丹参酮IIA预处理的间充质干细胞通过TREM2/PI3K/Akt通路减轻3×Tg-AD小鼠的神经炎症

Tanshinone IIA-pretreated mesenchymal stem cells alleviate neuroinflammation in 3×Tg-AD mice via the TREM2/PI3K/Akt pathway.

作者信息Jingjing Wu, Ying Ge, Li Zhang, Juan Huang, Nanqu Huang, Yong Luo
PMID41845487
发布时间2026-03-17
DOI10.1186/s13287-026-04954-1

实验完整度

包含体内3×Tg-AD模型行为学、PET-CT、电镜、免疫荧光等,体外LPS诱导BV2细胞模型及TREM2基因敲低验证,功能与机制验证完整。

主要模型

3×Tg-AD小鼠(6-7月龄) LPS诱导的BV2小胶质细胞炎症模型 TREM2敲低的BV2细胞系

重点核对

TIIA预处理浓度12 µM,处理时间48 h TIIA-MSC移植剂量5×10⁵ cells/只,静脉注射 BV2细胞LPS诱导浓度1 µg/mL,处理24 h TIIA-MSC与BV2共培养比例1:1,Transwell系统,共培养24 h TREM2敲低使用shTREM2-#3,MOI=10

摘要

神经炎症是神经退行性疾病的关键致病因素。间充质干细胞(MSC)移植作为调节神经炎症的潜在策略受到广泛关注。我们前期研究发现,与普通MSC相比,经丹参酮IIA(TIIA)预处理的MSC(简称TIIA-MSC)表现出更优的抗神经炎症活性,但其作用机制尚不清楚。为阐明其潜在机制,本研究整合体内外实验,在三重转基因阿尔茨海默病小鼠模型(3×Tg-AD小鼠)中评估了TIIA-MSC的治疗效果,并在脂多糖(LPS)诱导的BV2小胶质细胞炎症模型中探讨其作用机制。结果显示,TIIA-MSC能显著改善3×Tg-AD小鼠的认知功能,提高脑葡萄糖代谢水平,促进突触和线粒体结构的恢复,并有效减轻神经炎症反应。体外实验进一步验证了TIIA-MSC对小胶质细胞活化和促炎因子释放的优越抑制作用。机制研究表明,髓样细胞触发受体2(TREM2)是介导这一过程的关键分子。敲低TREM2表达显著削弱了TIIA-MSC的抗炎作用,表明TREM2在此过程中发挥核心作用。进一步分析揭示,通过激活TREM2下游的磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)/蛋白激酶B(Akt)信号通路,TIIA-MSC可能促进小胶质细胞的功能状态从主要促炎向具有神经保护和修复特性转变。本研究系统揭示了TIIA-MSC通过TREM2/PI3K/Akt通路调节小胶质细胞表型转化并发挥抗神经炎症作用的分子机制,为扩大MSC在神经退行性疾病治疗中的应用提供了新思路和实验基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
TIIA预处理的间充质干细胞(TIIA-MSC)是否通过TREM2/PI3K/Akt通路减轻3×Tg-AD小鼠的神经炎症并改善认知功能?
核心机制
TIIA-MSC通过上调TREM2表达,激活下游PI3K/Akt信号通路,促进小胶质细胞从促炎表型向神经保护/修复表型转化,从而发挥抗神经炎症作用。
主要证据
体内实验显示TIIA-MSC改善3×Tg-AD小鼠认知功能、脑葡萄糖代谢、突触和线粒体结构,并降低Iba-1、GFAP阳性细胞及促炎因子水平;体外实验显示TIIA-MSC抑制LPS诱导的BV2细胞活化并降低促炎因子表达,而TREM2敲低可逆转此效应,WB证明PI3K/Akt通路磷酸化增加。
研究意义
为TIIA-MSC治疗神经退行性疾病(如AD)提供实验依据,并为其临床转化奠定基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外细胞培养与TIIA预处理

获得TIIA预处理的间充质干细胞(TIIA-MSC),并排除TIIA直接作用。

分离培养原代MSC,用12 µM TIIA预处理48小时,洗涤去除残余药物,获得TIIA-MSC。

2

体内实验:3×Tg-AD小鼠模型建立与移植

评估TIIA-MSC对3×Tg-AD小鼠认知功能及神经病理的影响。

6-7月龄3×Tg-AD小鼠尾静脉注射DPBS、MSC或TIIA-MSC(5×10⁵ cells),进行行为学测试、PET-CT成像及组织学分析。

3

体外实验:LPS诱导BV2细胞炎症模型及共培养

验证TIIA-MSC对LPS诱导的BV2小胶质细胞炎症反应的影响。

BV2细胞用1 µg/mL LPS处理24 h建立炎症模型,并与MSC或TIIA-MSC在Transwell系统中共培养24 h,检测炎症因子表达。

4

TREM2基因敲低验证

验证TREM2在TIIA-MSC抗炎作用中的必要性。

设计并筛选高效shRNA敲低BV2细胞TREM2表达,建立稳定敲低细胞系,再进行LPS诱导和TIIA-MSC共培养,检测炎症因子变化。

5

机制通路检测

探究TIIA-MSC是否通过TREM2/PI3K/Akt通路发挥抗炎作用。

通过Western blot检测TREM2、PI3K、p-PI3K、Akt、p-Akt蛋白表达,并分析p-PI3K/PI3K和p-Akt/Akt比值。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
完全培养基 T220121d501 + T220215H501ORICELL--
DMEM培养基----
胎牛血清PricellaSA220629
青霉素-链霉素----
丹参酮IIAMCE118393-10 mg
二甲基亚砜SolarbioD8371
异氟烷RWD--
聚乙烯亚胺----
聚凝胺----
抗Iba-1抗体Proteintech10904-1-AP
抗GFAP抗体Proteintech13483-1-AP
抗TREM2抗体AffinityDF12529
CY3标记的山羊抗兔IgG二抗----
DAPISigma-AldrichD9542
Triton X-100SolarbioT8200
绵羊血清ElabscienceE-IR-R323
抗iNOS抗体Proteintech18985-1-AP
抗Arg-1抗体Proteintech16001-1-AP
TRIzol试剂Takara9108
DEPC处理水LeageneNR0001
PrimeScript™ RT试剂盒TakaraRR037A
TB Green® Premix Ex Taq™ IITakaraRR820A
BCA蛋白定量试剂盒Solarbio--
PVDF膜Bio-Rad--
抗IL-1β抗体Abcamab234437
抗IL-6抗体Abcamab229381
抗TNF-α抗体Proteintech60291-1-Ig
抗PI3K抗体Proteintech20584-1-AP
抗p-PI3K抗体CST17366S
抗Akt抗体Proteintech20584-1-AP
抗p-Akt抗体CST4058S
抗GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
HRP标记二抗Beyotime--
ECL化学发光试剂盒Beyotime--
Philips Vereos PET扫描仪Philips--
18F-氟代脱氧葡萄糖----
日立HT7800透射电子显微镜Hitachi--
TopScan行为分析系统CleverSys--
ImageJ软件----
SPSS 29.0软件----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
体外细胞培养与TIIA预处理
MSC来源、培养条件、TIIA浓度和处理时间
阅读提示:见Materials and methods中的“Isolation and culture of primary MSC”和“Preparation of TIIA-MSC”
体内实验
小鼠品系、年龄、分组、细胞移植剂量和途径
阅读提示:见Materials and methods中的“Animals”和“Design of in vivo and in vitro experiments”
行为学测试
Y迷宫、新物体识别、高架十字迷宫、水迷宫的具体参数
阅读提示:见Materials and methods中的“Behavioral experiments”
体外炎症模型与共培养
LPS浓度、处理时间、共培养比例和时间
阅读提示:见Materials and methods中的“In vitro”部分
TREM2敲低
shRNA序列、MOI、感染时间和polybrene浓度
阅读提示:见Materials and methods中的“In vitro”部分和Table 1