验证PS修饰对Cas12a活性的抑制作用
评估完全PS修饰的激活剂对Cas12a激活和反式切割的影响,并探究抑制机制。
合成完全PS修饰的20nt激活剂S20,通过荧光实验检测Cas12a激活效率,通过PAGE检测反式切割抗性;通过熔解曲线和PAGE分析复合物结合;通过元动力学模拟比较SDNA和TDNA系统的构象变化。
A tailored phosphorothioate coordinator enables CRISPR/Cas in-situ amplification.
包含分子机制研究(突变体分析、元动力学模拟)、体外功能验证(荧光活性、PAGE)、细胞系原位成像以及临床FFPE样本验证等多层次证据。
LbCas12a 核酸酶 LwaCas13a 核酸酶 HeLa 细胞系(HPV18阳性) SiHa 细胞系(HPV16阳性) 宫颈癌 FFPE 组织样本
PS修饰模式:散布式(SmTn)与聚集式(S20-n)对Cas12a活性及反式切割抗性的影响 ST10-10探针序列与结构:线性、5nt z区(TTATT)、10nt x/y段、正向构型 反应缓冲液:1x Buffer 1(高盐)用于多重检测 ST10-10浓度80nM、与S-crRNA比例1:1、两步切割总时长50分钟(10+40分钟) 检测性能:Cas12a LOD 500 aM,Cas13a LOD 5 fM
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估完全PS修饰的激活剂对Cas12a激活和反式切割的影响,并探究抑制机制。
合成完全PS修饰的20nt激活剂S20,通过荧光实验检测Cas12a激活效率,通过PAGE检测反式切割抗性;通过熔解曲线和PAGE分析复合物结合;通过元动力学模拟比较SDNA和TDNA系统的构象变化。
通过调节PS修饰位点,平衡激活效率与反式切割抗性,以支持自催化系统。
设计聚集型(S20-n)和散布型(SmTn)PS激活剂,通过荧光实验和PAGE分析激活效率与抗性,并通过MD模拟和通道几何分析揭示结构基础。
利用设计的协调器探针实现Cas12a的指数扩增,并优化探针结构以提高信号与背景比。
设计STx-y探针,通过PAGE验证特异性切割,荧光实验确认切割产物激活Cas12a;优化z区长度、x/y长度、探针方向及浓度、比例、时间;最终评估检测HPV16 DNA的灵敏度。
验证散布PS策略是否适用于Cas13a,并建立基于Cas13a的指数扩增平台。
合成完全PS修饰的RNA激活剂‘S28和散布修饰的’S1T2,检测Cas13a激活和抗性;设计’ST14-14探针,建立SACA-Cas13a系统,优化条件并评估HPV16 RNA检测灵敏度。
评估SACA系统在固定细胞中同时检测HPV16和HPV18 mRNA的能力,并验证特异性。
采用TRC策略将HPV18 mRNA转化为DNA靶标;在均相反应中筛选缓冲液;在HeLa和SiHa细胞中进行原位成像;用RT-PCR验证mRNA表达;共成像区分混合细胞。
评估SACA系统在临床样本中检测HPV16/18 mRNA的适用性和准确性。
使用多重SACA系统检测20例宫颈癌FFPE样本中的HPV16/18 mRNA,并与临床病理诊断(p16/Ki-67表达)比较。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 试剂与材料 | LbCas12a核酸酶 | New England Biolabs | M0653T |
| 10x NEBuffer r2.1 | New England Biolabs | -- | |
| LwaCas13a | Novoprotein | E381 | |
| 10×反应缓冲液 | Novoprotein | -- | |
| 重组DNase I | Takara Biomedical Technology | -- | |
| S1核酸酶 | Takara Biomedical Technology | -- | |
| RNA酶抑制剂 | Takara Biomedical Technology | -- | |
| PrimeScript™ FAST RT 试剂盒 | Takara Biomedical Technology | -- | |
| Gibco胰蛋白酶-EDTA (0.25%) | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| DiI细胞标记液 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Invitrogen™ Platinum™ Taq DNA聚合酶 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| MEM培养基 | Procell system | -- | |
| DMEM培养基 | Procell system | -- | |
| 胎牛血清 | ExCell | -- | |
| 20x磷酸盐缓冲液 | Sangon Biotechnology | -- | |
| Triton X-100 | Biosharp Life Science | -- | |
| 4',6-二脒基-2-苯基吲哚 | Beyotime Institute of Biotechnology | -- | |
| RNA-Quick纯化试剂盒 | Shanghai Yishan Biotechnology | -- | |
| 细胞培养 | Siha细胞系 | Procell Life Science & Technology | CL-0210 |
| Hela细胞系 | Procell Life Science & Technology | CL-0101 | |
| C33A细胞系 | Procell Life Science & Technology | CL-0045 | |
| 荧光测量 | FS5荧光分光光度计 | Edinburgh Instruments | -- |
| 实时荧光信号采集 | 7500实时PCR系统 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| RT-PCR分析 | NanoDrop One分光光度计 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| QuantStudio实时PCR系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| PAGE分析 | BioRad电泳分析仪 | Bio-Rad | -- |
| 凝胶成像系统 | Bio-Rad Laboratories | -- | |
| 荧光成像 | 荧光显微镜 | Leica | -- |
| FFPE样本处理 | 杂交仪(SH2000) | -- | SH2000 |
| 元动力学模拟 | GROMACS 2023.5 | -- | -- |
| PLUMED 2.9.4 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| Cas12a抑制实验 | PS DNA浓度、Cas12a/crRNA浓度、D-FQ浓度、反应时间 阅读提示:Materials and methods 'Regulation of Cas12a activity by PS activator' |
| SACA-Cas12a系统 | ST10-10浓度(80 nM)、与S-crRNA比例(1:1)、两步切割时间(10+40 min)、靶标浓度(1 nM) 阅读提示:Materials and methods 'The development of SACA system' 及 Figure 3 legend |
| SACA-Cas13a系统 | ’ST14-14浓度(40 nM)、与’S-crRNA比例(1:1)、两步切割时间(10+40 min)、靶标浓度(1 nM) 阅读提示:Materials and methods 'The development of SACA system' 及 Figure 4 legend |
| 多重检测缓冲液 | 缓冲液类型(1x Buffer 1)及成分,避免Cas13a非特异性切割 阅读提示:Results 'SACA-based multiplex in fixed-cell situ imaging analysis' 及 Figure 5 legend |
| 细胞原位成像 | 细胞固定方法(甲醇:乙酸3:1)、透化条件(0.5% Triton X-100)、探针浓度、反应时间 阅读提示:Materials and methods 'Cell culture and pretreatment' 及 'In situ imaging of HPV 16/18 mRNA in fixed cervical cancer cells' |