样品制备
制备L. plantarum FS4722的发酵上清液、热灭活菌悬液和细胞裂解物,用于后续抗炎活性评估。
将L. plantarum FS4722培养至9 log CFU/mL,离心收集上清液并过滤得到发酵上清液;在80°C水浴灭活30分钟得到热灭活菌悬液;超声破碎菌体并离心收集上清液得到细胞裂解物。
Anti-Inflammatory Effects of Lactiplantibacillus plantarum Strain FS4722 Through MAPK and NF-κB Signaling Pathways and Its Lyophilization Optimization.
体外细胞模型验证抗炎功能,包含功能实验、机制验证(RT-qPCR、Western blot)以及冻干工艺优化与稳定性评估,多个证据层级。
LPS刺激的RAW 264.7小鼠巨噬细胞
LPS刺激浓度:1 μg/mL 样品处理浓度:FS4722-Fs为20% (v/v),FS4722-Dbs和FS4722-Bl为9 log CFU/mL 预处理时间:2 h,刺激时间:24 h 冻干保护剂配方:10.00%海藻糖、1.00% CMC-Na、5.00%脱脂乳 储存条件:4°C,28天
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
制备L. plantarum FS4722的发酵上清液、热灭活菌悬液和细胞裂解物,用于后续抗炎活性评估。
将L. plantarum FS4722培养至9 log CFU/mL,离心收集上清液并过滤得到发酵上清液;在80°C水浴灭活30分钟得到热灭活菌悬液;超声破碎菌体并离心收集上清液得到细胞裂解物。
评估三种样品对RAW 264.7细胞的细胞毒性以及抑制LPS诱导的NO产生的能力。
使用MTT法检测细胞活力,使用Griess试剂法检测NO产生。
评估三种样品对LPS诱导的炎症细胞因子转录和蛋白表达的影响。
使用RT-qPCR检测iNOS、COX-2、TNF-α、IL-6、IL-1β、IL-10的mRNA表达;使用ELISA检测PGE2、TNF-α、IL-6、IL-10的蛋白水平。
探究FS4722抑制炎症反应的分子机制,验证对MAPK和MyD88/NF-κB信号通路的调控。
利用RT-qPCR检测MAPK和NF-κB通路相关基因的表达,利用Western blot检测相关蛋白的磷酸化水平。
筛选单一冻干保护剂对L. plantarum FS4722冻干存活率的影响。
分别测试不同浓度的羧甲基纤维素钠、乙酸钠、甘油、海藻糖、脱脂乳粉和蔗糖对冻干存活率的影响。
通过响应面法优化复合保护剂配方,以最大化冻干存活率。
使用Design-Expert软件进行Box-Behnken设计,考察脱脂乳粉、海藻糖和羧甲基纤维素钠的交互作用。
评估冻干保护剂对L. plantarum FS4722细胞形态完整性的保护作用。
使用扫描电子显微镜观察冻干粉末的表面微观结构。
评估优化后的冻干保护剂在4°C储存条件下对菌株活力的保护效果。
将冻干粉末在4°C储存28天,每7天取样并进行平板计数测定活菌数。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细菌培养 | MRS肉汤 | BD Biosciences | -- |
| 样品制备 | Milli-Q超纯水净化系统 | Millipore | -- |
| 0.22 μm PVDF膜 | Millipore | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素溶液 | Gibco | -- | |
| 0.25%胰蛋白酶-EDTA溶液 | Gibco | -- | |
| 细胞活力检测 | MTT试剂 | Sigma-Aldrich | -- |
| NO检测 | 脂多糖 | Sigma-Aldrich | -- |
| Griess试剂 | Beyotime | -- | |
| ELISA | PGE2 ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- |
| 小鼠IL-6 ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| 小鼠TNF-α ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| 小鼠IL-10 ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| SensiFAST cDNA合成试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| SensiFAST SYBR No-ROX试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| Western blot | DC蛋白测定试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 冻干 | 海藻糖 | -- | -- |
| 羧甲基纤维素钠 | -- | -- | |
| 脱脂乳粉 | -- | -- | |
| 甘油 | -- | -- | |
| 蔗糖 | -- | -- | |
| 乙酸钠 | -- | -- | |
| SEM | S4800场发射扫描电子显微镜 | Hitachi | -- |
| 储存稳定性 | WHIRL-PAK无菌取样袋 | Nasco | -- |
| 恒温培养箱(ICH110型) | Memmert | ICH110 | |
| 细胞培养 | 96孔板 | Corning | -- |
| 12孔板 | Corning | -- | |
| 6孔板 | Corning | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | RAW 264.7细胞系来源(武汉普诺赛),培养条件:DMEM高糖培养基+10% FBS+1%青霉素-链霉素,37°C,5% CO2 阅读提示:Materials and Methods: Section 2.3 |
| 样品制备 | L. plantarum FS4722培养条件(MRS肉汤,37°C,18h),发酵上清液制备(离心、过滤),热灭活条件(80°C,30min),细胞裂解液制备(超声破碎40kHz,15min) 阅读提示:Materials and Methods: Sections 2.1 and 2.2 |
| 细胞活力与NO检测 | MTT法测定细胞活力(2×10^5 cells/well,处理24h),NO产生测定(LPS刺激1 μg/mL,Griess试剂法) 阅读提示:Materials and Methods: Sections 2.4 and 2.5 |
| 炎症因子检测 | ELISA测定PGE2、IL-6、TNF-α、IL-10(细胞5×10^5 cells/well,处理2h,LPS刺激24h) 阅读提示:Materials and Methods: Section 2.6 |
| 信号通路验证 | RT-qPCR和Western blot检测MAPK和NF-κB通路相关基因和蛋白(细胞1×10^6 cells/well,处理2h,LPS刺激24h;蛋白上样20μg) 阅读提示:Materials and Methods: Section 2.8 |
| 冻干保护剂优化 | 单因素实验和响应面法优化保护剂配方,包括脱脂乳粉、海藻糖、CMC-Na浓度范围 阅读提示:Materials and Methods: Section 2.9; Figure 5; Tables S3-S5 |
| 储存稳定性 | 冻干粉末在4°C储存28天,定期取样平板计数 阅读提示:Materials and Methods: Section 2.11; Figure 7B |