淀 | Pierce蛋白A/G磁珠 | Thermo Scientific | -- |
| 细胞增殖检测 | CCK8试剂盒 | DojinDo | -- |
| 管形成实验 | Matrigel基质胶 | Corning | -- |
| ELISA | TNF-α ELISA试剂盒 | Elabscience | -- |
| IL-6 ELISA试剂盒 | Elabscience | -- | |
| IL-8 ELISA试剂盒 | Elabscience | -- | |
| MCP-1 ELISA试剂盒 | Elabscience | -- | |
| 免疫荧光染色 | Alexa Fluor 594标记的山羊抗小鼠IgG | -- | -- |
| Alexa Fluor 488标记的山羊抗兔IgG | -- | -- | |
| 细胞培养 | ibidi 2孔腔室载玻片 | ibidi | -- |
| 免疫荧光染色 | 含DAPI的抗淬灭封片剂 | -- | -- |
| 显微镜成像 | 激光共聚焦显微镜LSM 980 | Zeiss | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型构建 | 动物品系、周龄、性别;饮食类型和持续时间;分组和样本量;环境条件 阅读提示:见2.1节和3.1节 |
| 细胞模型构建 | HUVECs来源和传代;ox-LDL浓度和处理时间;培养基成分 阅读提示:见2.5节和3.2节 |
| STX17敲低 | 慢病毒载体和序列;感染复数(MOI);转染时间;筛选抗生素浓度和时间 阅读提示:见2.6节 |
| 自噬流检测 | mRFP-GFP-LC3腺病毒使用浓度;转染时间;ox-LDL处理条件;图像分析参数 阅读提示:见2.7节和3.4节 |
| STING敲低 | siRNA序列和浓度;转染时间;敲低效率验证 阅读提示:见2.8节和3.7节 |
| 炎症因子检测 | ELISA试剂盒品牌和货号;上清收集时间和条件;检测波长 阅读提示:见2.15节和3.5节 |