LINC00473修饰的骨髓间充质干细胞结合温敏PLGA水凝胶移植治疗激素性股骨头坏死的机制研究与效果评估

LINC00473-modified bone marrow mesenchymal stem cells incorporated thermosensitive PLGA hydrogel transplantation for steroid-induced osteonecrosis of femoral head: A detailed mechanistic study and validity evaluation.

作者信息Yingxing Xu, Yaping Jiang, Yingzhen Wang, Bin Jia, Song Gao, Haiyang Yu, Haining Zhang, Chengyu Lv, Haiyan Li, Tao Li
PMID35600648
发布时间2021-12-08
DOI10.1002/btm2.10275

实验完整度

包括体外细胞分化与凋亡实验、双荧光素酶报告基因、RIP、RAP等机制验证,以及大鼠SONFH模型体内移植实验,证据层级完整。

主要模型

人骨髓间充质干细胞(hBMSCs) 大鼠骨髓间充质干细胞(rBMSCs) 激素性股骨头坏死大鼠模型

重点核对

hBMSCs和rBMSCs的分离、培养及第三代细胞的使用 LINC00473过表达和敲低慢病毒转染效率的验证(qRT-PCR和荧光显微镜) miR-23a-3p mimics转染效率的验证(qRT-PCR和Cy3荧光) Dex诱导hBMSCs凋亡的浓度(10^-6 mol/L) SONFH大鼠模型的建立(肌注20 mg/kg/day甲泼尼龙,3天/周,共3周)及实验分组

摘要

激素性股骨头坏死(SONFH)的发病机制涉及糖皮质激素诱导的成骨和成脂分化失衡以及骨髓间充质干细胞(BMSCs)的凋亡。越来越多的基因,特别是非编码RNA,已被证实参与BMSCs的功能调控。我们前期研究已确认LINC00473和miR-23a-3p在BMSCs的成骨、成脂分化及凋亡中的关键作用。然而,其潜在机制仍不清楚。基于生物信息学分析,本研究探讨了LINC00473对BMSCs成骨和成脂分化中LRP5/Wnt/β-catenin信号通路的影响,以及对地塞米松(Dex)诱导的BMSCs凋亡中PEBP1/Akt/Bad/Bcl-2信号通路的影响。我们的数据表明,LINC00473可通过激活miR-23a-3p/LRP5/Wnt/β-catenin信号通路轴促进BMSCs成骨分化并抑制其成脂分化,同时通过激活miR-23a-3p/PEBP1/Akt/Bad/Bcl-2信号通路轴挽救BMSCs免受Dex诱导的凋亡。值得注意的是,基于双荧光素酶报告实验、AGO2相关RNA免疫沉淀和RNA反义纯化实验,我们观察到LINC00473以Argonaute 2(AGO2)依赖的方式与miR-23a-3p相互作用。此外,将负载LINC00473修饰的大鼠来源BMSCs(rBMSCs)的可注射温敏聚乳酸-羟基乙酸共聚物(PLGA)水凝胶用于大鼠SONFH模型的治疗。结果表明,PLGA水凝胶为rBMSCs的存活提供了适宜的环境。此外,移植负载LINC00473修饰的rBMSCs的PLGA水凝胶可显著促进SONFH大鼠模型股骨头坏死区域的骨修复和重建。令人惊讶的是,与单独移植BMSCs相比,包裹在PLGA水凝胶中的移植rBMSCs能够从髓腔迁移至股骨头。总之,LINC00473促进成骨、抑制成脂,并拮抗Dex诱导的BMSCs凋亡。因此,LINC00473可为SONFH的治疗提供一种新策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
LINC00473如何通过miR-23a-3p调控BMSCs的成骨、成脂分化及凋亡,以及负载LINC00473修饰BMSCs的PLGA水凝胶移植对SONFH的治疗效果。
核心机制
LINC00473通过吸附miR-23a-3p,解除其对LRP5的抑制,激活Wnt/β-catenin信号通路促进成骨、抑制成脂;同时通过吸附miR-23a-3p,解除其对PEBP1的抑制,激活Akt/Bad/Bcl-2信号通路拮抗凋亡。
主要证据
体外实验:ALP染色/活性、油红O染色、TG含量、qRT-PCR、Western blot、CCK-8、流式细胞术、Hoechst 33342染色、双荧光素酶报告基因、AGO2-RIP、RAP等实验证实LINC00473通过miR-23a-3p调控上述信号通路。体内实验:SONFH大鼠模型移植PLGA水凝胶负载LINC00473修饰rBMSCs后,MRI、micro-CT、HE染色和IHC显示骨修复增强。
研究意义
本研究为SONFH的发病机制提供了新见解,并为探索保髋手术治疗SONFH提供了参考,可能为SONFH治疗提供一种新策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建LINC00473的ceRNA相互作用网络

基于ENCORI数据库预测LINC00473、miR-23a-3p及其靶基因的相互作用,提出研究假设。

使用ENCORI网站预测LINC00473与miR-23a-3p的结合位点,并预测miR-23a-3p的靶基因,构建ceRNA网络。

2

hBMSCs的分离、培养与鉴定

获取并验证实验所需的人骨髓间充质干细胞。

从骨髓组织分离hBMSCs,培养传代至第三代,通过形态学观察和流式细胞术检测表面标志物(CD34, CD44, CD45, CD73, CD90)进行鉴定。

3

验证LINC00473对hBMSCs成骨和成脂分化的影响

明确LINC00473对hBMSCs成骨和成脂分化的调控作用。

使用过表达和敲低LINC00473的慢病毒感染hBMSCs,通过ALP染色/活性、油红O染色、TG含量、qRT-PCR和Western blot检测成骨标志物(BSPII, OPN3, Runx-2)和成脂标志物(PPAR-γ, CEBP-α, FABP4)的表达。

4

验证Wnt/β-catenin信号通路在LINC00473调控分化中的作用

探讨LINC00473是否通过Wnt/β-catenin信号通路调控hBMSCs分化。

在成骨或成脂诱导条件下,加入DKK1(Wnt/β-catenin通路特异性抑制剂),检测LINC00473对通路关键分子(LRP5, β-catenin, TCF1)及分化标志物的影响。

5

验证miR-23a-3p在LINC00473信号通路中的作用

验证miR-23a-3p是否介导LINC00473对Wnt/β-catenin和凋亡信号通路的调控。

将miR-23a-3p mimics与LINC00473过表达慢病毒共转染至hBMSCs,通过双荧光素酶报告实验验证miR-23a-3p与PEBP1的直接结合,并检测上述信号通路及分化、凋亡指标的变化。此外,通过AGO2-RIP和RAP验证LINC00473与miR-23a-3p的AGO2依赖性相互作用。

6

评估LINC00473对rBMSCs功能的影响

验证LINC00473对rBMSCs的成骨、成脂分化、凋亡和迁移的影响,为体内实验做准备。

在rBMSCs中过表达LINC00473,通过ALP染色/活性、油红O染色、TG含量、CCK-8、Hoechst 33342染色、流式细胞术和划痕实验评估其功能。

7

评估PLGA水凝胶的生物相容性

验证PLGA水凝胶是否适宜作为rBMSCs的载体。

通过形态学观察、SEM观察、细胞增殖(结晶紫染色)、凋亡(流式细胞术)和迁移(划痕实验)评估PLGA水凝胶及其浸提液对rBMSCs的影响。

8

建立SONFH大鼠模型并进行移植治疗

在体内评估PLGA水凝胶负载LINC00473修饰的rBMSCs移植对SONFH的治疗效果。

通过肌注甲泼尼龙建立SONFH大鼠模型。将rBMSCs或负载rBMSCs的PLGA水凝胶(含LINC00473过表达或对照载体)移植至股骨髓腔,12周后通过MRI、micro-CT、HE染色和IHC评估治疗效果。

9

追踪移植rBMSCs在体内的分布

评估PLGA水凝胶对移植细胞命运和迁移的影响。

使用慢病毒标记rBMSCs表达荧光素酶,移植后1、3、7、15、30天通过免疫荧光染色观察细胞在股骨中的分布。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清----
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen--
miR-23a-3p模拟物RiboBio Corporation--
miR-23a-3p抑制剂RiboBio Corporation--
成骨和成脂分化培养基Fuyuanbio--
ALP染色试剂盒Solarbio--
ALP活性检测试剂盒Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute--
甘油三酯测定试剂盒Solarbio--
CCK-8检测试剂盒Solarbio--
Hoechst 33342试剂盒----
Annexin V-PE/7-AAD凋亡检测试剂盒----
GAPDH抗体Elabscience--
AGO2抗体Cell Signaling Technology--
双荧光素酶检测试剂盒Yeasen biology--
RIP试剂盒BersinBio--
RAP试剂盒Bersinbio--
甲泼尼龙Pfizer--
倒置相差显微镜 (Olympus CKX41)Olympus--
Apogee A50-MICRO流式细胞仪Apogee--
Skyra 3.0T磁共振成像系统Siemens--
μCT100显微CTSCANCO MEDICAL--
切片机 (Leica, Biocut)Leica--
全景扫描仪 (3DHISTECH P250 FLASH)3DHISTECH--
酶标仪Tecan--
SPSS 19.0软件IBM--
GraphPad Prism 8软件GraphPad--
Cytoscape V3.7.2软件NRNB--
ImageJ软件(版本1.52u)----
Sprague-Dawley (SD)大鼠Pengyue experimental animal breeding limited company--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
hBMSCs分离与鉴定
细胞分离方法、培养条件、传代代数(第三代)、表面标志物表达(CD44, CD73, CD90阳性;CD34, CD45阴性)及其阳性率。
阅读提示:Materials and Methods: 5.2, 5.3; Results 2.2
细胞转染
LINC00473过表达/敲低慢病毒、miR-23a-3p mimics/inhibitors的转染浓度、转染时间(72小时)、转染效率验证方法(qRT-PCR、荧光显微镜)。
阅读提示:Materials and Methods: 5.4; Results 2.3, 2.5
成骨/成脂分化
成骨/成脂诱导培养基(Fuyuanbio)培养条件、诱导时间、ALP染色/活性、油红O染色、TG含量检测方法。
阅读提示:Materials and Methods: 5.5-5.9; Results 2.3
凋亡实验
Dex浓度(10^-6 mol/L)处理时间、CCK-8检测时间点(1-7天)、Hoechst 33342染色、流式细胞术(Annexin V-PE/7-AAD)方法。
阅读提示:Materials and Methods: 5.10-5.12; Results 2.6
分子机制验证
双荧光素酶报告实验载体构建(GV272-LINC00473-WT/MUT, GV272-PEBP1-WT/MUT)、转染细胞数、转染后检测时间(48小时)、AGO2-RIP和RAP实验步骤及关键试剂。
阅读提示:Materials and Methods: 5.15-5.17; Results 2.6, 2.7
rBMSCs分离与功能实验
rBMSCs分离方法(双侧股骨和胫骨)、培养条件、第三代使用、划痕实验细胞密度(5×10^4 cells/well)和观察时间(0, 6, 12小时)。
阅读提示:Materials and Methods: 5.18, 5.19; Results 2.8
PLGA水凝胶制备与生物相容性
PLGA水凝胶溶解方法(PBS 1:5)、包封细胞密度(1×10^6 cells/ml)、浸提液制备条件(5% CO2, 37°C)、结晶紫染色、流式细胞术和划痕实验条件。
阅读提示:Materials and Methods: 5.20-5.22; Results 2.9
SONFH大鼠模型建立与分组
MPS注射剂量(20 mg/kg/day)、频率(3天/周)和时长(3周)、大鼠品系(SD)、周龄(8周)、体重(300-350g)、分组情况、移植细胞密度(1×10^6 cells/ml)、移植体积(0.2ml)及治疗时间(12周)。
阅读提示:Materials and Methods: 5.23; Results 2.10
体内影像学与组织学评估
MRI参数、micro-CT参数及分析指标(BV/TV, Tb.Th, Tb.N, Tb.Sp)、HE染色步骤、IHC及IF染色方法和切片厚度(5μm)。
阅读提示:Materials and Methods: 5.24-5.26; Results 2.10, 2.11
细胞追踪实验
荧光素酶慢病毒标记rBMSCs的效率、移植后观察时间点(1, 3, 7, 15, 30天)、IF染色方法。
阅读提示:Materials and Methods: 5.23, 5.26; Results 2.11