HRD1诱导的TMEM2泛素化通过非经典途径促进肠缺血/再灌注中内质网应激介导的凋亡

HRD1-induced TMEM2 ubiquitination promotes ER stress-mediated apoptosis through a non-canonical pathway in intestinal ischemia/reperfusion.

作者信息Xuzi Zhao, Deshun Liu, Yan Zhao, Zhecheng Wang, Yue Wang, Zhao Chen, Shili Ning, Guangzhi Wang, Lu Meng, Jihong Yao, Xiaofeng Tian
PMID38378757
发布时间2024-02
DOI10.1038/s41419-024-06504-0

实验完整度

包含细胞实验(Caco-2、HEK293)、动物模型(C57BL/6小鼠I/R)、临床样本(患者肠组织)及多组学分析(RNA-seq、KEGG),并有功能验证和机制验证。

主要模型

Caco-2细胞缺氧/复氧(H/R)模型 HEK293细胞转染模型 C57BL/6小鼠肠缺血/再灌注(I/R)模型 临床患者肠缺血样本

重点核对

HRD1敲低或过表达对ER应激介导凋亡的影响 HRD1与TMEM2的相互作用及TMEM2泛素化位点(K42) K48连接的多聚泛素化类型 TMEM2对PI3k/Akt通路的调控及对ER应激凋亡的影响 动物实验中AAV-shRNA注射时间(3周)及I/R手术时间(缺血45分钟/再灌注4小时)

摘要

肠缺血/再灌注(I/R)损伤是临床上的典型病理过程,具有高发病率。近期研究指出,泛素化通过精确调控蛋白质质量控制与功能,在肠I/R的发生和发展中发挥关键作用。在此,我们进行了整合多组学分析,以识别肠I/R中关键的泛素化相关分子,并确定了定位于内质网的HRD1作为候选分子。在肠I/R期间,过度的内质网应激通过激活凋亡通路发挥核心作用。特别是,我们发现,在肠I/R小鼠中,HRD1敲低减轻了内质网应激介导的凋亡。机制上,通过质谱分析,TMEM2被鉴定为肠I/R中HRD1的新底物,它在减轻凋亡和促进非经典内质网应激抵抗中具有关键作用。在人肠缺血样本中,HRD1和TMEM2的蛋白水平呈强负相关。具体而言,HRD1与TMEM2的赖氨酸42残基相互作用,并通过K48连接的聚泛素化降低其稳定性。此外,KEGG通路分析揭示,TMEM2通过PI3k/Akt信号通路而非经典内质网应激通路调节内质网应激介导的凋亡。总之,在肠I/R期间,HRD1通过泛素化TMEM2并抑制PI3k/Akt激活,经由非经典途径调节内质网应激介导的凋亡。目前的研究表明,HRD1是肠I/R的关键调节因子,靶向HRD1/TMEM2轴可能是一种有前景的治疗方法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
HRD1是否通过泛素化TMEM2参与肠缺血/再灌注中内质网应激介导的凋亡,其具体机制为何?
核心机制
HRD1与TMEM2的赖氨酸42残基相互作用,催化K48连接的多聚泛素化并促进TMEM2降解,进而抑制PI3k/Akt信号通路,通过非经典途径加剧内质网应激介导的凋亡。
主要证据
通过RNA-seq和质谱分析鉴定HRD1和TMEM2,细胞和动物实验验证HRD1敲低减轻ER应激凋亡,TMEM2敲低加重损伤,且HRD1效应依赖于TMEM2;KEGG分析显示PI3k/Akt通路参与调控。
研究意义
研究揭示HRD1/TMEM2轴是肠I/R的关键调节机制,为肠I/R的治疗提供了潜在的新策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

多组学筛选关键分子

识别肠I/R中关键的泛素化相关分子

对I/R肠组织和H/R Caco-2细胞进行RNA-seq分析,筛选差异表达基因,重点关注E3连接酶。

2

HRD1表达与功能验证

验证HRD1在肠I/R中的表达变化及其对ER应激凋亡的影响

检测临床肠缺血样本、I/R小鼠和H/R细胞中HRD1表达;使用AAV-shRNA敲低HRD1,评估肠损伤、ER应激凋亡标志物和细胞活力。

3

鉴定HRD1相互作用蛋白及底物

寻找HRD1在肠I/R中的底物并验证相互作用

通过Co-IP/MS鉴定HRD1结合蛋白,筛选出TMEM2;用Co-IP验证内源和异位相互作用;检测TMEM2蛋白和mRNA水平变化。

4

确定泛素化类型和位点

验证HRD1催化TMEM2泛素化的类型和具体赖氨酸位点

使用泛素突变体(K48、K63)检测连接类型;突变TMEM2的五个赖氨酸位点,确定关键位点K42;评估蛋白稳定性和降解。

5

验证TMEM2在ER应激凋亡中的作用

验证TMEM2对肠I/R中ER应激凋亡的影响

使用AAV-shRNA敲低TMEM2,评估肠损伤和凋亡;在细胞中敲低或过表达TMEM2,检测ER应激凋亡标志物和细胞活力。

6

探索下游信号通路

研究TMEM2调控ER应激凋亡的下游机制

RNA-seq和KEGG分析鉴定TMEM2调控的通路;验证TMEM2对PI3k/Akt的影响;使用LMW-HA和PI3K抑制剂LY294002验证TMEM2通过PI3k/Akt发挥作用。

7

体内验证HRD1/TMEM2轴

验证HRD1对肠I/R的影响是否依赖于TMEM2

在小鼠中同时敲低HRD1和TMEM2,评估肠损伤、PI3k/Akt激活和凋亡标志物。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
MEM培养基----
DMEM培养基----
Lipofectamine 3000转染试剂Invitrogen--
MG132蛋白酶体抑制剂Selleck--
低分子量透明质酸Sigma Aldrich--
LY294002(PI3K抑制剂)Beyotime--
衣霉素MedChemExpress--
二硫苏糖醇MedChemExpress--
CellTiter-Glo发光细胞活力检测试剂盒Promega--
TRIzol试剂Invitrogen--
PrimeScript RT Master Mix反转录试剂盒TaKaRa--
SYBR Premix Ex Taq II试剂盒TaKaRa--
一步法TUNEL原位凋亡检测试剂盒Elabscience--
GreenNuc Caspase-3活性检测试剂盒Beyotime--
HRD1抗体Proteintech13473-1-AP
TMEM2抗体AVIVA--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
小鼠品系、周龄、性别、体重、实验分组、术前AAV注射时间、缺血/再灌注时间
阅读提示:Materials and methods: Animal experiments
细胞模型
细胞系、培养条件、缺氧/复氧时间、转染试剂和浓度、处理药物浓度和时间
阅读提示:Materials and methods: Cell hypoxia/reoxygenation and transient transfection
表达检测
抗体稀释比例、检测蛋白列表、内参蛋白
阅读提示:Materials and methods: Western blotting
泛素化分析
泛素突变体(K48、K63)、目标位点突变、MG132处理浓度和时间、CHX时间点
阅读提示:Materials and methods: Cell hypoxia/reoxygenation and transient transfection; Figure legends 2 and 3
信号通路验证
LMW-HA和LY294002的浓度及处理时间、H/R刺激条件
阅读提示:Materials and methods: Cell hypoxia/reoxygenation and transient transfection; Figure legends 5