建立CUMS抑郁模型并验证行为表型
验证CUMS处理是否成功诱导小鼠焦虑和抑郁样行为
将8周龄C57BL/6J小鼠随机分为对照组和CUMS组,CUMS组接受14天不可预测慢性轻度应激,对照组正常饲养。行为测试和体重在应激前后进行评估。
The antidepressant effect of nucleus accumbens deep brain stimulation is mediated by parvalbumin-positive interneurons in the dorsal dentate gyrus.
包含CUMS模型、行为学测试、LFP记录、化学遗传学、病毒示踪、免疫荧光等多层次实验,且同时进行功能验证与机制验证。
C57BL/6J小鼠CUMS抑郁模型 PV-Cre小鼠 VTA-DG GABA能投射介导的化学遗传学模型 CA1-NAc投射介导的化学遗传学模型
NAc-DBS刺激参数:130 Hz,100 μA,60 μs脉宽,每日1小时,持续7天 CUMS应激方案:14天,每天1次长时程应激(24小时)和2次短时程应激 PVI失活方式:AAV-CAG-DIO-eGFP-2A-TetTox或AAV-EF1A-DIO-hM4Di-eGFP注射至背侧DG CNO给药剂量:3 mg/kg,腹腔注射,或1 μg/μl,每侧1 μl,DG内注射 病毒注射时间:行为测试前3周 行为测试时间:CUMS后和DBS后
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证CUMS处理是否成功诱导小鼠焦虑和抑郁样行为
将8周龄C57BL/6J小鼠随机分为对照组和CUMS组,CUMS组接受14天不可预测慢性轻度应激,对照组正常饲养。行为测试和体重在应激前后进行评估。
测试NAc-DBS是否能够逆转CUMS诱导的抑郁样行为
CUMS前1周在小鼠右侧NAc核心植入刺激电极,应激2周后,DBS-on组接受7天电刺激(每天1小时,130 Hz,100 μA,60 μs脉宽),DBS-off组不刺激,对照组正常饲养。行为测试和生理指标在应激前、应激后和DBS后评估。
评估CUMS和NAc-DBS对背侧DG局部场电位振荡的影响
在CUMS小鼠及DBS治疗小鼠中,使用四极管记录背侧DG的局部场电位,在居家笼中每日记录5分钟,分析Theta、Beta、低伽马和高伽马频段的功率。
研究CUMS和NAc-DBS对DG神经发生及PVI的影响
通过免疫荧光染色检测Ki67和BrdU标记增殖和存活的新生细胞,以及PV阳性中间神经元数量。比较对照组、CUMS组、DBS-off和DBS-on组之间的差异。
验证PVI失活是否足以诱导抑郁样行为和减少神经发生
在PV-Cre小鼠背侧DG注射AAV-CAG-DIO-eGFP-2A-TetTox(或对照)以阻断PVI的GABA释放;或用AAV-EF1A-DIO-hM4Di-eGFP注射,并通过腹腔注射CNO抑制PVI活性。行为测试和神经发生检测在病毒注射3周后或CNO处理7天后进行。
测试抑制VTA-DG GABA能投射是否产生抗抑郁效应并增加PVI活性
在C57小鼠VTA注射AAV-GAD67-Cre和AAV-DIO-hM4Di-mCherry,并在双侧DG植入套管。3周后,通过套管向DG注射CNO或生理盐水,连续7天。进行行为测试,并通过免疫荧光检测PVI和c-fos共表达。
验证CA1-NAc投射对NAc-DBS疗效的必要性
在C57小鼠右侧NAc注射Retro-hSyn-tdTomato-P2A-iCre-WPRE-pA,在双侧CA1注射AAV-EF1A-DIO-hM4Di-eGFP。植入电极并接受CUMS和DBS治疗,在DBS前30分钟腹腔注射CNO或生理盐水。行为测试和神经发生检测在DBS后评估。
验证激活CA1-NAc投射是否能增加背侧DG的PVI活性
在C57小鼠右侧NAc注射Retro-hSyn-tdTomato-P2A-iCre-WPRE-pA,在双侧CA1注射AAV-EF1A-DIO-hM3Dq-eGFP。3周后,腹腔注射CNO或生理盐水1周。通过免疫荧光检测脑片中c-fos和PVI共表达的细胞数量。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | C57BL/6J小鼠 | -- | -- |
| CUMS建模 | 玉米芯垫料 | -- | -- |
| DBS | 双极钨电极 | A-M System | 795500 |
| AFG1022任意函数发生器 | Tektronix | -- | |
| ISO-flex刺激隔离器 | A.M.P.I. | -- | |
| 立体定位注射 | 立体定位仪 | RWD Life Science | 68025 |
| AAV-CAG-DIO-eGFP-2A-TetTox-pA | Taitool Bioscience | S0235-9 | |
| AAV-EF1a-DIO-hM4Di-eGFP | Obio Technology | HYMBH15963 | |
| AAV-EF1a-DIO-eGFP | Obio Technology | H3303 | |
| Retro-hSyn-tdTomato-P2A-iCre-WPRE-pA | Taitool Bioscience | S0509-2R | |
| AAV-GAD67-eGFP-2A-Cre-WPRE | Obio Technology | HYMBH10062 | |
| AAV-EF1a-DIO-hM3Dq-mCherry | Vigene Bioscience | -- | |
| AAV-EF1a-DIO-hM4Di-mCherry | Vigene Bioscience | -- | |
| 药物处理 | 氯氮平-N-氧化物 | MCE | -- |
| 行为学测试 | 不透明方形旷场 | -- | -- |
| 自动视频跟踪系统 | Xinruan Information Technology Co. Ltd. | -- | |
| 蔗糖 | -- | -- | |
| 激素检测 | 小鼠皮质酮ELISA试剂盒 | Elabscience | -- |
| 酶标仪 | TECAN | -- | |
| 电生理记录 | Formvar涂层铂铱探针 | California Fine Wire | -- |
| 微型驱动器 | Precision Fiber Products | -- | |
| OmniPlex D神经数据采集系统 | Plexon Inc. | -- | |
| 免疫荧光 | 小鼠抗PV抗体 | Abclonal | A2791 |
| 兔抗Ki67抗体 | Abcam | ab15580 | |
| 大鼠抗BrdU抗体(FITC偶联) | Abcam | ab74545 | |
| 兔抗c-fos抗体 | Abcam | ab214672 | |
| 小鼠抗NeuN抗体 | Abcam | ab104224 | |
| 山羊抗兔IgG | Abcam | ab150077 | |
| 山羊抗大鼠IgG | Abcam | ab150157 | |
| 山羊抗大鼠IgG | Abcam | ab150160 | |
| 山羊抗小鼠IgG | Abcam | ab150113 | |
| 山羊抗小鼠IgG | Abcam | ab150116 | |
| 含DAPI封片剂 | -- | -- | |
| 奥林巴斯Fluoview FV1000共聚焦显微镜 | Olympus | -- | |
| 奥林巴斯VS120玻片扫描系统 | Olympus | -- | |
| 病毒注射 | 玻璃移液管 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系、性别、年龄、饲养条件和CUMS应激方案 阅读提示:参见Materials and methods中的Mice和CUMS部分 |
| DBS手术与刺激参数 | 电极植入位置、刺激频率、电流强度、脉宽、每日刺激时长和天数 阅读提示:参见DBS部分和图1A-B |
| 病毒注射与化学遗传学操作 | 病毒类型、滴度、注射体积、注射位点、CNO剂量和给药途径 阅读提示:参见Stereotaxic viral injection及实验设计2-4部分 |
| 行为学测试 | 测试环境、光照周期、测试时间、测试时长和具体参数 阅读提示:参见Behavioral analysis及OFT、TST、SPT部分 |
| LFP记录 | 电极类型、植入坐标、记录系统、采样参数和记录条件 阅读提示:参见Local field potential recordings部分 |
| 免疫荧光 | 脑片厚度、抗体稀释比例、孵育时间和图像采集参数 阅读提示:参见Immunofluorescence部分 |