生物信息学分析
筛选与肺腺癌患者生存显著相关的谷氨酰胺转运蛋白基因
利用GEPIA2和UALCAN数据库分析六种谷氨酰胺相关基因与LUAD和LUSC患者生存的相关性,并比较SLC38A2等在不同肿瘤中的表达。
Phosphoenolpyruvate carboxykinase 2 activation of the AMPK-CEBPB axis to enhance glutamine utilization to promote glycolysis and malignant behavior in adenocarcinomas cells under glucose deprivation.
研究包含体外细胞实验、临床组织样本检测及生物信息学分析,且进行了功能验证(如敲低/过表达)和机制验证(如双荧光素酶报告基因),但缺乏动物模型验证。
A549人非小细胞肺癌细胞系 10例NSCLC患者的肿瘤及癌旁组织
PCK2、SLC38A2和CEBPB的敲低/过表达慢病毒载体 葡萄糖剥夺条件(低糖培养基) 外源性谷氨酰胺补充 AMPK激活剂(AICAR)和抑制剂(Compound C)处理 双荧光素酶报告基因检测SLC38A2启动子活性
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
筛选与肺腺癌患者生存显著相关的谷氨酰胺转运蛋白基因
利用GEPIA2和UALCAN数据库分析六种谷氨酰胺相关基因与LUAD和LUSC患者生存的相关性,并比较SLC38A2等在不同肿瘤中的表达。
验证PCK2和SLC38A2在临床NSCLC组织中的表达。
通过Western blot和RT-qPCR检测10例NSCLC患者肿瘤组织和癌旁组织中PCK2与SLC38A2的mRNA和蛋白表达水平。
构建PCK2、SLC38A2和CEBPB的敲低和过表达稳定细胞系。
使用慢病毒载体感染A549细胞,并通过嘌呤霉素筛选稳定细胞系。
检测谷氨酰胺利用和糖酵解相关代谢物的变化。
在葡萄糖剥夺条件下,使用商业化试剂盒检测ATP、谷氨酰胺、谷氨酸、丙酮酸、乳酸和葡萄糖含量。
评估PCK2和SLC38A2对细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭的影响。
通过CCK-8、流式细胞术、Transwell和划痕实验检测细胞增殖、凋亡、侵袭和迁移能力。
探究PCK2是否通过AMPK-CEBPB轴调控SLC38A2。
使用AMPK激活剂AICAR、抑制剂Compound C处理,结合PCK2/CEBPB敲低或过表达,检测相关蛋白和mRNA表达,并通过双荧光素酶报告基因验证CEBPB对SLC38A2启动子的直接激活。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM基础培养基 | Invitrogen | -- |
| 胎牛血清 | Invitrogen | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 功能性实验 | CCK-8试剂盒 | Beyotime | -- |
| 凋亡检测 | Annexin V-FITC凋亡检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 代谢物检测 | 谷氨酰胺含量检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 谷氨酸含量检测试剂盒 | Beyotime | -- | |
| ATP含量检测试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 乳酸含量检测试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 葡萄糖含量检测试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 糖酵解检测 | 糖酵解试剂盒 | Abcam | -- |
| 双荧光素酶报告基因实验 | 双荧光素酶报告基因检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 药物处理 | 阿卡地辛(AICAR) | MCE | -- |
| Western blot | 抗PCK2抗体 | Abcam | -- |
| 抗SLC38A2抗体 | Abcam | -- | |
| 抗p-AMPK抗体 | Abcam | -- | |
| 抗CEBPB抗体 | Abcam | -- | |
| 抗p-CEBPB抗体 | Abclonal | -- | |
| 细胞培养 | L-谷氨酰胺 | Solarbio | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | -- | -- |
| 逆转录 | 第一链合成试剂盒 | -- | -- |
| RT-qPCR | SYBR qPCR预混液试剂盒 | -- | -- |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | -- | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | -- | -- | |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | -- | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | -- | -- | |
| 4-20% SDS-PAGE凝胶 | -- | -- | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| ECL检测试剂 | -- | -- | |
| 细胞培养 | 低糖培养基 | -- | -- |
| 慢病毒转染 | 嘌呤霉素 | -- | -- |
| 慢病毒载体 | tsingke | -- | |
| 划痕实验 | Image J软件 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 建立PCK2、SLC38A2和CEBPB敲低/过表达细胞系 | 慢病毒载体序列、感染复数、筛选浓度和稳定细胞系筛选周期,以及细胞培养条件(如葡萄糖浓度) 阅读提示:Methods 2.4 |
| 葡萄糖剥夺处理 | 低糖培养基的具体葡萄糖浓度,以及是否添加外源性谷氨酰胺及其浓度 阅读提示:Methods 2.3, Results 3.2 |
| 药物处理 | AICAR和Compound C的处理浓度及持续时间 阅读提示:Methods 2.1, Results 3.3 |
| 代谢物检测 | 细胞接种密度、培养时间、初始葡萄糖浓度、无乳酸培养基以及各检测试剂盒的具体操作步骤 阅读提示:Methods 2.11 |
| 恶性行为检测 | 细胞接种密度、划痕时间点(0h和24h)、Transwell孵育时间、凋亡染色和流式细胞仪设置 阅读提示:Methods 2.6-2.8 |
| 双荧光素酶报告基因 | SLC38A2启动子片段的具体范围、共转染质粒的剂量比例以及荧光素酶检测试剂盒的操作步骤 阅读提示:Methods 2.12 |