动物模型建立与分组
建立NAFLD和糖尿病小鼠模型,评估CANA对代谢表型的影响
使用ob/ob小鼠和STZ诱导的糖尿病小鼠模型,随机分组,给予CANA或CMC-Na灌胃,记录体重、食物摄入等。
Canagliflozin ameliorates the development of NAFLD by preventing NLRP3-mediated pyroptosis through FGF21-ERK1/2 pathway.
包含动物模型(ob/ob和糖尿病小鼠)和细胞模型(AML12和J774A.1),并进行功能验证(代谢表型、组织学、基因表达)和机制验证(信号通路、抑制剂干预)。
ob/ob小鼠和糖尿病小鼠模型 FFA诱导的AML12肝细胞 LPS加尼日利亚菌素处理的J774A.1巨噬细胞
CANA剂量:10 mg/kg/d口服灌胃,持续14周(ob/ob)或11周(DM) AML12细胞:0.75 mM FFA处理24小时,CANA 40 μM处理24小时 J774A.1细胞:LPS 1 μg/mL 6小时,尼日利亚菌素10 μM 1小时,CANA 10 μM预处理1小时 抑制剂:PD166866 (10 μM)、PD98059 (5 μM)、compound C (10 μM)预处理1小时 样本量:每组5-10只小鼠,细胞实验重复数未明确
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立NAFLD和糖尿病小鼠模型,评估CANA对代谢表型的影响
使用ob/ob小鼠和STZ诱导的糖尿病小鼠模型,随机分组,给予CANA或CMC-Na灌胃,记录体重、食物摄入等。
在细胞水平验证CANA对脂质积累和焦亡的影响
AML12细胞用FFA诱导脂肪变性,CANA处理;J774A.1细胞用LPS和尼日利亚菌素诱导焦亡,CANA预处理。
评估CANA对肝脏组织学变化和细胞脂质积累的影响
通过HE、油红O、Masson染色观察肝脏病理变化;Nile red染色检测细胞脂质;PI染色检测细胞死亡。
检测脂质代谢、炎症、纤维化和焦亡相关基因及蛋白表达
采用RT-qPCR和Western blot检测相关基因和蛋白;免疫组化检测NLRP3;免疫荧光检测IL-1β。
验证FGF21-ERK1/2通路在CANA作用中的因果作用
在J774A.1细胞中使用FGFR1抑制剂PD166866、ERK1/2抑制剂PD98059、AMPK抑制剂Compound C预处理,观察对CANA抑制焦亡效果的影响。
评估CANA对FGF21及其下游ERK1/2/AMPK/mTOR信号通路的影响
检测肝脏和细胞中FGF21、FGFR1、KLB的表达以及ERK1/2、AMPK、mTOR的磷酸化水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | SERANA | S-FBS-EU-015 | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 地塞米松 | Sigma-Aldrich | D4902 | |
| 胰岛素-转铁蛋白-硒 | Sigma-Aldrich | I3146 | |
| 卡格列净 | -- | -- | |
| 游离脂肪酸(棕榈酸:油酸1:2) | -- | -- | |
| 脂多糖 | -- | -- | |
| 尼日利亚菌素 | -- | -- | |
| PD166866 | -- | -- | |
| PD98059 | -- | -- | |
| MCC950 | -- | -- | |
| 化合物C | -- | -- | |
| 染色 | 尼罗红 | Solarbio | N8440 |
| DAPI | -- | -- | |
| Hoechst 33342 | -- | -- | |
| 碘化丙啶 | Beyotime Biotechnology | C1056 | |
| 组织学 | Masson三色染色 | -- | -- |
| 油红O | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | D027-1-1 | |
| RNA提取和RT-qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| Evo M-MLV逆转录预混液 | Accurate Biotechnology | AG11706 | |
| SYBR Green预混液Pro | Accurate Biotechnology | AG11701 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Fude Biological Technology | FD2001 | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| ELISA | 小鼠FGF21 ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-M0029c |
| 小鼠胰岛素免疫检测试剂盒 | EZassay | MS300 | |
| 免疫组化 | NLRP3一抗 | AdipoGen | G-20B-0014 |
| 免疫荧光 | IL-1β一抗 | Cell Signaling Technology | 12507 |
| 透射电镜 | 醋酸铀 | -- | -- |
| 柠檬酸铅 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物实验 | CANA剂量(10 mg/kg/d口服灌胃)、持续时间(14周ob/ob,11周DM)、小鼠性别和年龄(6周龄雄性)、饲养条件(恒温25±2°C,湿度40-60%,12小时光暗周期)、分组和样本量(每组5-10只) 阅读提示:见方法部分“Experimental animals”和图1、图2图注 |
| 细胞培养 | AML12细胞培养条件(DMEM/F12+10% FBS+0.1 μM地塞米松+胰岛素-转铁蛋白-硒+1%青霉素-链霉素)、J774A.1培养条件(DMEM+10% FBS+100 IU/L青霉素-链霉素)、FFA处理浓度和时间(0.75 mM 24小时)、CANA处理浓度和时间(40 μM 24小时) 阅读提示:见方法部分“Cell culture and treatments” |
| 细胞焦亡诱导 | LPS浓度和时间(1 μg/mL 6小时)、尼日利亚菌素浓度和时间(10 μM 1小时)、CANA预处理时间和浓度(1小时,10 μM)、抑制剂浓度和预处理时间(PD166866 10 μM、PD98059 5 μM、MCC950 10 μM、compound C 10 μM预处理1小时) 阅读提示:见方法部分“Cell culture and treatments”和结果部分图7图注 |
| 基因和蛋白检测 | RT-qPCR引物序列(表1)、内参基因(β-actin)、Western blot抗体(表?,文中列出多家)、蛋白上样量(文中未明确) 阅读提示:见方法部分“Quantitative real-time PCR analyses”和“Western blotting” |
| 统计分析 | 统计方法(未配对t检验、单因素方差分析)、显著性阈值(p<0.05)、数据表示(mean±SD)、每组样本量 阅读提示:见方法部分“Statistical analyses” |