检测Adipsin在糖尿病中的表达变化
明确Adipsin在糖尿病状态下的表达水平及组织分布。
收集糖尿病患者和健康对照血清,ELISA检测Adipsin;构建HFD/STZ诱导的2型糖尿病小鼠模型,检测不同时间点血清Adipsin水平,并在多种组织(BAT、eWAT、iWAT等)中分析Adipsin mRNA和蛋白表达,通过免疫荧光观察心脏组织Adipsin含量。
Adipsin alleviates cardiac microvascular injury in diabetic cardiomyopathy through Csk-dependent signaling mechanism.
包含体外CMECs模型、动物模型、患者样本,并进行功能验证(凋亡、增殖、迁移、管形成、通透性)和机制验证(Western blot、Co-IP、LC-MS/MS)。
小鼠心脏微血管内皮细胞(CMECs) 脂肪组织特异性Adipsin过表达小鼠(AdipsinLSL/LSL-Cre) 2型糖尿病小鼠模型(高脂饮食联合链脲佐菌素) 糖尿病患者和健康个体血清样本
Adipsin过表达小鼠的构建及基因型确认(AdipsinLSL/LSL-Cre) 糖尿病模型中高脂饮食(D12492)和STZ注射剂量(50 mg/kg,连续5天) HG + PA处理条件(25 mM葡萄糖、300 μM棕榈酸) Csk敲低方式(AAV9-Csk-shRNA,2.0E+10病毒基因组颗粒/只) 外泌体注射剂量(200 μL,1.0E+10颗粒/kg,每周一次)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
明确Adipsin在糖尿病状态下的表达水平及组织分布。
收集糖尿病患者和健康对照血清,ELISA检测Adipsin;构建HFD/STZ诱导的2型糖尿病小鼠模型,检测不同时间点血清Adipsin水平,并在多种组织(BAT、eWAT、iWAT等)中分析Adipsin mRNA和蛋白表达,通过免疫荧光观察心脏组织Adipsin含量。
验证Adipsin过表达是否缓解糖尿病诱导的心脏微血管损伤。
使用AdipsinLSL/LSL-Cre小鼠及对照,诱导糖尿病后,通过扫描电镜观察微血管铸型、透射电镜观察硝酸镧渗漏、CD31免疫荧光染色评估微血管密度。
验证Adipsin过表达是否改善糖尿病小鼠的心脏功能障碍和不良重塑。
通过超声心动图检测E/A比值、LVEF、LVFS、LVIDs、LVIDd;称重评估心脏肥大;Masson三色染色评估心肌纤维化。
探究Adipsin富集外泌体对CMECs增殖、凋亡、迁移、管形成和通透性的影响。
分离原代CMECs,HG + PA处理模拟糖尿病;提取Adipsin富集外泌体并鉴定;用外泌体处理CMECs,检测TUNEL、Annexin V-FITC、EdU、CCK-8、划痕实验、Transwell迁移、管形成、FITC-dextran通透性和TEER,以及VE-cadherin分布。
揭示Adipsin抑制VE-cadherin内化和维持粘附连接的潜在机制。
检测Adipsin对Src磷酸化、VE-cadherin磷酸化和膜表达的影响;通过LC-MS/MS和Co-IP鉴定Adipsin结合蛋白Csk;用siRNA敲低Csk,评估对Src磷酸化、VE-cadherin磷酸化和内化的影响。
确认Csk在Adipsin介导的微血管保护中的必要性。
通过AAV9-Csk-shRNA在体内敲低Csk,观察Adipsin过表达对微血管屏障完整性(扫描电镜、硝酸镧渗漏)的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| ELISA检测 | ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology Co., Ltd | E-EL-H6007 |
| 小鼠Adipsin ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology Co., Ltd | E-EL-M0335c | |
| 动物模型建立 | 高脂饮食 | Research Diets | D12492 |
| 链脲佐菌素 | Sigma-Aldrich | S0130 | |
| 基因型鉴定 | 基因组PCR | Bimake | B40015 |
| 细胞培养 | 胶原酶II | -- | -- |
| 胰蛋白酶 | -- | -- | |
| 外泌体分离 | 外泌体分离试剂盒 | Invitrogen | 4484450 |
| 外泌体鉴定 | 透射电镜 | JEM-2000EX | -- |
| 纳米颗粒追踪分析 | Nanosight-NS300 | -- | |
| 扫描电镜 | 扫描电镜 | HITACHI | S4800 |
| 透射电镜 | 透射电镜 | HITACHI | FE-2000 |
| 通透性检测 | FITC标记的葡聚糖 | Sigma-Aldrich | 46945 |
| Transwell小室 | Corning | 3413 | |
| TEER测量 | EVOM电阻仪 | World Precision Instruments Inc | -- |
| siRNA转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | -- | -- |
| Opti-MEM培养基 | -- | -- | |
| 免疫共沉淀 | RIPA裂解缓冲液 | Beyotime | P0013B |
| Pierce Protein A/G磁珠 | -- | -- | |
| 细胞迁移实验 | Transwell小室 | Corning | 3422 |
| 结晶紫 | Beyotime | C0121 | |
| 管形成实验 | 基质胶 | Corning | 354248 |
| 流式细胞术 | Annexin V-FITC凋亡检测试剂盒 | Beyotime | C1062 |
| 碘化丙啶 | -- | -- | |
| 流式细胞仪 | Beckman Coulter | CytoFLEX | |
| TUNEL染色 | TUNEL凋亡检测试剂盒 | Beyotime | C1088 |
| 免疫荧光 | DAPI染色液 | Beyotime | C1006 |
| CCK-8检测 | CCK-8试剂盒 | Sigma | 96992 |
| 酶标仪 | Molecular Devices | SpectraMax | |
| 免疫荧光 | Triton X-100 | Beyotime | P0096 |
| 山羊血清 | Beyotime | C0265 | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | 15596018 |
| NanoDrop 2000分光光度计 | Thermo Scientific | -- | |
| PrimeScript RT试剂盒(含gDNA Eraser) | Takara | RR047A | |
| TB Green Premix Ex Taq II预混液 | Takara | RR820A | |
| StepOnePlus实时荧光定量PCR仪 | Thermo Fisher Scientific | 4376600 | |
| Western blot | 血清蛋白提取试剂盒 | Bestbio | BB-31954 |
| RIPA裂解缓冲液 | Beyotime | P0013E | |
| BCA蛋白浓度测定试剂盒 | Beyotime | P0010 | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 动物实验 | AAV9-Csk-shRNA | Tsingke Biotechnology Co., Ltd | -- |
| Hamilton微量注射器 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 高脂饮食(D12492)喂养时间、STZ注射剂量(50 mg/kg)及注射天数(5天)、血糖标准(空腹血糖≥16.6 mmol/L)、小鼠品系(AdipsinLSL/LSL-Cre及对照)、性别(雄性) 阅读提示:Methods - Animal studies,Additional file 1: Fig. S1 |
| CMECs分离与处理 | CMECs分离方法(胶原酶II和胰蛋白酶消化时间)、HG + PA处理浓度(25 mM葡萄糖、300 μM棕榈酸)、对照组条件(5 mM葡萄糖、溶剂对照)、甘露醇渗透压对照 阅读提示:Methods - Isolation of mouse primary cardiac microvascular endothelial cells |
| 外泌体分离与鉴定 | 脂肪组织来源(皮下和附睾)、孵育时间(24小时)、离心步骤(500g、2000g、10000g、100000g)、超速离心时间(70分钟)、外泌体鉴定方法(TEM、NTA、Western blot标记物) 阅读提示:Methods - Isolation and identification of adipose tissue-derived exosomes |
| 体外功能实验 | siRNA转染浓度(50 nM)、转染时间(24-48小时)、通透性检测使用FITC-dextran(70 kDa)及浓度、TEER测量时间点、管形成实验细胞密度(2.0E+5)、Matrigel体积(250 μL) 阅读提示:Methods - siRNA transfection, Permeability assay in vitro, TEER, Tube formation assay |
| 体内Csk敲低 | AAV9-Csk-shRNA剂量(2.0E+10病毒基因组颗粒/只)、注射部位(左心室壁3个位点)、注射时间(STZ注射后) 阅读提示:Methods - Animal studies,Additional file 1: Fig. S2 |