FSP1蛋白的表达、纯化与结晶
获得FSP1蛋白的晶体结构,揭示其催化机制的结构基础。
将全长或截短的cFSP1和hFSP1基因克隆至pET载体重组表达于大肠杆菌BL21(DE3),经Ni亲和层析和凝胶过滤纯化。cFSP1ΔN进行还原性甲基化处理,并与CoQ1共结晶。采用Se-Met衍生和SAD法或分子置换解析结构。
Structural insights into FSP1 catalysis and ferroptosis inhibition.
包含晶体结构解析、体外酶活测定、细胞铁死亡功能验证及HPLC-MS等分析,多个独立证据层级支持结论。
鸡FSP1(cFSP1)重组蛋白 人FSP1(hFSP1)重组蛋白 HT1080细胞及hFSP1敲除细胞系 HEK293T细胞
cFSP1(12-373残基)与CoQ1共晶结构(分辨率2.6 Å) CTD缺失突变体(cFSP1ΔCTD、hFSP1ΔCTD)的NADH氧化活性丧失 hFSP1 E156A和L330S突变对CoQ氧化还原酶活性及铁死亡抑制的影响 HPLC-MS/MS鉴定重组FSP1中6-羟基-FAD的存在 6-羟基-FAD对HT1080 hFSP1KO细胞RSL3诱导铁死亡的挽救作用
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得FSP1蛋白的晶体结构,揭示其催化机制的结构基础。
将全长或截短的cFSP1和hFSP1基因克隆至pET载体重组表达于大肠杆菌BL21(DE3),经Ni亲和层析和凝胶过滤纯化。cFSP1ΔN进行还原性甲基化处理,并与CoQ1共结晶。采用Se-Met衍生和SAD法或分子置换解析结构。
验证FSP1形成同源二聚体,并检测CTD在二聚化、酶活及铁死亡抑制中的作用。
通过凝胶过滤色谱和动态光散射分析FSP1在溶液中的寡聚状态,通过免疫共沉淀验证细胞内的自相互作用。构建CTD截短突变体,测定NADH氧化活性,并在HT1080 hFSP1KO细胞中检测突变体对RSL3诱导铁死亡的抑制作用。
确定FAD和泛醌在FSP1中的结合位点,并阐明与催化功能相关的关键残基。
解析cFSP1ΔN与CoQ1的复合物结构,分析FAD和CoQ1的结合模式,鉴定参与结合的残基。通过点突变(如K117A、K292A/M293A/Y295A、R53A)验证这些残基对NADH氧化活性的影响。
测定FSP1对NADH和NADPH的利用效率,并验证其CoQ还原活性。
通过酶动力学实验测定FSP1氧化NADH和NADPH的Km和kcat值,比较CoQ1存在时的活性。
确认FSP1产生6-羟基-FAD,并研究其在铁死亡抑制中的直接作用。
通过HPLC-MS/MS和NMR鉴定重组FSP1中的6-羟基-FAD。制备FAD或6-羟基-FAD重构的hFSP1,比较其NADH氧化活性。在HT1080野生型及hFSP1KO细胞中,用6-羟基-FAD处理,评估对RSL3诱导铁死亡的挽救效果。并使用FENIX测定其自由基捕获活性。
验证FSP1在NAD(P)H和氧存在下产生H2O2,并研究FAD羟基化活性。
使用荧光探针试剂盒检测酶反应中H2O2的产生。将FAD重构的cFSP1或hFSP1与NADPH和H2O2孵育,用HPLC分析FAD向6-羟基-FAD的转化。使用E155A/E156A突变体验证关键残基的作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 蛋白表达与纯化 | pET-22b载体 | Novagen | -- |
| pET28a-His-SUMO载体 | -- | -- | |
| QuikChange定点突变试剂盒 | Agilent | -- | |
| BL21 (DE3)感受态细胞 | -- | -- | |
| LB培养基 | -- | -- | |
| 蛋白纯化 | Ni螯合琼脂糖快流速树脂 | GE Healthcare | -- |
| Superdex 200 Increase 10/300 GL凝胶过滤柱 | GE Healthcare | -- | |
| HiTrap Heparin HP柱 | GE Healthcare | -- | |
| 超高压细胞破碎仪 | JNBIO | -- | |
| 蛋白结晶 | PEG550MME | -- | -- |
| 辅酶Q1 | -- | -- | |
| 结构解析 | XDS数据处理软件 | -- | -- |
| HKL3000数据处理软件 | -- | -- | |
| PHENIX软件 | -- | -- | |
| COOT软件 | -- | -- | |
| PyMOL软件 | -- | -- | |
| ChimeraX软件 | -- | -- | |
| 酶活测定 | AMR-100酶标仪 | Allsheng | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher | -- | |
| TRIzol试剂 | Ambion | -- | |
| HiScript II Q RT SuperMix逆转录试剂盒 | Vazyme | -- | |
| pcDNA3.1载体 | Invitrogen | -- | |
| LentiCRISPRv2载体 | Addgene | 52961 | |
| 蛋白检测 | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Sigma-Aldrich | -- | |
| Bradford蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 硝酸纤维素膜 | Millipore | -- | |
| 抗FSP1抗体 | Proteintech | 20886-1-AP | |
| 辣根过氧化物酶标记山羊抗兔IgG | Jackson ImmunoResearch | 111-035-003 | |
| 抗HSP90抗体 | ZSGB-BIO | TA-12 | |
| 抗β-actin抗体 | ZSGB-BIO | TA-09 | |
| 辣根过氧化物酶标记山羊抗小鼠IgG | Jackson ImmunoResearch | 115-035-003 | |
| 免疫共沉淀 | 抗FLAG M2亲和凝胶 | Sigma-Aldrich | -- |
| 抗FLAG抗体 | Invitrogen | PA1-984B | |
| 抗Myc抗体 | CST | 2278 | |
| 细胞死亡检测 | Sytox Green染料 | Thermo Fisher | -- |
| RSL3 | -- | -- | |
| Ferrostatin-1 | -- | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Dojindo Laboratories | -- |
| FENIX assay | 蛋黄卵磷脂脂质体 | -- | -- |
| STY-BODIPY荧光探针 | -- | -- | |
| 四氢生物蝶呤 | -- | -- | |
| Mithras LB940酶标仪 | Berthold Technologies | -- | |
| 凝胶过滤 | 凝胶过滤分子量标准品 | Sigma-Aldrich | MWGF1000-1KT |
| DLS | DynaPro NanoStar动态光散射仪 | Wyatt Technology | -- |
| Dynamics 7.0软件 | Wyatt Technology | -- | |
| 6-羟基-FAD制备 | HiTrap Q HP阴离子交换柱 | GE Healthcare | -- |
| Supelclean LC-18固相萃取柱 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 真空冷冻干燥机 | Heto-Holten | -- | |
| Bruker Avance DRX-600核磁共振波谱仪 | Bruker Corp. | -- | |
| HPLC | Shimadzu LC-10AT VP高效液相色谱泵 | Shimadzu | -- |
| YMC-pack pro-C18反相色谱柱 | YMC | -- | |
| HPLC-MS/MS | 超高效液相色谱系统 | Dionex | -- |
| 电喷雾-四极杆-飞行时间质谱仪 | Bruker Daltonics | -- | |
| FAD标准品 | Sigma-Aldrich | F6625 | |
| micro-FTIR | Nicolet iN10 MX傅里叶变换红外光谱仪 | Thermo-Fisher | -- |
| 辅因子重构 | 尿素 | -- | -- |
| H2O2检测 | 过氧化氢荧光检测试剂盒 | Elabscience | -- |
| Enspire多功能酶标仪 | PerkinElmer | -- | |
| 统计绘图 | GraphPad Prism软件 | GraphPad Software Inc. | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 蛋白表达与纯化 | 表达菌株(BL21(DE3))、诱导条件(0.1 mM IPTG,18°C,16h)、纯化缓冲液(buffer A:PBS pH7.4, 150 mM KCl, 5% glycerol, 5 mM β-mercaptoethanol) 阅读提示:Methods: The cloning, expression, and purification of FSP1 |
| 结晶与结构解析 | cFSP1ΔN浓度(~3 mg/ml)、结晶条件(1.8 M (NH4)2SO4, 0.1 M Bis-Tris pH6.5, 3% PEG550MME;CoQ1: 14% PEG8000, 0.1 M MES pH6.2, 160 mM CaAc2, 20% glycerol)、CoQ1浓度(300 μM共结晶) 阅读提示:Methods: Crystallization, data collection, and structure determination |
| 酶活测定 | 反应缓冲液(50 mM Tris-HCl pH8.0, 250 mM NaCl)、底物浓度(NAD(P)H 500 μM, CoQ1 200 μM)、酶浓度(cFSP1 0.5 μM, hFSP1 0.2 μM)、340 nm吸收变化 阅读提示:Methods: NAD(P)H oxidation and enzyme kinetics assays |
| 细胞铁死亡实验 | HT1080 hFSP1KO细胞株、转染试剂(Lipofectamine 3000)、RSL3浓度(75 nM)、处理时间(3h)、Fer-1浓度(2 μM)、细胞密度(24孔板100000/孔) 阅读提示:Methods: Human cell death and viability assays 及图2,4图注 |
| 6-羟基-FAD制备与检测 | 6-羟基-FAD纯化方法(镍柱、Q柱、SPE)、HPLC-MS条件(YMC C18柱,流动相A: 5 mM 乙酸铵 pH5.0, B: 100% 乙腈,梯度5%-50% B,波长254 nm) 阅读提示:Methods: Preparation of 6-hydroxy-FAD, HPLC and HPLC-MS/MS |