ALK7中和抗体的体外活性验证
验证抗体特异性结合ALK7并阻断其信号。
在HEK293T细胞中转染ALK4、ALK5或ALK7,检测抗体结合及信号通路。
Targeting activin receptor-like kinase 7 ameliorates adiposity and associated metabolic disorders.
包含体外细胞结合实验、离体组织培养、遗传性及饮食诱导肥胖小鼠模型、代谢笼、组织学及分子检测等多个独立证据层级,并进行功能与机制验证。
TSOD小鼠(遗传性肥胖糖尿病模型) T.B-Nidd5/3小鼠(ALK7缺陷对照) HFD喂养的ddY小鼠(饮食诱导肥胖模型)
ALK7中和抗体剂量(3、10、15 mg/kg)及给药方式(皮下注射,每周两次) 处理周期(6周、15周、18周)及起始周龄(TSOD 5周龄,ddY 7-9周龄) HFD喂养起始时间(4周龄)及HFD组成(55%脂肪) CT检测脂肪量的时间点(处理第3周和第6周等) ALTK7抗体特异性(结合ALK7但不结合ALK4/ALK5,并检测Smad3磷酸化)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证抗体特异性结合ALK7并阻断其信号。
在HEK293T细胞中转染ALK4、ALK5或ALK7,检测抗体结合及信号通路。
评估ALK7抗体对TSOD小鼠脂肪量和代谢指标的影响。
TSOD小鼠和T.B-Nidd5/3小鼠(ALK7缺陷)从5周龄起接受抗体或PBS处理,检测脂肪量、脂肪垫重量、血清瘦素、ATGL表达及血清NEFA和甘油。
评估ALK7抗体对HFD喂养的ddY小鼠的疗效。
ddY小鼠从4周龄开始喂养HFD,当体重达45g(约7-9周龄)时开始抗体治疗,检测脂肪量、脂肪垫重量、血清瘦素、ATGL表达等。
评估ALK7抗体对全身能量代谢的影响。
代谢笼检测耗氧量、CO2产生、呼吸交换率、产热和活动量;高胰岛素-正葡萄糖钳夹评估胰岛素敏感性;葡萄糖耐量试验。
评估抗体治疗对肝脏脂肪堆积和炎症的影响。
H&E、Sirius Red和F4/80免疫组化染色肝脏;测量肝脏甘油三酯、血清GOT和GPT。
阐明ALK7阻断对GDF3产生的负反馈机制。
分离CD11c- ATM和附睾脂肪外植体,用重组IL-1β、S100A8/A9、GDF3及抑制剂处理,检测GDF3、S100A8/A9、NLRP3、IL-1β等表达。
评估抗体治疗对肌肉脂肪酸氧化的影响。
分离比目鱼肌,匀浆后用14C-棕榈酸孵育,检测14CO2产量。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | CE-2标准饲料 | CLEA Japan | -- |
| 高脂饲料 | Oriental Yeast Co., Ltd. | -- | |
| CT成像 | Latheta LCT-200小动物CT | Hitachi | -- |
| 葡萄糖钳夹 | 胰岛素 | -- | -- |
| 胰岛素分泌检测 | AlphaLISA胰岛素检测试剂盒 | PerkinElmer | -- |
| 代谢监测 | Oxymax代谢监测系统 | Columbus Instruments | -- |
| 血清细胞因子检测 | 小鼠瘦素ELISA试剂盒 | BioVender | -- |
| 血清生化检测 | NEFA C-检测试剂盒 | Wako | -- |
| 游离甘油检测试剂盒 | BioVision | -- | |
| GOT/GPT检测试剂盒 | Wako | -- | |
| 细胞毒性检测 | 细胞毒性检测试剂盒(LDH) | Roche | -- |
| 免疫印迹 | 抗小鼠IgG2a Fc-γ特异性抗体 | Cell Signaling Technology | 33416 |
| 抗ATGL抗体 | Cell Signaling Technology | 2439S | |
| 抗Smad3抗体 | Cell Signaling Technology | 9523 | |
| 抗磷酸化Smad3抗体 | Cell Signaling Technology | 9520 | |
| 抗UCP-1抗体 | Cell Signaling Technology | 14670S | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | MilliporeSigma | A5316 | |
| 抗GAPDH抗体 | MBL | M171-3 | |
| 抗HA标签抗体 | MBL | 561 | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂盒 | Invitrogen | -- |
| Opti-MEM培养基 | Gibco | -- | |
| RNA提取 | Sepasol-RNA I Super试剂 | Nacalai Tesque | -- |
| 逆转录 | Superscript III逆转录酶 | Invitrogen | -- |
| 实时PCR | TB Green预混液Ex Taq | Takara Bio | -- |
| C1000热循环仪 | Bio-Rad | -- | |
| 组织学 | 天狼星红 | Wako | 196-16201 |
| 免疫组化 | F4/80抗体 | Abcam | ab111101 |
| HRP聚合物偶联山羊抗兔IgG抗体 | Abcam | ab214880 | |
| DAB显色液 | Dako | -- | |
| 组织学成像 | DP2-BSW软件 | Olympus | -- |
| 脂肪酸氧化检测 | 14C标记棕榈酸 | PerkinElmer | -- |
| 离体细胞培养 | 重组小鼠IL-1β | Biolegend | -- |
| S100A8蛋白 | Biolegend | -- | |
| S100A8/A9异二聚体 | Biolegend | -- | |
| 脂多糖 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 机制研究 | 渥曼青霉素 | Sigma-Aldrich | -- |
| MCC950 | Selleckchem | -- | |
| 帕喹莫德 | Sigma-Aldrich | -- | |
| FPS-ZM1 | Calbiochem | -- | |
| ELISA | 小鼠GDF3 ELISA试剂盒 | Elabscience | -- |
| 小鼠S100A8/S100A9异二聚体ELISA试剂盒 | R&D Systems | -- | |
| 离体组织培养 | 重组人GDF3 | R&D Systems | -- |
| 统计 | GraphPad Prism软件 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 抗体给药 | ALK7 mAb剂量(10 mg/kg)、给药途径(皮下注射)、频率(每周两次)及处理周期(6周、15周、18周) 阅读提示:Methods: Animal procedures; Figure 1 and 2 legends |
| 肥胖模型建立 | TSOD品系背景;ddY小鼠HFD喂养起始年龄(4周龄)、HFD配方(55%脂肪)及体重标准(45g) 阅读提示:Methods: Animal procedures; Figure 2 legend |
| 脂肪量测量 | CT扫描仪器(Latheta LCT-200)及测量时间点(处理第3、6周等) 阅读提示:Methods: Animal procedures; Figure 1 and 2 legends |
| 葡萄糖耐量试验 | 禁食时间(14小时)、葡萄糖剂量(1g/kg)、测量时间点(治疗第5周或14周) 阅读提示:Methods: Animal procedures; Figure 3 legend |
| 高胰岛素-正葡萄糖钳夹 | 胰岛素输注速率(10 mU/kg/min)、目标血糖水平(约100 mg/dL)、处理时间(17-18周) 阅读提示:Methods: Animal procedures; Figure 3 legend |
| 脂肪酸氧化检测 | 肌肉类型(比目鱼肌)、14C-棕榈酸浓度(0.2μCi/mL)、孵育时间(2小时) 阅读提示:Methods: Measurement of FAO capacity in muscle |
| 离体ATM培养 | ATM分离方法(FACS从SVF中分选CD11c-)、培养条件(无血清DMEM)、IL-1β浓度(10 ng/mL)、S100A8/A9浓度(10 μg/mL)、抑制剂浓度(wortmannin 100 nM, MCC950 10 μM) 阅读提示:Methods: Ex vivo ATM and epiWAT, and primary adipocyte culture; Figure 7 and 8 legends |
| 离体附睾脂肪培养 | 组织量(0.5g)、培养基(DMEM+20%FBS)、rhGDF3浓度(400 ng/mL)、培养时间(24小时)、抑制剂浓度(paquinimod 900 μg/mL、FPS-ZM1 30 μg/mL、wortmannin 100 nM、ALK7 mAb 100或300 nM) 阅读提示:Methods: Ex vivo ATM and epiWAT, and primary adipocyte culture; Figure 8 legend |