建立肥胖T2DM大鼠模型
建立肥胖T2DM大鼠模型,为后续干预实验提供对象。
雄性SD大鼠适应性喂养1周后,随机分为对照组(标准饮食)和高脂饮食组(HFD)。HFD喂养4周后,体重超过对照组20%的大鼠腹腔注射STZ(30 mg/kg),对照组注射等量柠檬酸缓冲液。72小时后,FBG>13.6 mmol/L的大鼠认定为肥胖T2DM模型。
Bo's abdominal acupuncture improves disordered metabolism in obese type 2 diabetic rats through regulating fibroblast growth factor 21 and its related adipokines.
包含高脂饮食联合STZ诱导的肥胖T2DM大鼠模型、随机分组干预(BOAA、COA、Met)、血清生化检测、组织病理学检查、qPCR和Western blot验证,涵盖功能指标和FGF21信号通路分子表达。
高脂饮食联合STZ诱导的肥胖T2DM SD大鼠模型 Sprague-Dawley大鼠
STZ剂量30 mg/kg,单次腹腔注射,新鲜制备柠檬酸缓冲液pH 4.4 造模成功标准:FBG > 13.6 mmol/L BOAA治疗:每日一次,每次30分钟,连续28天,针刺深度3-4 mm Met阳性对照:100 mg·kg-1·d-1口服,连续4周 每组样本量n=10
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立肥胖T2DM大鼠模型,为后续干预实验提供对象。
雄性SD大鼠适应性喂养1周后,随机分为对照组(标准饮食)和高脂饮食组(HFD)。HFD喂养4周后,体重超过对照组20%的大鼠腹腔注射STZ(30 mg/kg),对照组注射等量柠檬酸缓冲液。72小时后,FBG>13.6 mmol/L的大鼠认定为肥胖T2DM模型。
比较BOAA、COA、Met治疗对肥胖T2DM大鼠的影响。
造模成功的肥胖T2DM大鼠随机分为阴性组(不治疗)、BOAA组、COA组和Met组,每组10只。BOAA组针刺特定腹部穴位,COA组针刺常规穴位,Met组口服二甲双胍,阴性组和对照组不干预。
评估治疗对血糖、血脂和胰岛素敏感性相关指标的影响。
治疗结束后,禁食14小时,采集血液分离血清,用自动生化分析仪检测TC、TG、HDL-C、LDL-C,用ELISA试剂盒检测FINS、FGF21、C-P、ADP、瘦素、PPAR-γ,并计算ISI和HOMA-IR。
观察内脏脂肪组织形态学改变,评估脂肪细胞大小变化。
取内脏脂肪组织,固定于10%甲醛,石蜡包埋,切片(5 μm),HE染色,激光共聚焦显微镜观察并拍照。
检测脂肪组织中FGF21、PPAR-γ、PPAR-α、AMPK、瘦素、脂联素的mRNA表达水平。
提取脂肪组织总RNA,逆转录为cDNA,用qPCR检测目标基因的表达,以β-actin为内参,用2-∆∆Ct法计算相对表达量。
检测FGF21信号通路相关蛋白的表达和磷酸化水平。
提取内脏脂肪总蛋白,BCA法定量,SDS-PAGE电泳,转膜,与一抗和二抗孵育,用Odyssey成像系统扫描,ImageJ软件定量分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 链脲佐菌素 | Sigma-Aldrich | WXBC3087V |
| 针灸治疗 | 针灸针 | Suzhou Medical Supplies Factory Co., Ltd. | -- |
| 生化指标检测 | 自动生化分析仪 | Hitachi Limited | Model 7100 |
| ELISA检测 | ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology | -- |
| Western blot | 抗FGF21抗体 | Abcam | ab171941 |
| 抗FGFR3抗体 | Abcam | ab133644 | |
| 抗AMPK抗体 | Cell Signaling Technology | 2532S | |
| 抗p-AMPK抗体 | Cell Signaling Technology | 2535T | |
| 抗LKB1抗体 | Cell Signaling Technology | 3047S | |
| 抗p-LKB1抗体 | Cell Signaling Technology | 3482S | |
| 抗ACC抗体 | Cell Signaling Technology | 3676T | |
| 抗p-ACC抗体 | Cell Signaling Technology | 11818T | |
| 抗ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 9252T | |
| 抗p-ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 4668T | |
| 抗β-actin抗体 | Cell Signaling Technology | 4970S | |
| 抗PPAR-γ抗体 | Proteintech Group, Inc. | 00073972 | |
| 抗PPAR-α抗体 | Proteintech Group, Inc. | 00066732 | |
| qPCR | RNA提取试剂 | Axygen | -- |
| PrimeScriptTM RT试剂盒 | Takara | -- | |
| Western blot | PVDF膜 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Odyssey红外成像系统v3.0.16 | LI-COR Biosciences | -- | |
| 组织病理学检查 | 激光共聚焦显微镜 | Olympus | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | SD大鼠品系、性别、体重;HFD喂养时间(4周);STZ剂量(30 mg/kg)、给药途径(腹腔注射)、溶剂(新鲜制备柠檬酸缓冲液pH 4.4);造模成功标准(FBG>13.6 mmol/L) 阅读提示:Methods 2.2 Animals |
| 动物分组与治疗 | 每组样本量(n=10)、随机分组方式、BOAA取穴、针刺深度、留针时间、治疗频率和时长、COA取穴、Met剂量和给药方式 阅读提示:Methods 2.2 Animals 和 2.3 Acupuncture strategy |
| 血清生化检测 | 采血前禁食时间(14小时)、采血部位(腹主动脉)、离心条件(900×g, 4℃, 15分钟)、检测仪器(Hitachi Model 7100)、ELISA试剂盒供应商及货号 阅读提示:Methods 2.5 Determination of biochemical parameters |
| qPCR检测 | RNA提取试剂、逆转录条件、qPCR反应条件(循环数、温度和时间)、内参基因(β-actin)、计算方法(2-∆∆Ct) 阅读提示:Methods 2.6 Real-time quantitative polymerase chain reaction 及 Table 1和Table 2 |
| Western blot检测 | 蛋白提取方法、BCA定量、SDS-PAGE条件、一抗稀释比例、二抗稀释比例、检测系统 阅读提示:Methods 2.7 Western blot analysis |