Corilagin在LPS诱导的鼠巨噬细胞系(RAW 264.7)中抑制氧化和炎症应激的潜力

Corilagin potential in inhibiting oxidative and inflammatory stress in LPS-induced murine macrophage cell lines (RAW 264.7).

作者信息Wahyu Widowati, Hanna Sari Widya Kusuma, Seila Arumwardana, Ervi Afifah, Cintani Dewi Wahyuni, Cahyaning Riski Wijayanti, Muhamad Aldi Maulana, Rizal Rizal
PMID35432805
发布时间2021-12
DOI10.22038/IJBMS.2021.59348.13174

实验完整度

包含体外细胞模型(RAW264.7)的抗氧化活性测定(H2O2、*OH、NO清除实验)和抗炎活性测定(ELISA检测炎症因子),但缺乏动物模型和机制验证(如信号通路)实验,实验层级单一。

主要模型

RAW264.7鼠巨噬细胞系

重点核对

RAW264.7细胞系(ATCC®TIB-71™)来源及培养条件 Corilagin处理浓度:75、50、25 µM LPS诱导浓度:1 μg/ml 处理时间:24小时 MTS法测定细胞活力以确定安全浓度

摘要

目的:炎症被认为是多种疾病的常见病理生理基础。Corilagin是主要活性化合物之一,显示出广谱的生物和治疗活性,如抗肿瘤、保肝、抗氧化和抗炎。本研究旨在评估corilagin在LPS诱导的RAW264.7细胞中的抗氧化和抗炎活性。材料与方法:通过清除H2O2、NO和*OH自由基来检测抗氧化活性。通过MTS[3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-5-(3-羧甲氧基苯基)-2-(4-磺苯基)-2H-四唑]法测定corilagin对RAW264.7的安全浓度。用LPS诱导炎症细胞模型。采用ELISA法检测IL-6、TNF-α、NO、IL-1β、PGE-2、iNOS和COX-2的水平来评估抗炎活性。结果:结果显示,corilagin对H2O2、*OH和NO的清除活性呈剂量依赖性显著抑制,IC50值分别为76.85 µg/ml、26.68 µg/ml和66.64 µg/ml。corilagin的抗炎活性也显示在最高浓度(75 µM)时,IL-6、TNF-α、NO、IL-1β、PGE-2、iNOS和COX-2的水平显著降低,与其他浓度(50和25 µM)相比,最高抑制活性分别为48.09%、42.37%、65.69%、26.47%、46.88%、56.22%、59.99%(P<0.05)。结论:Corilagin在LPS诱导的RAW 264.7细胞系中具有抗氧化和抗炎的潜力,通过清除NO、*OH和H2O2自由基,并抑制RAW 264.7鼠巨噬细胞系中促炎介质包括COX-2、IL-6、IL-1β和TNF-α的产生。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Corilagin在LPS诱导的RAW264.7巨噬细胞中是否具有抗氧化和抗炎活性?
核心机制
Corilagin通过清除H2O2、*OH和NO自由基发挥抗氧化作用,并通过抑制iNOS和COX-2的表达减少炎症介质如IL-6、TNF-α、IL-1β、PGE-2的产生,从而发挥抗炎作用。
主要证据
通过H2O2、*OH和NO清除实验显示corilagin的IC50值分别为76.85、26.68和66.64 µg/ml;ELISA结果显示corilagin(75 µM)显著降低LPS诱导的RAW264.7细胞中IL-6、TNF-α、NO、IL-1β、PGE-2、iNOS和COX-2的水平,抑制率分别为48.09%、42.37%、65.69%、26.47%、46.88%、56.22%和59.99%。
研究意义
该研究为corilagin作为天然化合物治疗炎症性疾病的进一步研究提供了基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

抗氧化活性测定

评估corilagin对H2O2、OH和NO自由基的清除能力。

分别进行H2O2清除实验、OH清除实验和NO清除实验,测定不同浓度corilagin的清除活性并计算IC50值。

2

细胞活力测定

确定corilagin对RAW264.7细胞的安全浓度,排除细胞毒性影响。

采用MTS法测定不同浓度corilagin处理RAW264.7细胞24小时后的细胞活力。

3

炎症模型建立及corilagin干预

建立LPS诱导的RAW264.7细胞炎症模型,并评估corilagin的干预效果。

RAW264.7细胞以5×10^5 cells/well接种6孔板,贴壁后用不同浓度corilagin预处理1-2小时,再加入LPS(1 μg/ml)刺激24小时,收集细胞上清液用于后续检测。

4

炎症因子水平检测

检测corilagin对LPS诱导的RAW264.7细胞中炎症因子IL-6、TNF-α、NO、IL-1β、PGE-2、iNOS和COX-2水平的影响。

使用ELISA试剂盒检测IL-1β、TNF-α、COX-2、IL-6、PGE-2和iNOS水平;使用NO比色法检测NO水平;使用BSA标准品和Quick Start Dye Reagent测定总蛋白含量以标准化数据。

5

统计分析

分析不同处理组间差异的显著性。

所有实验重复三次,数据以平均值±标准差表示,使用ANOVA和Tukey HSD事后检验进行组间比较,P<0.05被认为具有统计学意义。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基BiowestL0104
胎牛血清BiowestS1810
抗生素-抗真菌剂Gibco15240062
胰蛋白酶-EDTA 0.25%Gibco25200072
MTS试剂盒PromegaG3580
1,10-菲啰啉----
过氧化氢Merck822287
L-抗坏血酸Sigma-AldrichK3125
脱氧核糖Sigma-Aldrich121649
脂多糖Sigma-AldrichL2630
IL-1β ELISA试剂盒ElabScienceE-EL-M0037
TNF-α ELISA试剂盒ElabScienceE-EL-M0049
COX-2 ELISA试剂盒ElabScienceE-EL-M0959
IL-6 ELISA试剂盒ElabScienceE-EL-M0044
PGE-2 ELISA试剂盒ElabScienceE-EL-0034
iNOS ELISA试剂盒ElabScienceE-EL-M0696
NO比色法试剂盒ElabScienceE-BC-K035-M
牛血清白蛋白Sigma-AldrichA9576
Quick Start染料试剂1XBiorad5000205
酶标仪Thermo Fisher ScientificMultiskan GO

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
RAW264.7细胞系来源(ATCC®TIB-71™)及培养条件(DMEM+10%FBS+1%抗生素,37°C,5%CO2,湿度95-98%)
阅读提示:Materials and Methods - RAW264.7 cell culture
细胞活力测定
细胞密度(5×10^3 cells/well),corilagin浓度(100、75、50、25 µg/ml),处理时间(24小时),MTS孵育时间(4小时)
阅读提示:Materials and Methods - Viability assay,Results - Table 4
炎症模型建立及干预
细胞密度(5×10^5 cells/well),corilagin浓度(75、50、25 µM),LPS浓度(1 μg/ml),预处理时间(1-2小时),刺激时间(24小时)
阅读提示:Materials and Methods - Pro-inflammatory activation of RAW264.7 cell lines
炎症因子检测
ELISA试剂盒型号(IL-1β: E-EL-M0037等),NO比色法,总蛋白测定方法
阅读提示:Materials and Methods - Quantification of IL-1β, TNF-α, COX-2, IL-6, PGE-2, and iNOS levels,Quantification of NO level,Total protein assay
统计分析
重复次数(3次),统计方法(ANOVA,Tukey HSD),显著性水平(P<0.05)
阅读提示:Materials and Methods - Statistical analysis