公共数据库转录组分析
通过GEO数据集识别BNST相关差异表达基因,为后续筛选关键基因提供候选。
下载GSE39645和GSE54934数据集,去除批次效应后合并,利用limma包进行差异基因表达分析(|logFC|>2,P<0.05),绘制热图和火山图。
Diagnostic potential of NRG1 in benign nerve sheath tumors and its influence on the PI3K-Akt signaling and tumor immunity.
包含生物信息学分析(GEO、WGCNA、LASSO、CIBERSORT、scRNA-seq)、临床样本验证、PDX模型及细胞系体外功能验证,并涉及机制研究(PI3K-Akt通路)和免疫微环境分析。
良性神经鞘瘤患者肿瘤组织样本 BNST-PDX模型(NOD/SCID小鼠) BNST细胞系
PDX模型:肿瘤组织切成1 mm碎片,消化后注射入6周龄NOD/SCID小鼠坐骨神经鞘,每组3只小鼠 细胞系:原代细胞在DMEM+10% FBS+1% P/S中培养,使用5代以内细胞 NRG1敲低:shRNA(shNRG1-1和shNRG1-2)转染细胞,MOI=10,筛选采用1 mg/ml嘌呤霉素 PI3K抑制剂(BEZ235、AZD8055)和激活剂(740 Y-P)的浓度与处理时间
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
通过GEO数据集识别BNST相关差异表达基因,为后续筛选关键基因提供候选。
下载GSE39645和GSE54934数据集,去除批次效应后合并,利用limma包进行差异基因表达分析(|logFC|>2,P<0.05),绘制热图和火山图。
构建基因共表达网络,识别与BNST临床特征最相关的模块。
使用R包WGCNA,基于差异基因构建无标度网络,选择软阈值β=10,识别9个共表达模块,其中棕色模块与肿瘤临床特征相关性最强(r=0.87,p<0.05),并与差异基因取交集获得79个基因。
通过PPI网络和LASSO回归筛选疾病核心基因,并评估其诊断价值。
将交集基因导入STRING数据库构建PPI网络,利用Cytoscape的cytoHubba插件得到10个hub基因;对合并数据集进行LASSO回归获得10个候选基因;两者取交集后获得核心基因NRG1;通过ROC曲线评估NRG1诊断BNST的价值。
比较肿瘤与正常样本的免疫细胞组成差异,并探讨NRG1与免疫细胞的相关性。
使用CIBERSORT算法计算22种免疫细胞比例,过滤后获得75个样本;分析肿瘤组与对照组间免疫细胞差异,并进行相关性和与NRG1表达的相关分析。
探索BNST相关基因涉及的生物学过程和信号通路,重点关注NRG1。
对差异基因和棕色模块基因的并集进行GO和KEGG富集分析,结果显示主要富集于轴突发育、细胞外基质等过程,以及PI3K-Akt信号通路、细胞黏附分子等通路。
在单细胞水平解析BNST组织中的细胞组成和候选基因表达分布。
对3个BNST样本进行scRNA-seq,经质量控制获得2012个细胞,进行PCA和t-SNE聚类得到14个簇,注释细胞类型,进行拟时间分析和候选基因表达分布分析。
验证生物信息学分析结果,评估NRG1表达与免疫微环境变化的关系。
收集5例BNST和3例正常前庭神经组织,通过IHC、RT-qPCR、Western blot检测NRG1、S100、PI3K/AKT通路蛋白及免疫细胞标志物;通过流式细胞术检测M2巨噬细胞(CD68+CD206+)和中性粒细胞(CD14+CD66b+)比例。
建立可靠的临床前模型,用于验证NRG1功能。
将临床肿瘤组织切成1 mm碎片,消化后移植到NOD/SCID小鼠坐骨神经鞘建立PDX模型;从PDX组织分离细胞建立原代细胞系,并通过形态学、S100染色、NRG1表达等验证模型保真性。
验证NRG1通过PI3K/AKT通路调控BNST细胞增殖、凋亡和迁移。
在细胞系中敲低NRG1(sh-Nrg1-1/2),并分别使用PI3K抑制剂(BEZ235、AZD8055)或激活剂(740 Y-P)处理,检测PI3K/AKT通路蛋白表达、细胞周期、凋亡和迁移能力。
验证敲低NRG1或抑制PI3K/AKT对BNST肿瘤生长和免疫微环境的影响。
利用shRNA敲低NRG1的细胞系和BEZ235、AZD8055或740 Y-P处理的PDX模型,监测肿瘤生长、存活率,并通过Western blot、IHC和流式细胞术检测相关指标。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养、组织解离 | 高糖DMEM培养基 | Gibco | 11965092 |
| 组织解离 | I型胶原酶 | Gibco | 17018029 |
| 分散酶I | Gibco | 17105041 | |
| 细胞培养 | 青霉素-链霉素 | Gibco | 15140163 |
| 胎牛血清 | Gibco | 10100147 | |
| PDX模型建立 | Advanced DMEM/F12培养基 | Gibco | 12634010 |
| 毛喉素 | Gibco | 34427025 | |
| β-调蛋白 | BD Biosciences | 396HB-050 | |
| 胰岛素 | Sigma | I6634 | |
| Hamilton注射器 | Sigma-Aldrich | 22192-U | |
| 药物处理 | BEZ235 | MedChemExpress | HY-50673 |
| AZD8055 | MedChemExpress | HY-10422 | |
| 玉米油 | MedChemExpress | HY-Y1888 | |
| 740 Y-P | MedChemExpress | HY-P0175 | |
| 载体构建 | pGMLV-SC5 | BioVector NTCC Inc | -- |
| BamHI限制酶 | Thermo Fisher Scientific | FD0054 | |
| EcoRI限制酶 | Thermo Fisher Scientific | FD0274 | |
| 凝胶回收DNA提取试剂盒 | Tiangen Biotech | DP204 | |
| T4 DNA连接酶 | Thermo Fisher Scientific | EL0011 | |
| DH5α感受态细胞 | Tiangen Biotech | CB101-02 | |
| 细胞感染 | 嘌呤霉素 | Sigma | 540222 |
| 组织固定 | 甲醛缓冲溶液 | Thermo Fisher Scientific | F5554 |
| HE染色 | 苏木素 | Sangon Biotech | E607317 |
| 伊红 | Solarbio | G1100 | |
| 免疫染色 | S100抗体 | Thermo Fisher Scientific; Abcam | PA5-78161; ab217805 |
| MMR/CD206抗体 | R&D Systems | AF2535 | |
| CD66b抗体 | Abcam | ab300122 | |
| Ki67抗体 | Abcam | ab15580 | |
| 抗HRP抗体 | Jackson ImmunoResearch | 115-035-003; 111-035-003 | |
| 细胞免疫荧光 | 多聚赖氨酸 | Sigma | P7890-100 |
| S100B抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-78161 | |
| F-actin抗体 | Abcam | ab205 | |
| Alexa Fluor-488 | Invitrogen | A-11029 | |
| Alexa Fluor-546 | Invitrogen | A-21085 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| PVDF膜 | Millipore | IPFL00010 | |
| NRG1抗体 | Abcam | ab217805 | |
| PI3K抗体 | Cell Signaling Technology | 4257 | |
| 磷酸化PI3K抗体 | Cell Signaling Technology | 4228 | |
| Akt抗体 | Cell Signaling Technology | 9272 | |
| 磷酸化Akt (Ser473)抗体 | Cell Signaling Technology | 4060 | |
| GAPDH抗体 | Santa Cruz | sc-32233 | |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | 15596026 |
| VBScript II试剂盒 | Abclone | RK20404 | |
| SYBR Green 预混液 | Roche | S5193 | |
| LightCycler480荧光定量PCR仪 | Roche | -- | |
| 流式分析 | CD45-PerCP抗体 | eBioscience | 45-0459-42 |
| CD206-PE抗体 | eBioscience | 12-2069-42 | |
| CD68-PE-Cyanine7抗体 | eBioscience | 25-0681-82 | |
| CD66b-APC抗体 | eBioscience | 17-0668-42 | |
| CD14-PE抗体 | eBioscience | 12-0149-42 | |
| 流式分析(凋亡) | Annexin V-APC/PI凋亡检测试剂盒 | Elabscience | E-CK-A217 |
| 流式分析(细胞周期) | 细胞周期试剂盒 | Elabscience | E-CK-A351 |
| 核糖核酸酶 | ThermoFisher | EN0531 | |
| 碘化丙啶 | Sangon Biotech | 25535-16-4 | |
| Transwell迁移 | Transwell小室 | Corning | 3422 |
| 结晶紫 | Sigma-Aldrich | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 差异表达基因分析 | 数据集GSE39645和GSE54934的样本量、分组、批次效应去除方法、筛选阈值(|logFC|>2,P<0.05) 阅读提示:Materials and methods 部分:Transcriptome sequencing data from public databases 和 Differential gene expression analysis |
| WGCNA分析 | 软阈值β=10,scale-free R=0.9,模块识别参数(最小模块基因数、合并阈值) 阅读提示:Materials and methods 部分:WGCNA analysis |
| 关键基因筛选 | PPI网络构建参数(置信度0.7),LASSO回归参数(λ值),hub基因筛选方法 阅读提示:Materials and methods 部分:Construction of PPIs 和 LASSO regression analysis |
| 免疫浸润分析 | CIBERSORT算法参数,p值过滤标准(p<0.05),模拟次数(100次) 阅读提示:Materials and methods 部分:Immunohistochemical analysis |
| 临床样本分析 | 样本量:5例BNST、3例对照;取材部位;处理前状态;检测指标(NRG1、S100、CD206、CD66b等) 阅读提示:Materials and methods 部分:Sample collection;Results 部分:Clinical tumor samples display high expression of NRG1 |
| PDX模型建立 | 小鼠品系(NOD/SCID)、周龄、性别;细胞数量、注射体积、注射速度;建模周期;肿瘤起始和处理时间 阅读提示:Materials and methods 部分:Construction of the BNST-PDX model and inhibitor treatment |
| 细胞系处理 | 细胞代数(不超过5代);培养条件(DMEM+10% FBS+1% P/S);传代周期(3-4天);细胞接种密度(5×10^4/孔);药物浓度和处理时间(BEZ235 100nM 72h;AZD8055 50nM 48h;740 Y-P 25µg/ml 48h) 阅读提示:Materials and methods 部分:Construction of BNST cell lines and inhibitor treatment |
| NRG1敲低实验 | shRNA序列(Table S1);转染参数(MOI=10);筛选条件(puromycin 1mg/ml);病毒滴度(>10^8 TU/ml) 阅读提示:Materials and methods 部分:Recombinant vector construction and cell infection |
| 体内给药方案 | BEZ235剂量(20 mg/kg/日,口服,14天);AZD8055剂量(0.1 ml/10g,口服,每周两次);740 Y-P剂量(10 mg/kg,每日脑室内注射);肿瘤体积终点(800-1000 mm^3) 阅读提示:Materials and methods 部分:Construction of the BNST-PDX model and inhibitor treatment;Results 部分:PDX model验证 |