靶向线粒体的CORM-401纳米颗粒通过触发铜死亡抑制A549细胞

Mitochondria-targeted CORM-401 nanoparticles inhibit A549 cells by triggering cuproptosis.

作者信息Li Shao, Zhicheng Song, Xiaoli Gong, Jianjun Ma, Shujing Ge
PMID41917900
发布时间2026-03-31
DOI10.1186/s12896-026-01149-7

实验完整度

包含纳米颗粒表征、细胞摄取、体外细胞活力/ROS/铜死亡蛋白检测及体内异种移植瘤模型验证,多层级实验支持结论。

主要模型

A549细胞(人非小细胞肺癌细胞系) BALB/c裸鼠异种移植瘤模型

重点核对

纳米颗粒的合成与表征:CORM-TPP@HA的形成、粒径、稳定性及CO释放 A549细胞对纳米颗粒的摄取(6h和24h) 纳米颗粒处理A549细胞的剂量(5, 10, 20, 40 µg/mL)及作用时间(24h) 小鼠注射纳米颗粒的剂量(5, 10, 20 µg/g)及给药频率(每周两次,尾静脉注射)

摘要

目的:在本研究中,通过使用TPP和HA设计了含有CORM-401的线粒体靶向纳米颗粒(命名为CORM-TPP@HA)。观察这些纳米颗粒对A549细胞铜死亡的影响,以确认其功能。方法:首先,利用CORM-401和TPP-SH形成CORM-TPP胶束。然后,用HA包封胶束形成纳米颗粒(CORM-TPP@HA)。分析纳米颗粒的形态、尺寸分布、稳定性和CO释放,以确认其表征。同时,使用共聚焦显微镜观察纳米颗粒的细胞摄取。测量纳米颗粒对A549细胞活力、线粒体ROS、细胞内铜和铜死亡相关蛋白的影响。此外,在体内测量了纳米颗粒对肿瘤生长和肿瘤组织中铜死亡相关因子的影响。结果:设计的纳米颗粒保持稳定形成,有效防止CORM-401过早释放CO。此外,纳米颗粒能够被A549细胞摄取。而且,用设计的纳米颗粒处理通过增加A549细胞中的线粒体ROS、细胞内铜和铜死亡相关蛋白诱导铜死亡。与体外结果一致,纳米颗粒处理抑制了肿瘤生长并提高了肿瘤组织中的铜死亡相关蛋白。结论:合成的CORM-TPP@HA纳米颗粒通过调节线粒体铜死亡抑制A549细胞,为CO在非小细胞肺癌治疗中的信号机制提供了依据。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
线粒体靶向的CORM-401纳米颗粒(CORM-TPP@HA)是否通过诱导铜死亡抑制非小细胞肺癌A549细胞?
核心机制
纳米颗粒释放CO,增加线粒体ROS、细胞内铜和铜死亡相关蛋白(ATOX1、ATP7A、COX17)表达,从而诱导铜死亡。
主要证据
体外实验显示纳米颗粒降低A549细胞活力、升高线粒体ROS和铜水平,并上调铜死亡蛋白;体内异种移植瘤模型显示纳米颗粒抑制肿瘤生长并上调肿瘤组织中铜死亡蛋白。
研究意义
为该纳米颗粒作为非小细胞肺癌治疗策略提供实验依据,并揭示CO在NSCLC治疗中的信号机制。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

纳米颗粒合成与表征

构建并验证CORM-TPP@HA纳米颗粒的物理化学性质,包括形态、尺寸、稳定性和CO释放行为。

通过配体交换反应合成TPP-SH,再与CORM-401结合形成CORM-TPP胶束,并用HA包封形成CORM-TPP@HA纳米颗粒。使用TEM观察形态,DLS测量粒径和zeta电位,FTIR分析化学结构,并在PBS和血清中评估稳定性,测量H2O2存在下的CO释放。

2

细胞摄取实验

验证A549细胞能否摄取CORM-TPP@HA纳米颗粒。

将纳米颗粒标记Alexa Fluor 647,A549细胞标记PKH67,共培养6小时和24小时,通过共聚焦显微镜观察摄取情况并用荧光光谱分析摄取比例。

3

体外细胞活力检测

评估纳米颗粒对A549细胞活力的影响。

用不同浓度纳米颗粒处理A549细胞24小时,使用CCK-8试剂盒检测细胞活力。

4

线粒体ROS检测

评估纳米颗粒对A549细胞线粒体ROS水平的影响。

使用MitoSOX Red试剂盒染色,通过荧光显微镜观察并进行图像分析。

5

铜死亡相关蛋白表达检测

评估纳米颗粒对A549细胞中铜死亡相关蛋白(ATOX1, ATP7A, COX17)表达的影响。

提取细胞蛋白,通过Western blot检测蛋白表达,使用ImageJ分析灰度值。

6

细胞内铜水平检测

评估纳米颗粒对A549细胞内铜水平的影响。

使用CuprosGreen工作液染色,通过荧光显微镜观察并进行图像分析。

7

体内抗肿瘤效果评估

评估纳米颗粒对A549异种移植瘤生长的影响。

在BALB/c裸鼠皮下接种A549细胞建立移植瘤模型,当肿瘤体积达50 mm³时,随机分为四组,每周两次尾静脉注射PBS或不同剂量纳米颗粒,持续4周,测量肿瘤体积和体重,最后处死动物,取肿瘤称重并进行免疫组化检测Ki-67及铜死亡蛋白。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
三苯基膦羧酸----
CORM-401----
透明质酸----
EDC·HCl----
N-羟基琥珀酰亚胺----
半胱胺----
透射电子显微镜 (Tecnai G2 11)FEI--
电泳光散射分析仪 (ELSZ-2000ZS)Otsuka--
傅里叶变换红外光谱仪 (Nicolet iS50)Thermo Scientific--
TRIlyzer mBA-3000Taiyo--
Alexa Fluor 647Beyotime#P0180
PKH67Sigma#Mini67
Ham's F-12 K培养基----
CCK-8试剂盒Beyotime#C0038
MitoSOX Red试剂盒MedChemExpress#HY-D1055
RIPA裂解液----
ATOX1抗体Abcamab154179
ATP7A抗体AffinityDF8506
COX17抗体AffinityAF0626
β-actin抗体AffinityAF7018
抗兔IgGAffinity#S0001
Ki-67抗体AffinityAF0198
CuprosGreen工作液Dojindo#C557

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
纳米颗粒合成
TPP-SH合成条件:TPP-COOH、EDC·HCl、NHS、DIPEA和半胱胺的用量及反应时间;CORM-TPP形成时的等摩尔比及反应时间;HA包封浓度和孵育时间。
阅读提示:Materials and methods: Synthesis of CORM-TPP@HA
细胞培养与处理
A549细胞系来源(#CL-0016, Pricella),培养基(Ham's F-12 K+10%FBS+1%P/S),处理浓度(5, 10, 20, 40 µg/mL)和处理时间(24h)。
阅读提示:Materials and methods: Cell culture, Cell treatment, Figure legends (Fig. 3)
线粒体ROS检测
MitoSOX Red浓度(5 µM)和孵育时间(30分钟)。
阅读提示:Materials and methods: Mitochondrial reactive oxygen species (ROS)
细胞内铜检测
CuCl2浓度(200 µmol/L)和处理时间(15h),CuprosGreen浓度(5 µmol/L)和孵育时间(3h)。
阅读提示:Materials and methods: Intracellular copper detection
Western blot
抗体稀释比:ATOX1 (1:2000), ATP7A (1:2000), COX17 (1:1000), β-actin (1:10000);二抗稀释比 (1:10000)。
阅读提示:Materials and methods: Cuproptosis-related proteins, Table 1
动物实验
小鼠品系(BALB/c nude),周龄(4-6周),体重(12-18g),接种细胞数(5×10^5),分组及给药剂量(5, 10, 20 µg/g),给药频率(每周两次),给药途径(尾静脉注射),肿瘤体积测量方法,实验周期(4周)。
阅读提示:Materials and methods: Animals, Animal treatment, Sample collection, Figure legends (Fig. 5)
免疫组化
切片厚度(5 μm),抗原修复条件(Proteinase K 6分钟,3% H2O2 15分钟),抗体稀释比(见表1),二抗孵育时间(90分钟),DAB和苏木素染色时间(30秒)。
阅读提示:Materials and methods: Immunohistochemistry, Table 1
统计分析
统计软件(SPSS 20.0),正态性检验(Shapiro-Wilk),多组比较方法(单因素方差分析,事后Tukey检验),显著性水平(P<0.05)。
阅读提示:Materials and methods: Statistical analysis