miR-486-5p通过靶向TGF-β/SMAD2通路抑制人小梁网细胞中细胞外基质的产生和氧化损伤

miR-486-5p Restrains Extracellular Matrix Production and Oxidative Damage in Human Trabecular Meshwork Cells by Targeting TGF-β/SMAD2 Pathway.

作者信息Le Xu, Yiming Zhang, Hua Long, Bo Zhou, Haibo Jiang
PMID35251709
发布时间2022-02-23
DOI10.1155/2022/3584192

实验完整度

研究包含体外细胞模型、功能实验(凋亡、氧化应激、ECM)和机制验证(靶标预测、荧光素酶报告、回复实验),但缺乏动物模型及患者样本验证。

主要模型

人小梁网细胞(TMCs) HEK293T细胞(用于荧光素酶报告实验)

重点核对

人小梁网细胞(TMCs)的来源和培养条件(ScienCell,#6590,DMEM+10%FBS,3-5代) H2O2处理浓度(300 μM)和时间(12小时) miR-486-5p mimics浓度(50 nM)和转染试剂(Lipofectamine 2000) SMAD2敲低和过表达载体(sh-SMAD2和pcDNA3.1/SMAD2)的验证 凋亡检测采用Annexin V-FITC/PI染色,ECM和蛋白检测采用Western blot和免疫荧光

摘要

背景:青光眼的特点是由于房水流出功能障碍而导致的眼压升高。小梁网通过调节房水流出在控制眼压中起关键作用。本研究探讨了miR-486-5p在H2O2刺激的人小梁网细胞(TMCs)中的保护作用。方法:用300 μM H2O2处理TMCs建立体外氧化损伤模型。将miR-486-5p模拟物及其对照转染TMCs,通过流式细胞术、western blotting和免疫荧光染色检测细胞凋亡和细胞外基质(ECM)基因。还检测了超氧化物歧化酶(SOD)和丙二醛(MDA)的活性。使用在线工具和荧光素酶报告基因实验揭示miR-486-5p与TGF-β/SMAD2通路的关系。结果:我们发现H2O2诱导TMCs氧化损伤,并且miR-486-5p在H2O2刺激的TMCs中下调。过表达miR-486-5p通过抑制凋亡、降低cleaved caspase-3/9表达、降低MDA水平、升高SOD水平以及下调ECM基因来减轻H2O2诱导的氧化损伤。SMAD2被证明是miR-486-5p的靶标,miR-486-5p在H2O2刺激的TMCs中抑制TGF-β/SMAD2信号传导。此外,H2O2上调SMAD2,SMAD2上调消除了miR-486-5p对H2O2损伤的保护作用。结论:miR-486-5p通过靶向TGF-β/SMAD2通路抑制H2O2诱导的TMCs氧化损伤。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
miR-486-5p在氧化应激诱导的人小梁网细胞损伤中是否发挥作用及其潜在机制。
核心机制
miR-486-5p通过靶向SMAD2 3'-UTR抑制TGF-β/SMAD2信号通路,从而减轻氧化应激诱导的凋亡和细胞外基质产生。
主要证据
在H2O2刺激的TMCs中,miR-486-5p过表达降低凋亡和ECM基因表达,且荧光素酶报告实验证实SMAD2为miR-486-5p的直接靶点;SMAD2过表达逆转了miR-486-5p的保护作用。
研究意义
提示miR-486-5p/SMAD2轴可能作为限制房水流出通路中氧化应激诱导的ECM积聚的调节机制,为青光眼治疗提供潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立氧化损伤模型

确定H2O2诱导TMCs氧化损伤的最佳浓度和时间。

用不同浓度H2O2(0-400 μM)处理TMCs 12小时,以及用300 μM H2O2处理0-24小时,通过MTT检测细胞活力。

2

miR-486-5p过表达及功能验证

验证miR-486-5p过表达对H2O2诱导的TMCs损伤的保护作用。

转染miR-486-5p mimics或NC mimics后,用300 μM H2O2处理12小时,检测凋亡、氧化应激指标和ECM表达。

3

靶基因预测与验证

预测并验证miR-486-5p的直接靶基因。

使用TargetScan、starBase、miRDB和TargetRank预测靶基因,通过RT-qPCR筛选候选基因,并通过双荧光素酶报告实验验证miR-486-5p与SMAD2 3'-UTR的结合。

4

SMAD2功能验证

验证SMAD2在H2O2诱导的TMCs损伤中的作用。

通过sh-SMAD2敲低SMAD2,然后检测凋亡、氧化应激指标和ECM表达。

5

回复实验

验证miR-486-5p通过靶向SMAD2发挥保护作用。

在H2O2处理的TMCs中,共转染miR-486-5p mimics和pcDNA3.1/SMAD2,检测SMAD2表达、凋亡、氧化应激和ECM表达是否恢复。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
人小梁网细胞ScienCell Research Laboratories#6590
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素Gibco--
硫酸链霉素Gibco--
非必需氨基酸Gibco--
两性霉素BGibco--
过氧化氢Gibco--
miR-486-5p模拟物RiboBio序列: UCCUGUACUGAGCUGCCCCGAG
阴性对照模拟物RiboBio序列: UAUCCGGCCUGCGCCGUUAGCA
SMAD2短发夹RNAGenePharma序列: GCAGAACTATCTCCTACTACTTTCAAGAGAAGTAGTAGGAGATAGTTCTGCTTTTTT
阴性对照短发夹RNAGenePharma序列: TTATCAACAAGGTCCTCCTACTTCAAGAGAGTAGGAGGACCTTGTTGATAATTTTTT
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen11668-027
pcDNA3.1质粒InvitrogenHG-VPI0001
Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒--70-AP101-100
TRIzol试剂Invitrogen--
mirPremier microRNA分离试剂盒Sigma-Aldrich--
M-MLV逆转录酶PromegaM1701
miRNA第一链cDNA合成试剂盒GeneCopoeiaQP114
FastStart Universal SYBR Green Master混合物Roche4913850001
RIPA裂解液ElabscienceE-BC-R327
PVDF膜----
一抗----
二抗----
ECL Advance化学发光试剂GE Healthcare--
Image Lab v6.0软件----
MTT溶液Sigma-Aldrich--
二甲基亚砜----
SpectraMax M2e酶标仪Molecular Devices--
FACScan流式细胞仪Becton–Dickinson--
FlowJo软件----
Triton X-100----
牛血清白蛋白----
Alexa Fluor 555标记的兔IgGAbcam--
DAPISigma-Aldrich--
共聚焦激光扫描显微镜Carl ZeissLSM710
SOD检测试剂盒--ab65354
MDA检测试剂盒--ab118970
pmirGLO-SMAD2野生型质粒----
pmirGLO-SMAD2突变体质粒----
双荧光素酶报告系统Promega--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
人小梁网细胞(TMCs)来源(ScienCell,#6590),培养条件(DMEM+10%FBS,37°C,5% CO2),细胞代数(3-5代)
阅读提示:Methods 2.1 Cell Culture
氧化损伤模型
H2O2浓度(300 μM)和处理时间(12小时),用于后续实验
阅读提示:Methods 2.1 Cell Culture 和 Results 3.1
细胞转染
miR-486-5p mimics(50 nM)、NC mimics(50 nM)、sh-SMAD2(50 nmol/L)、sh-NC(50 nmol/L)的浓度,转染试剂Lipofectamine 2000的使用方法,转染后处理时间(48小时)
阅读提示:Methods 2.2 Cell Transfection
凋亡检测
Annexin V-FITC/PI染色,细胞密度1×10^6 cells/mL,染色时间15分钟,使用FACScan流式细胞仪分析
阅读提示:Methods 2.7 Flow Cytometry
Western blotting
抗体信息:cleaved caspase-3(ab32042)、cleaved caspase-9(#20750S)、collagen I(ab138492)、fibronectin(ab268020)、laminin(ab108536)、SMAD2(ab40855)、TGF-β(ab215715)、β-actin(#4970S);蛋白上样量30 μg
阅读提示:Methods 2.5 Western Blotting