临床样本分析
探究F. nucleatum在OSCC组织中的丰度及与临床病理特征的关系
收集80对OSCC及癌旁组织,通过qPCR检测F. nucleatum丰度,FISH定位其空间分布,并分析其与肿瘤分期、淋巴结转移和侵袭表型的相关性。
F. nucleatum facilitates oral squamous cell carcinoma progression via GLUT1-driven lactate production.
包含临床样本分析、异种移植小鼠模型、体外细胞共培养,以及代谢组学、RNA测序、Western blot等分子机制验证,多层级证据链完整。
口腔鳞状细胞癌临床样本 SCC-7细胞异种移植C3H小鼠模型 CAL27、SCC15、SCC25等口腔鳞状细胞癌细胞系 THP-1单核细胞系分化来源的巨噬细胞
F. nucleatum菌株ATCC-25586及其感染复数(MOI 10、50、100) 皮下注射5×10^5 SCC-7细胞建立肿瘤模型,肿瘤体积达500 mm³时给予F. nucleatum(5×10^7)干预 GLUT1抑制剂BAY-876(50 nM体外,3 mg/kg体内)和GalNAc阻断剂PNA(80 μg/mL) 巨噬细胞清除使用氯膦酸盐脂质体(20 μL) 临床样本量80对OSCC及癌旁组织,动物每组5只
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究F. nucleatum在OSCC组织中的丰度及与临床病理特征的关系
收集80对OSCC及癌旁组织,通过qPCR检测F. nucleatum丰度,FISH定位其空间分布,并分析其与肿瘤分期、淋巴结转移和侵袭表型的相关性。
验证F. nucleatum对OSCC肿瘤生长的促进作用
在C3H小鼠皮下接种SCC-7细胞,待肿瘤体积达500 mm³后,瘤内注射F. nucleatum或PBS,测量肿瘤重量和体积。
明确巨噬细胞在F. nucleatum促进肿瘤进展中的作用
在异种移植模型中,注射氯膦酸盐脂质体或PBS脂质体清除巨噬细胞,比较肿瘤生长和EMT标志物表达。
探究F. nucleatum诱导肿瘤细胞代谢改变对巨噬细胞极化的影响
用F. nucleatum刺激OSCC细胞,收集条件培养基刺激THP-1来源的巨噬细胞,检测M2标志物表达。同时使用2-DG、7ACC2等抑制剂验证乳酸的作用。
揭示F. nucleatum对OSCC细胞代谢和转录组的影响
收集F. nucleatum处理的CAL27细胞培养上清进行非靶向代谢组学分析和RNA测序,鉴定差异代谢物和信号通路。
阐明F. nucleatum促进GLUT1膜转位和乳酸产生的分子机制
通过Western blot、免疫荧光、qPCR等方法检测GLUT1表达及定位、自噬标志物和TBC1D5水平,并使用PNA阻断GalNAc、3-MA抑制自噬、siRNA敲降等验证通路。
评估PNA和BAY-876单独或联合治疗对F. nucleatum相关肿瘤进展的抑制效果
在异种移植模型中,待肿瘤达500 mm³后,给予PNA和/或BAY-876治疗14天,检测肿瘤重量、体积、巨噬细胞极化和EMT标志物。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细菌培养 | 哥伦比亚琼脂 | -- | PB003A |
| Thayer Martin培养基 | BD | -- | |
| 细胞培养 | 高糖DMEM培养基 | Hyclone | -- |
| RPMI-1640培养基 | Hyclone | -- | |
| 角质形成细胞培养基 | Promocell | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 药物处理 | BAY-876 | MCE | HY-100017 |
| 7ACC2 | MCE | HY-D0713 | |
| 2-脱氧葡萄糖 | MCE | HY-13966 | |
| SC79 | MCE | HY-18749 | |
| 3BDO | MCE | HY-U00434 | |
| TAK-242 | MCE | HY-11109 | |
| 3-甲基腺嘌呤 | MCE | HY-19312 | |
| 雷帕霉素 | MCE | HY-10219 | |
| 花生凝集素 | Sigma | L0881 | |
| 巴佛洛霉素A1 | MCE | HY-100558 | |
| MG-132 | MCE | HY-13259 | |
| RAMB4 | MCE | HY-W054146 | |
| 细胞染色 | SYTO-9荧光染料 | Invitrogen | S34854 |
| 细胞转染 | Lipofectamine3000转染试剂 | ThermoFisher | L3000 |
| 蛋白提取 | 膜蛋白和胞浆蛋白提取试剂盒 | ThermoFisher | 89842 |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 蛋白酶抑制剂 | Biosharp | -- | |
| 抗体 | 抗CD206抗体 | Elabscience | E-AB-F1135E |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Takara | -- |
| SYBR Green PCR试剂盒 | -- | -- | |
| 临床样本DNA提取 | DNA提取试剂盒 | Tiangen | -- |
| 代谢物检测 | 葡萄糖检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | F006-1-1 |
| 乳酸检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | A019-2-1 | |
| 柠檬酸检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | A128-1-1 | |
| ATP检测试剂盒 | Beyotime | S0026 | |
| SDH检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | A022-1-1 | |
| MDH检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | A021-1-1 | |
| 代谢组学 | Q Exactive质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 荧光成像 | Nikon A1-Si共聚焦显微镜 | Nikon | A1-Si |
| qPCR | 实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本收集 | 样本量、纳入标准、组织保存方式 阅读提示:Methods - Clinical samples |
| 细菌培养 | 菌株、培养条件、培养基、培养时间 阅读提示:Methods - Bacteria culture and fluorescent labeling |
| 细胞培养 | 细胞系来源、培养基、FBS浓度、培养条件、F. nucleatum刺激MOI和时间 阅读提示:Methods - Cell culture |
| 体内异种移植模型 | 小鼠品系、年龄、性别、肿瘤细胞接种数量、F. nucleatum注射量、干预时间 阅读提示:Methods - In vivo oral cancer colonization and F. nucleatum intervention |
| 巨噬细胞清除实验 | 氯膦酸盐脂质体剂量、注射途径、注射时间 阅读提示:Methods - Effect of macrophages on F. nucleatum related oral cancer progression |
| 联合治疗实验 | BAY-876剂量、PNA浓度、注射频率、治疗时长 阅读提示:Methods - Therapeutic strategies on inhibition of F. nucleatum-related oral cancer progression |
| 代谢物检测 | 试剂盒型号、样品处理、稀释倍数 阅读提示:Methods - Quantification of glucose, pyruvate, lactic acid and citric acid |
| 蛋白质提取 | 膜蛋白提取试剂盒和步骤 阅读提示:Methods - Isolation of proteins in cellular membrane and cytoplasm |
| Western blot | 上样量、凝胶浓度、电压电流、封闭液、抗体稀释度 阅读提示:Methods - Western blot analysis |
| 免疫荧光 | 固定、透化、封闭、一抗二抗孵育条件 阅读提示:Methods - Immunofluorescent staining |
| qPCR | 引物序列、反应体系、循环条件 阅读提示:Methods - DNA extraction and quantification of bacteria by qPCR |
| 流式细胞术 | 抗体、孵育时间、洗涤步骤 阅读提示:Methods - Flow cytometry analysis |