体外高糖诱导MPC-5细胞损伤模型的建立及Cur浓度筛选
确定最佳高糖诱导浓度和Cur的安全处理浓度
用0-800 mM葡萄糖处理MPC-5细胞24小时,MTT法检测细胞活力;再用0-100 μM Cur处理细胞24小时,MTT法筛选无毒浓度。
Curcumol Ameliorates Diabetic Nephropathy by Inhibiting Podocyte Ferroptosis Through the xCT/GPX4 Pathway.
包含体外细胞模型、转录组学、Western blot、体内DKD小鼠模型及病理和肾功能检测,并通过激活剂/抑制剂进行功能验证。
MPC-5小鼠足细胞系 高脂饮食联合STZ诱导的DKD小鼠模型
MPC-5细胞高糖模型诱导浓度400 mM葡萄糖,处理24小时 Cur给药浓度12.5、25、50 μM 铁死亡激活剂RSL3浓度0.5 μmol/L 铁死亡抑制剂Fer-1浓度20 μmol/L DKD小鼠造模标准:血糖≥16.7 mmol/L且24h-UTP≥20 mg
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定最佳高糖诱导浓度和Cur的安全处理浓度
用0-800 mM葡萄糖处理MPC-5细胞24小时,MTT法检测细胞活力;再用0-100 μM Cur处理细胞24小时,MTT法筛选无毒浓度。
筛选高糖和Cur处理后的差异表达基因及富集通路
收集Control、HG和HG+H-Cur组细胞,提取RNA,进行转录组测序,鉴定DEGs并进行KEGG通路富集分析。
验证Cur对高糖诱导的铁死亡相关指标的影响
检测总铁含量、ROS、MDA、4-HNE水平及GSH/GSSG比值,并通过Western blot检测铁死亡相关蛋白表达。
验证Cur的抗铁死亡作用是否通过xCT/GPX4通路介导
将细胞分为Control、HG、HG+H-Cur、HG+Fer-1、HG+RSL3、HG+RSL3+Cur组,处理6小时后检测铁死亡相关指标和蛋白表达。
评估Cur在体内对DKD的治疗效果及对铁死亡的影响
C57BL/6小鼠高脂饮食8周后腹腔注射STZ,建立DKD模型,随机分为模型组、IRB组、L-Cur、M-Cur、H-Cur组,灌胃给药8周,检测肾功能、病理染色及铁死亡相关指标。
验证Cur在体内抑制铁死亡及调控xCT/GPX4通路
检测肾组织总铁、ROS、MDA、4-HNE水平及GSH/GSSG比值,并通过Western blot检测肾组织SLC3A2、SLC7A11、GPX4、TRF、NCOA4、ACSL4蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外细胞实验 | MPC-5细胞培养条件:DMEM+10% FBS+1% P/S,37°C,5% CO2;高糖模型:400 mM葡萄糖处理24小时;Cur浓度:12.5/25/50 μM;铁死亡激活剂RSL3浓度0.5 μmol/L,抑制剂Fer-1浓度20 μmol/L,处理6小时。 阅读提示:见2.1节和2.2节 |
| 转录组分析 | RNA提取质量、测序平台(Illumina)、DEG筛选标准(|Log2FC|≥1,padj≤0.05),每组3个生物学重复。 阅读提示:见2.3节 |
| 体内动物实验 | C57BL/6雄性小鼠6-7周龄;高脂饮食8周+STZ 30 mg/kg腹腔注射;模型成功标准:血糖≥16.7 mmol/L且24h-UTP≥20 mg;分组:对照、DKD、IRB(0.2 g/kg/d)、L-Cur(15 mg/kg/d)、M-Cur(30 mg/kg/d)、H-Cur(60 mg/kg/d);给药方式:灌胃,持续8周。 阅读提示:见2.3节 |
| 病理和肾功能检测 | 血清Cr、BUN、24h-UTP检测;肾组织HE、PAS、普鲁士蓝染色;样本量每组10只。 阅读提示:见2.3.2和2.3.3节及图6 |
| 铁死亡指标检测 | 肾组织或细胞总铁、ROS、MDA、4-HNE、GSH/GSSG检测;Western blot检测SLC3A2、SLC7A11、GPX4、TRF、NCOA4、ACSL4蛋白;内参β-ACTIN。 阅读提示:见2.4-2.6节及图3、5、7 |