细胞培养和条件培养基收集
获得ccRCC细胞和正常肾细胞分泌的蛋白质和代谢物。
培养5种ccRCC细胞系(Caki-1、786-O、A498、KIJ265T、KIJ308T)和正常肾细胞系RPTEC/TERT1,收集条件培养基。
Coordinated reprogramming of renal cancer transcriptome, metabolome and secretome associates with immune tumor infiltration.
体外细胞模型与临床组织样本相结合,包含蛋白质组、代谢组、转录组及ELISA、qPCR等验证,并通过TCGA等多数据集分析免疫浸润。
ccRCC细胞系(Caki-1、786-O、A498、KIJ265T、KIJ308T) 正常肾细胞系RPTEC/TERT1 ccRCC肿瘤组织样本(n=92对)
5种ccRCC细胞系与正常肾细胞系RPTEC/TERT1的对比 条件培养基收集时,细胞接种密度、洗涤和孵育时间 ELISA验证所用抗体和试剂盒 qPCR验证基因表达的内参基因(18S rRNA) 统计检验方法(单因素方差分析、Wilcoxon检验等)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得ccRCC细胞和正常肾细胞分泌的蛋白质和代谢物。
培养5种ccRCC细胞系(Caki-1、786-O、A498、KIJ265T、KIJ308T)和正常肾细胞系RPTEC/TERT1,收集条件培养基。
鉴定ccRCC分泌组中改变的蛋白质和代谢物。
对CM进行nanoHPLC-MS/MS蛋白质组分析和GC-MS代谢组分析,并通过ELISA和比色法验证关键分子。
分析ccRCC细胞基因表达变化,以解释分泌组改变。
对Caki-1和KIJ265T细胞进行微阵列分析,并用qPCR验证关键基因表达。
验证ccRCC肿瘤中基因和蛋白质表达的改变。
使用92对ccRCC肿瘤和匹配的正常肾组织样本进行qPCR分析,并使用UALCAN/CPTAC分析蛋白质表达。
评估分泌组基因表达与免疫细胞浸润的关系。
使用TIMER平台分析85个分泌组基因与免疫浸润的相关性,并在40种癌症类型中进行泛癌分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养和条件培养基收集 | 细胞系来源和培养条件;细胞接种密度(10^6细胞/75 cm²);洗涤和孵育时间(24小时) 阅读提示:Methods: Cell lines; Collection of Conditioned Media |
| 蛋白质组学分析 | 样品制备方法(滤膜、超滤管);质谱平台(nanoHPLC、Q Exactive);独立生物学重复数(3次) 阅读提示:Methods: Protein isolation from CM; Proteomic analysis |
| 代谢组学分析 | 代谢物提取方法;GC-MS条件;验证试剂盒(目录号) 阅读提示:Methods: Extraction of metabolites from CM; Metabolomics analysis; 验证部分 |
| 转录组分析 | RNA提取试剂盒;微阵列平台;qPCR内参(18S rRNA);差异表达阈值(fold change ≥2, FDR≤0.01) 阅读提示:Methods: RNA isolation; Microarray analysis; Reverse transcription and qPCR |
| 临床样本验证 | 样本来源和数量(92对);伦理批准号;qPCR条件 阅读提示:Methods: Reverse transcription and qPCR |
| 生物信息学分析 | 基因本体分析工具(ShinyGO);免疫浸润分析平台(TIMER);蛋白质表达分析(UALCAN/CPTAC);统计方法 阅读提示:Methods: Bioinformatic and statistical analysis |