卡格列净通过FGF21-ERK1/2通路抑制NLRP3介导的细胞焦亡改善NAFLD的发展。

Canagliflozin ameliorates the development of NAFLD by preventing NLRP3-mediated pyroptosis through FGF21-ERK1/2 pathway.

作者信息Shaohan Huang, Beibei Wu, Yingzi He, Ruojun Qiu, Tian Yang, Shuo Wang, Yongzhen Lei, Hong Li, Fenping Zheng
PMID36757426
发布时间2023-02-09
DOI10.1097/HC9.0000000000000045

实验完整度

包含动物模型(ob/ob和糖尿病小鼠)和细胞模型(AML12和J774A.1),并进行功能验证(代谢表型、组织学、基因表达)和机制验证(信号通路、抑制剂干预)。

主要模型

ob/ob小鼠和糖尿病小鼠模型 FFA诱导的AML12肝细胞 LPS加尼日利亚菌素处理的J774A.1巨噬细胞

重点核对

CANA剂量:10 mg/kg/d口服灌胃,持续14周(ob/ob)或11周(DM) AML12细胞:0.75 mM FFA处理24小时,CANA 40 μM处理24小时 J774A.1细胞:LPS 1 μg/mL 6小时,尼日利亚菌素10 μM 1小时,CANA 10 μM预处理1小时 抑制剂:PD166866 (10 μM)、PD98059 (5 μM)、compound C (10 μM)预处理1小时 样本量:每组5-10只小鼠,细胞实验重复数未明确

摘要

最近的研究表明,钠-葡萄糖协同转运蛋白2抑制剂超越其降糖优势,改善NAFLD的发展。然而,对其潜在机制的研究很少。在此,我们深入探讨了卡格列净(CANA),一种钠-葡萄糖协同转运蛋白2抑制剂,对NAFLD进展的影响,并探讨了其分子机制。我们的研究结果显示,CANA治疗的ob/ob和糖尿病小鼠的葡萄糖和胰岛素耐受性得到改善,尽管与对照组相比,它们的体重相当甚至增加。CANA治疗改善了游离脂肪酸处理的AML12细胞的肝脂肪变性和脂质积累,伴随脂肪生成基因表达降低和脂肪酸β氧化相关基因表达增加。此外,CANA治疗的ob/ob和糖尿病小鼠肝脏中的炎症和纤维化基因减少。ob/ob和糖尿病小鼠肝脏中FGF21及其下游ERK1/2/AMPK信号降低,而NLRP3介导的细胞焦亡增加,CANA治疗逆转了这些变化。此外,阻断FGF21或ERK1/2活性拮抗了CANA对脂多糖加尼日利亚菌素处理的J774A.1细胞中NLRP3介导的细胞焦亡的作用。我们得出结论,CANA治疗改善了ob/ob和糖尿病小鼠的胰岛素抵抗和NAFLD的进展,与体重变化无关。CANA通过抑制NLRP3介导的细胞焦亡和增强肝脏中FGF21-ERK1/2通路活性来保护NAFLD的进展。这些发现表明钠-葡萄糖协同转运蛋白2抑制剂在治疗NAFLD中的治疗潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
卡格列净改善NAFLD进展的潜在分子机制是什么?
核心机制
CANA通过增强肝脏FGF21-ERK1/2通路活性,抑制NLRP3介导的细胞焦亡,从而改善胰岛素抵抗和NAFLD进展,独立于体重变化。
主要证据
在ob/ob和糖尿病小鼠模型中,CANA治疗改善代谢表型、减轻肝脂肪变性和纤维化;在AML12细胞中减少脂质积累;在J774A.1细胞中抑制NLRP3介导的焦亡,且FGF21或ERK1/2抑制剂阻断其效果。
研究意义
研究为SGLT-2i治疗NAFLD提供了理论依据和治疗潜力。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

动物模型建立与分组

建立NAFLD和糖尿病小鼠模型,评估CANA对代谢表型的影响

使用ob/ob小鼠和STZ诱导的糖尿病小鼠模型,随机分组,给予CANA或CMC-Na灌胃,记录体重、食物摄入等。

2

细胞模型建立与处理

在细胞水平验证CANA对脂质积累和焦亡的影响

AML12细胞用FFA诱导脂肪变性,CANA处理;J774A.1细胞用LPS和尼日利亚菌素诱导焦亡,CANA预处理。

3

组织学和功能检测

评估CANA对肝脏组织学变化和细胞脂质积累的影响

通过HE、油红O、Masson染色观察肝脏病理变化;Nile red染色检测细胞脂质;PI染色检测细胞死亡。

4

基因和蛋白表达分析

检测脂质代谢、炎症、纤维化和焦亡相关基因及蛋白表达

采用RT-qPCR和Western blot检测相关基因和蛋白;免疫组化检测NLRP3;免疫荧光检测IL-1β。

5

机制验证(抑制剂干预)

验证FGF21-ERK1/2通路在CANA作用中的因果作用

在J774A.1细胞中使用FGFR1抑制剂PD166866、ERK1/2抑制剂PD98059、AMPK抑制剂Compound C预处理,观察对CANA抑制焦亡效果的影响。

6

体内外信号通路检测

评估CANA对FGF21及其下游ERK1/2/AMPK/mTOR信号通路的影响

检测肝脏和细胞中FGF21、FGFR1、KLB的表达以及ERK1/2、AMPK、mTOR的磷酸化水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM/F12培养基Gibco--
胎牛血清SERANAS-FBS-EU-015
青霉素-链霉素----
地塞米松Sigma-AldrichD4902
胰岛素-转铁蛋白-硒Sigma-AldrichI3146
卡格列净----
游离脂肪酸(棕榈酸:油酸1:2)----
脂多糖----
尼日利亚菌素----
PD166866----
PD98059----
MCC950----
化合物C----
尼罗红SolarbioN8440
DAPI----
Hoechst 33342----
碘化丙啶Beyotime BiotechnologyC1056
Masson三色染色----
油红ONanjing Jiancheng Bioengineering InstituteD027-1-1
TRIzol试剂Invitrogen--
Evo M-MLV逆转录预混液Accurate BiotechnologyAG11706
SYBR Green预混液ProAccurate BiotechnologyAG11701
RIPA裂解液----
BCA蛋白定量试剂盒Fude Biological TechnologyFD2001
PVDF膜----
抗体Cell Signaling Technology--
小鼠FGF21 ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-M0029c
小鼠胰岛素免疫检测试剂盒EZassayMS300
NLRP3一抗AdipoGenG-20B-0014
IL-1β一抗Cell Signaling Technology12507
醋酸铀----
柠檬酸铅----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物实验
CANA剂量(10 mg/kg/d口服灌胃)、持续时间(14周ob/ob,11周DM)、小鼠性别和年龄(6周龄雄性)、饲养条件(恒温25±2°C,湿度40-60%,12小时光暗周期)、分组和样本量(每组5-10只)
阅读提示:见方法部分“Experimental animals”和图1、图2图注
细胞培养
AML12细胞培养条件(DMEM/F12+10% FBS+0.1 μM地塞米松+胰岛素-转铁蛋白-硒+1%青霉素-链霉素)、J774A.1培养条件(DMEM+10% FBS+100 IU/L青霉素-链霉素)、FFA处理浓度和时间(0.75 mM 24小时)、CANA处理浓度和时间(40 μM 24小时)
阅读提示:见方法部分“Cell culture and treatments”
细胞焦亡诱导
LPS浓度和时间(1 μg/mL 6小时)、尼日利亚菌素浓度和时间(10 μM 1小时)、CANA预处理时间和浓度(1小时,10 μM)、抑制剂浓度和预处理时间(PD166866 10 μM、PD98059 5 μM、MCC950 10 μM、compound C 10 μM预处理1小时)
阅读提示:见方法部分“Cell culture and treatments”和结果部分图7图注
基因和蛋白检测
RT-qPCR引物序列(表1)、内参基因(β-actin)、Western blot抗体(表?,文中列出多家)、蛋白上样量(文中未明确)
阅读提示:见方法部分“Quantitative real-time PCR analyses”和“Western blotting”
统计分析
统计方法(未配对t检验、单因素方差分析)、显著性阈值(p<0.05)、数据表示(mean±SD)、每组样本量
阅读提示:见方法部分“Statistical analyses”