使用脱细胞睾丸支架三维培养小鼠精原干细胞

Three-Dimensional Culture of Mouse Spermatogonial Stem Cells Using A Decellularised Testicular Scaffold.

作者信息Nasrin Majidi Gharenaz, Mansoureh Movahedin, Zohreh Mazaheri
PMID31376322
期刊Cell J
发布时间2020-01
DOI10.22074/cellj.2020.6304

实验完整度

包含组织学、DNA定量、IHC、MTT、体外移植、real-time PCR和免疫染色等多个独立验证步骤,涵盖支架制备、细胞相容性和功能分化验证。

主要模型

小鼠全睾丸脱细胞支架 小鼠精原干细胞(NMRI小鼠,6日龄) 小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)

重点核对

脱细胞方案:0.5% SDS和0.5% Triton X-100处理18小时,PBS洗涤24小时 DNA去除效率:98% 细胞注入方式:经输出小管注入睾丸网 培养条件:37°C、5% CO2,静态培养8周 培养基添加物:KSR、孕酮、雌二醇、EGF、bFGF和LIF

摘要

目的:生物支架在再生医学中的应用日益增多。此类支架可改善细胞附着、迁移、增殖和分化。在本研究中,脱细胞小鼠全睾丸被用作培养精原干细胞的三维(3D)天然支架。材料与方法:在本实验研究中,使用十二烷基硫酸钠(SDS)和Triton X-100对成年小鼠全睾丸进行脱细胞处理。通过组织学和DNA定量确定脱细胞效率。进行Masson三色染色、阿尔辛蓝染色和免疫组织化学(IHC)以验证细胞外基质(ECM)蛋白。通过将小鼠精原干细胞注射到睾丸网中,使这些支架再细胞化。然后,培养八周。通过组织学、实时聚合酶链反应(PCR)和IHC评估再细胞化支架。结果:苏木精-伊红(H&E)染色显示SDS和Triton X-100成功去除细胞。DNA含量分析表明,从睾丸中除去了98%的DNA。这证实了我们的脱细胞方案是有效的。Masson三色和阿尔辛蓝染色分别显示糖胺聚糖(GAGs)和胶原蛋白在支架中得以保留。IHC分析证实纤连蛋白、IV型胶原蛋白和层粘连蛋白的保留。MTT测定表明支架具有细胞相容性。再细胞化支架的组织学评估显示,注射的细胞附着在生精小管的基底膜上。使用实时PCR进行的基因表达分析表明,在培养八周后,Plzf基因的表达随时间保持不变,而Sycp3基因的表达显著增加(P=0.003),这表明精原干细胞开始减数分裂。IHC证实生精小管中存在PLZF阳性细胞(精原干细胞)和SYCP3阳性细胞(精母细胞)。结论:精原干细胞在注射到脱细胞睾丸支架中后可增殖并分化为精母细胞。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
脱细胞睾丸支架能否支持精原干细胞的附着、增殖和分化?
核心机制
脱细胞支架保留了ECM蛋白(纤维连接蛋白、胶原IV、层粘连蛋白),提供类似体内微环境,支持精原干细胞附着、自我更新和向精母细胞分化。
主要证据
组织学显示细胞附着于生精小管基底膜;real-time PCR显示Sycp3表达显著增加(P=0.003),而Plzf表达不变;IHC检测到PLZF和SYCP3阳性细胞。
研究意义
该脱细胞睾丸支架可作为研究精原干细胞分化和男性生育力调控的体外模型,并为组织工程应用提供潜在支持。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

制备脱细胞睾丸支架

去除睾丸内细胞成分,保留ECM结构以用作支架。

成年NMRI小鼠睾丸经0.5% SDS和0.5% Triton X-100处理,PBS洗涤,并用0.1%过氧乙酸消毒。

2

验证支架脱细胞效率和ECM保留

确认细胞成分去除且ECM蛋白和成分得到保留。

通过H&E染色、DNA定量、Masson三色染色、阿尔辛蓝染色和IHC检测ECM蛋白(纤连蛋白、胶原IV、层粘连蛋白)的保留。

3

进行细胞相容性评估

确保支架对细胞无毒性,支持细胞存活和增殖。

将MEF细胞接种于支架碎片,MTT法检测24和72小时的细胞活性。

4

分离和鉴定精原干细胞

获得用于接种的精原干细胞并验证其身份。

从6日龄NMRI小鼠睾丸分离细胞,两步酶消化后培养两周,通过PLZF标记鉴定精原干细胞集落。

5

体外移植精原干细胞

将精原干细胞注入支架,评估其附着、增殖和分化能力。

将细胞悬液(含trypan blue)通过玻璃针注入脱细胞睾丸的输精管末端和睾丸网,随后在琼脂糖凝胶上培养,每周更换培养基两次,共8周。

6

评估细胞分化和功能

检测精原干细胞在支架中是否增殖并分化为精母细胞。

通过H&E染色观察细胞组织位置,real-time PCR检测Plzf和Sycp3基因表达,IHC检测PLZF和SYCP3蛋白。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
十二烷基硫酸钠Sigma--
Triton X-100Sigma--
Masson三色染料Sigma--
阿尔辛蓝Sigma--
核固红Sigma--
抗纤连蛋白抗体Elabscience Biotechnology Inc.--
抗IV型胶原蛋白抗体Elabscience Biotechnology Inc.--
抗层粘连蛋白抗体Abcam--
Alexa Fluor 488二抗(山羊抗小鼠IgG)Invitrogen--
Texas Red二抗(山羊抗兔IgG)Abcam--
QIAamp DNA小提试剂盒Qiagen--
NanoDrop 2000 C紫外-可见分光光度计Thermo Scientific--
DAPI(4,6-二脒基-2-苯基吲哚)Sigma--
MTT(3-[4,5-二甲基噻唑-2-基]-3,5-二苯基溴化四氮唑)Sigma--
DMEM培养基----
胎牛血清Gibco--
二甲基亚砜Sigma--
αMEM培养基Bio-Ideal--
胰蛋白酶Sigma--
IV型胶原酶Sigma--
透明质酸酶Sigma--
抗PLZF抗体Santa Cruz Biotechnologysc-28319
敲除血清替代物----
孕酮Invitrogen--
β-雌二醇Pepro Tech--
表皮生长因子Pepro Tech--
碱性成纤维细胞生长因子Pepro Tech--
白血病抑制因子Royan--
抗SYCP3抗体Santa Cruz Biotechnology--
RNX-Plus™试剂盒Cinna Gen--
DNase IFermentase--
生物光度计Eppendorf--
cDNA合成试剂盒Fermentase--
SYBR Green预混液Fluka--
StepOne™实时PCR仪Applied Biosystems--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
脱细胞处理
脱细胞试剂浓度(0.5% SDS、0.5% Triton X-100)及处理时间(18小时)
阅读提示:Materials and Methods, Organ harvest and decellularisation protocol
细胞毒性检测
MEF细胞密度(3×10^4/孔)、培养时间(24和72小时)
阅读提示:Materials and Methods, Cytotoxicity assay
精原干细胞分离与培养
小鼠日龄(6天)、酶消化浓度(0.5 mg/ml)
阅读提示:Materials and Methods, Isolation and culture of spermatogonial stem cells
体外移植
培养时间(8周)、琼脂糖凝胶培养体系和培养基成分(KSR, 孕酮, 雌二醇, EGF, bFGF, LIF)
阅读提示:Materials and Methods, In vitro transplantation of spermatogonial stem cells
基因表达分析
Plzf和Sycp3引物序列、内参基因β-actin
阅读提示:Materials and Methods, Real-time PCR studies, Table 1