单克隆抗体3A5C7的制备与鉴定
开发并验证靶向MOR的单克隆抗体,并评估其特异性、亲和力和构象结合能力。
通过DNA免疫联合细胞免疫的杂交瘤技术制备单克隆抗体,并使用Western blot、ELISA、免疫荧光、流式细胞术和ITC鉴定其特性。
Monoclonal antibody targeting mu-opioid receptor attenuates morphine tolerance via enhancing morphine-induced receptor endocytosis.
包含体外细胞模型(HEK293T、SH-SY5Y)、体内动物模型(小鼠)、功能验证(内吞、耐受行为)和机制验证(siRNA、shRNA敲低GRK2/β-arrestin2)等独立证据层级。
HEK293T-MOR细胞 SH-SY5Y细胞(视黄酸诱导分化) C57BL/6小鼠模型
3A5C7单克隆抗体(10 μg/mL)与吗啡(10 μM)共同处理HEK293T-MOR和SH-SY5Y细胞 GRK2和β-arrestin2的siRNA敲低及shRNA敲低验证 慢性鞘内注射3A5C7(4 μg, 5 μL)联合吗啡皮下注射(10 mg/kg) 急性鞘内注射3A5C7(4 μg, 5 μL)在慢性吗啡处理后 热板实验和纳洛酮诱导的戒断跳跃测试
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
开发并验证靶向MOR的单克隆抗体,并评估其特异性、亲和力和构象结合能力。
通过DNA免疫联合细胞免疫的杂交瘤技术制备单克隆抗体,并使用Western blot、ELISA、免疫荧光、流式细胞术和ITC鉴定其特性。
确定3A5C7是否促进吗啡诱导的MOR内吞。
在HEK293T-MOR和SH-SY5Y细胞中,通过免疫荧光、流式细胞术和Western blot检测MOR的内吞。
探究3A5C7促进MOR内吞的分子机制。
检测GRK2表达和β-arrestin2转位,并通过siRNA敲低GRK2或β-arrestin2后观察MOR内吞的变化。
评估3A5C7是否影响MOR内吞后的回收。
在诱导MOR内吞后移除吗啡和抗体,通过免疫荧光、流式细胞术和Western blot检测MOR回收。
评估3A5C7在体外对吗啡耐受标志物的影响。
检测MOR磷酸化(S375)、cAMP积累和PKA表达,并通过siRNA敲低验证GRK2/β-arrestin2的依赖性。
评估3A5C7在动物模型中对吗啡耐受和依赖的治疗效果。
通过鞘内导管给予3A5C7,进行热板测试和纳洛酮诱导的戒断跳跃测试,并检测相关分子标志物。
确证3A5C7在体内的作用机制依赖于GRK2/β-arrestin2。
通过鞘内电穿孔递送shRNA敲低DRG中的GRK2或β-arrestin2,评估3A5C7的抗耐受和抗依赖效果。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Life Technologies | -- |
| DMEM培养基 | Life Technologies | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 药物处理 | 视黄酸 | Sigma-Aldrich | -- |
| DAMGO | Sigma-Aldrich | -- | |
| 莫能菌素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| 抗体 | 抗MOR抗体 | Abcam | ab137460 |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| 抗GRK2抗体 | Proteintech | 13990-1-AP | |
| 抗β-arrestin2抗体 | Proteintech | 10171-1-AP | |
| 抗磷酸化MOR Ser375抗体 | Cell Signaling Technology | 3451 | |
| 抗PKA抗体 | Cell Signaling Technology | 4782 | |
| 抗微管蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | 2146 | |
| 抗Na+/K+-ATP酶α1亚基抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-21712 | |
| 抗Rab5抗体 | Biorbyt | orb153348 | |
| 抗LAMP-1抗体 | Proteintech | 21997-1-AP | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Sigma-Aldrich | -- |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Roche | -- | |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | Roche | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific Inc. | -- | |
| PVDF膜 | Amersham Biosciences | -- | |
| 增强化学发光试剂 | Pierce Biotechnology | -- | |
| ELISA | cAMP ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-0056c |
| 乳酸脱氢酶检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| RNA提取 | RNA提取试剂盒 | OMEGA | -- |
| RT-PCR | PrimeScript逆转录试剂盒 | TAKARA Bio | -- |
| 实时定量PCR | SYBR Green I荧光染料 | TAKARA Bio | -- |
| 流式分析 | 抗MOR N端抗体 | Alomone Labs | AOR-011 |
| FITC标记二抗 | Invitrogen | -- | |
| 免疫荧光 | Alexa 488标记驴抗小鼠IgG | Thermo Fisher Scientific Inc. | -- |
| Alexa 555标记驴抗兔IgG | Thermo Fisher Scientific Inc. | -- | |
| Alexa 555标记驴抗山羊IgG | Thermo Fisher Scientific Inc. | -- | |
| 抗体纯化 | 小鼠IgG | Thermo Fisher Scientific Inc. | -- |
| 细胞筛选 | G418遗传霉素 | Thermo Fisher Scientific Inc. | -- |
| 嘌呤霉素 | 文中未明确说明 | -- | |
| 蛋白质提取 | 质膜蛋白提取试剂盒 | Invent Biotechnologies | SM-005 |
| 免疫共沉淀 | 免疫共沉淀试剂盒 | Thermo Fisher Scientific Inc. | 26149 |
| 免疫共沉淀抗体 | 抗MOR抗体 | Alomone Labs | AOR-011 |
| 微量热泳动 | MicroCal iTC200等温滴定量热仪 | GE HealthCare | -- |
| 流式细胞仪 | LSR Fortessa流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| qPCR仪 | ABI 7200实时荧光定量PCR仪 | Applied Biosystems | -- |
| miniOpticon实时荧光定量PCR仪 | Bio-Rad | -- | |
| 统计软件 | GraphPad Prism统计软件 | GraphPad Software | -- |
| 动物实验 | 聚乙烯导管 | RWD Life Science Co., Ltd. | -- |
| 镍铬合金丝 | Wire Tronic | 0.0026″ | |
| 脉冲发生器 | BTX Harvard Bioscience | -- | |
| 微量注射泵 | Baoding Longer Precision Pump Co., Ltd. | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 3A5C7单克隆抗体制备 | 免疫方案(DNA和细胞免疫的剂量、时间间隔)、细胞融合与筛选方法 阅读提示:材料与方法2.1节及补充图S1、S2 |
| 细胞培养 | 细胞系(HEK293T、SH-SY5Y)的培养基成分、FBS浓度、G418浓度(800 μg/mL)、视黄酸浓度(10 μM) 阅读提示:材料与方法2.2节 |
| MOR内吞实验 | 药物处理浓度(吗啡10 μM、3A5C7 10 μg/mL)、处理时间(72小时) 阅读提示:结果3.2节及图1图注 |
| siRNA敲低 | siRNA序列、转染试剂浓度、敲低时间(48小时) 阅读提示:材料与方法2.4节 |
| 体外耐受模型 | SH-SY5Y分化诱导条件(RA浓度、时间)、吗啡处理浓度和时间、cAMP检测方法 阅读提示:结果3.1和3.5节 |
| 体内耐受实验 | 小鼠品系(C57BL/6)、给药途径(皮下、鞘内)、剂量(吗啡10 mg/kg、3A5C7 4 μg)、给药频率和时间 阅读提示:材料与方法2.13节及图6B |
| 体内依赖实验 | 慢性吗啡递增剂量方案、纳洛酮剂量(1 mg/kg)、戒断跳跃计数时间 阅读提示:材料与方法2.13和2.16节 |
| 鞘内电穿孔 | shRNA病毒滴度(109 PFU)、电穿孔参数(200 V, 75 ms, 5次) 阅读提示:材料与方法2.14节 |