使用WISP1预处理的软骨细胞支架修复关键性颅骨缺损

Repairing a critical cranial defect using WISP1-pretreated chondrocyte scaffolds.

作者信息Idan Carmon, Shira Kalmus, Anna Zobrab, Michael Alterman, Raphaelle Emram, May Gussarsky, Leonid Kandel, Eli Reich, Nardi Casap, Mona Dvir-Ginzberg
PMID36949842
发布时间2023-03-18
DOI10.1177/20417314231159740

实验完整度

包含体外微团培养和支架培养、体内大鼠关键性颅骨缺损模型、活体CT和microCT、组织学及血清学分析,并进行了机制验证(β-catenin)。

主要模型

人OA软骨细胞微团培养 大鼠胚胎肋软骨细胞-胶原支架复合物 Lewis大鼠关键性颅骨缺损模型

重点核对

软骨细胞来源:人OA软骨细胞(P1/P5)和E17大鼠胚胎肋软骨细胞 生长因子浓度:BMP2(50或100 ng/mL)、WISP1(100或200 ng/mL) WISP1预处理方案:200 ng/mL WISP1,48小时 支架:Zimmer® Collagen Tape(cat #0100Z),细胞接种密度1×10^6细胞/支架 体内模型:Lewis大鼠8 mm关键性颅骨缺损,观察12周

摘要

在颅骨扁平骨骨折中,只有当骨折端紧密接触时才会发生自发性骨修复。然而,在骨不连续广泛的情况下,通常需要手术干预。为此,采集自体骨并手术整合到骨折部位。在此,我们提议使用软骨作为替代自体来源,以促进颅骨骨折修复。这种方法的优点是可以减少供区并发症,可能归因于软骨的无血管和无神经特性。作为第一步,我们尝试在体外诱导软骨基质矿化,使用微团原代软骨细胞培养,与BMP2和/或WISP1共孵育,并在3周培养期后组织学检查。接下来,在体外评估了软骨细胞接种的胶原蛋白支架的表达谱和ALP活性。最后,将软骨细胞接种的胶原蛋白支架植入Lewis大鼠8毫米关键性颅骨缺损模型中,通过活体CT成像12周直至处死。终点分析包括microCT、组织学和血清骨相关标志物水平。微团培养在WISP1给药后显示出成骨诱导趋势,这种趋势在软骨细胞接种的支架中得以维持。因此,进行了体内分析以评估WISP1预处理的软骨细胞(WCS)与未处理的软骨细胞(UCS)在颅骨缺损模型中的影响,并与未处理对照组(包括缺损相关的血凝块(BC)或空胶原蛋白支架(CS)植入物)进行比较。活体CT和microCT显示,植入UCS的关键性缺损中矿化体积更高,WCS有一些结构改善。组织学分析显示WCS中合成代谢骨形成更高,并且在WCS和UCS组中检测到小梁骨。植入关键性颅骨缺损的软骨细胞加速了天然样骨组织的形成,特别是在培养中WISP1预处理的条件下。最终,这些数据支持使用自体软骨细胞修复关键性颌面缺损。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
探讨软骨细胞作为替代自体骨移植来源修复关键性颅骨缺损的可行性,并评估WISP1预处理对软骨细胞成骨分化和骨修复的影响。
核心机制
WISP1通过诱导β-catenin核转位激活WNT信号通路,促进软骨细胞矿化和成骨分化。
主要证据
体外微团培养显示WISP1增加β-catenin核共定位并减少Alcian Blue染色,支架培养显示WISP1增加COL1、RUNX2表达趋势;体内大鼠缺损模型显示WCS和UCS均增加骨体积,WCS改善骨微结构和矿化沉积距离。
研究意义
该研究支持使用自体软骨细胞修复关键性颌面部缺损,可能减少供区并发症,为临床治疗提供新思路。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

人软骨细胞微团培养与成骨诱导

评估BMP2和WISP1对成人软骨细胞体外矿化的影响

P1或P5人OA软骨细胞在96孔板中离心形成微团,在eBioMPM培养基中加入不同浓度BMP2和/或WISP1培养3周,然后进行组织学染色和β-catenin免疫荧光。

2

软骨细胞-胶原支架构建与体外评估

检测软骨细胞在3D支架中的存活、基因表达和ALP活性

P1软骨细胞接种到Zimmer胶原胶带上,在eBioMPM中培养3周,进行DNA定量、RT-qPCR和ALP活性检测。

3

大鼠关键性颅骨缺损模型建立与移植

评估软骨细胞支架在体内的骨修复效果

在Lewis大鼠中制造8 mm颅骨缺损,植入空CS、UCS或WCS支架,或不植入作为血凝块对照,通过活体CT监测12周。

4

microCT和组织学分析

定量新生骨量、骨微结构和组织学反应

在12周处死后进行microCT扫描,测量骨体积、BV/TV、皮质和小梁参数;组织学切片进行Paragon染色、荧光标记的MAD分析,以及病理评分。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Sigma-Aldrich--
胎牛血清Biological Industries--
青霉素-链霉素-两性霉素B溶液Biological Industries--
胰蛋白酶-EDTA----
Zimmer胶原胶带Zimmer Biomet Dental0100Z
WISP1Peprotech Asia--
BMP2Peprotech Asia--
胰岛素-转铁蛋白-硒Biological Industries--
抗坏血酸----
β-甘油磷酸----
胶原酶Worthington Biochemical Corp.--
TRIzol试剂Ambion, life technologies--
NanoDrop分光光度计Thermo Fisher Scientific--
Bradford试剂----
Quick-DNA/RNA微量制备试剂盒ZYMO Research--
Direct-zol RNA微量制备试剂盒ZYMO Research--
iScript cDNA合成试剂盒Bio-Rad--
高容量cDNA逆转录试剂盒Applied Biosystems--
SYBR Green反应预混液Bio-Rad--
CFX96 Touch实时荧光定量PCR仪Bio-Rad--
CFX Connect实时荧光定量PCR仪Bio-Rad--
ABI Veriti热循环仪Applied Biosystems--
茜素红SigmaA5533
阿利新蓝SigmaB8438
Entellan封片胶Merck1.07961.0100
von Kossa银染试剂盒Merck1.00362.0001
Eclipse Ci光学显微镜Nikon--
兔抗β-Catenin多克隆抗体Abcamab6302
Texas Red标记抗兔二抗Vector laboratoriesTI-1000
DAPI----
Hydromount封片剂Electron Microscopy Science--
Ti-Eclipse尼康成像系统Nikon--
Andor Zyla nsc05537相机Nikon--
ALP活性检测试剂盒Abcamab83371
4-甲基伞形酮磷酸酯----
μCT 40显微CT扫描仪Scanco-medical--
Dragonfly软件ORS--
Siemens Inveon临床前小动物PET/CT扫描仪Siemens Healthcare--
Inveon Research Workplace软件Siemens--
Olympus VS200玻片扫描仪Olympus--
VS-304M相机Olympus--
Olympus BX46相机Olympus--
CTX-1 ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-R1456
PINP ELISA试剂盒MyBioSourceMBS2506450
茜素络合酮Sigma AldrichA3882
钙黄绿素绿Sigma AldrichC0875

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
人软骨细胞微团培养
细胞代数P1/P5;微团细胞数0.5×10^6;离心条件1500rpm 5min;培养基eBioMPM;BMP2浓度50或100 ng/mL;WISP1浓度100或200 ng/mL;培养3周
阅读提示:Materials and Methods 部分 'Generation of chondrocyte micromass or chondrocyte-seeded scaffolds'
软骨细胞-胶原支架构建
支架类型Zimmer® Collagen Tape(cat #0100Z);尺寸0.5×0.3 cm;细胞接种密度1×10^6细胞/支架;接种体积20μL eDMEM;吸附1h;培养3周
阅读提示:Materials and Methods 部分 'Generation of chondrocyte micromass or chondrocyte-seeded scaffolds' 和 'Characterization of micromass cultures or chondrocyte-seeded scaffolds'
大鼠关键性颅骨缺损模型
大鼠品系、性别、年龄:Lewis雄性3月龄;缺损大小8mm;麻醉和镇痛:Ketamine/xylazine、buprenorphine;分组:BC、CS、UCS、WCS;样本量n=7/组(CT),n=5/组(组织学)
阅读提示:Materials and Methods 部分 'Rat critical defect model', 'Surgical procedure in Lewis rats' 和 'In vivo live 3D micro-CT scans'
活体CT成像
扫描时间点:1、6、9、12周;扫描参数:95μm pixel size, 360 projections, 300ms exposure, 80kVP
阅读提示:Materials and Methods 部分 'In vivo live 3D micro-CT scans'
microCT分析
扫描参数70kV、115μA;重建软件Dragonfly;分析参数:BV、BV/TV、皮质周长和面积、小梁分离度等
阅读提示:Materials and Methods 部分 'Micro-computed tomography (μCT)'
组织学分析
切片厚度40-60μm;染色:Paragon染色;MAD分析:alizarin-complexon和calcein给药时间与剂量(25mg/kg,分别在术后2周和6周)
阅读提示:Materials and Methods 部分 'Histological processing and analysis of rat calvaria at 12 week endpoints'
血清分析
血清稀释1:10;ELISA检测CTX-1(E-EL-R1456)和PINP(MBS2506450)
阅读提示:Materials and Methods 部分 'Serum analysis of bone turnover markers'