大鼠ADSCs的分离、培养与鉴定
获取并验证具有间充质干细胞特性的ADSCs。
采用胶原酶消化法从大鼠腹股沟脂肪组织分离ADSCs,并通过流式细胞术检测表面标志物(CD29、CD44、CD90阳性;CD34、CD45阴性),通过成骨、成脂、成软骨诱导分化验证多向分化能力。
Hypoxia-preconditioned adipose-derived stem cells with injectable small intestinal submucosa for enhanced cartilage repair in osteoarthritis.
包含ADSCs分离鉴定、复合物表征、体外细胞实验(IL-1β诱导软骨细胞)、体内大鼠OA模型、影像学、组织学及蛋白检测等多个独立证据层级,并进行了功能与机制验证。
大鼠ADSCs 大鼠原代软骨细胞 MIA诱导的大鼠OA模型
大鼠ADSCs分离培养条件及鉴定标志物 低氧预处理条件(2% O2)与时间(24h) SIS浓度(10 wt%)及细胞密度(1×10^6 cells/mL) IL-1β浓度(10 ng/mL)及处理时间(24h) MIA浓度(30 mg/mL)及注射体积(50 μL)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并验证具有间充质干细胞特性的ADSCs。
采用胶原酶消化法从大鼠腹股沟脂肪组织分离ADSCs,并通过流式细胞术检测表面标志物(CD29、CD44、CD90阳性;CD34、CD45阴性),通过成骨、成脂、成软骨诱导分化验证多向分化能力。
将低氧预处理或常氧培养的ADSCs与可注射SIS结合,并评估复合材料的细胞相容性。
将SIS粉末溶于完全培养基制成10 wt% SIS培养液,与ADSCs共培养24h(常氧或低氧)。通过活/死染色、SEM和CM-Dil标记观察细胞活力和分布。
评估低氧预处理对ADSCs干性、低氧适应、血管生成及上皮修复相关基因和生长因子分泌的影响。
通过RT-PCR检测NANOG、SOX-2、Oct-4、HIF-1α、HIF-2α、VEGF、bFGF、EGF的mRNA表达;通过ELISA检测SIS+ADSC(N)-CM和SIS+ADSC(H)-CM中VEGF、bFGF、EGF的分泌量。
评估SIS+ADSC复合材料条件培养基对IL-1β诱导的软骨细胞ECM合成与降解的影响。
使用IL-1β处理原代大鼠软骨细胞模拟OA炎症环境,随后分别用SIS+chondrocyte-CM、SIS+ADSC(N)-CM、SIS+ADSC(H)-CM处理,通过Western blot和免疫荧光检测ACAN、MMP13、ADAMTS5、IL-1β、Col2a的表达。
评估SIS+ADSC复合材料在体内的软骨修复效果及低氧预处理的作用。
通过关节内注射MIA诱导大鼠OA模型,1周后分别注射PBS、SIS、SIS+ADSC(N)、SIS+ADSC(H),每周一次,共4周。通过X-ray、Micro-CT、组织学染色及免疫组织化学评估软骨损伤程度和修复效果。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| ADSCs分离 | II型胶原酶 | -- | -- |
| ADSCs培养 | DMEM/F12培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| ADSCs鉴定(流式) | CD29-FITC | -- | -- |
| CD34-PE | -- | -- | |
| CD44-PE | -- | -- | |
| CD90-PECY7 | -- | -- | |
| CD45-A647 | -- | -- | |
| ADSCs鉴定(成骨分化) | 茜素红S染色液 | Pricella | -- |
| ADSCs鉴定(成脂分化) | 油红O染色 | OriCell | -- |
| ADSCs鉴定(成软骨分化) | 阿尔辛蓝 | OriCell | -- |
| SIS制备 | 冷冻干燥机 | Labconco | -- |
| 研磨机 | Jinxin | -- | |
| 胃蛋白酶 | -- | -- | |
| 乙酸 | -- | -- | |
| 细胞活力检测 | 活/死细胞染色试剂盒 | Abbkine | -- |
| 软骨细胞分离 | 胰蛋白酶 | -- | -- |
| RT-PCR | TRIZOL试剂 | Thermo Fisher | -- |
| RNA PCR试剂盒 | Life Technologies | -- | |
| ELISA | ELISA试剂盒 | Ray Biotech | -- |
| Western blotting | 裂解缓冲液 | Bimake | -- |
| 抗Aggrecan抗体 | Abcam | -- | |
| MMP13抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗ADAMTS5抗体 | Bioss | -- | |
| 抗IL-1β抗体 | Abcam | -- | |
| β-actin抗体 | Beyotime | -- | |
| HRP标记二抗 | Beyotime | -- | |
| ECL Western blot检测试剂盒 | EpiZyme | -- | |
| 免疫荧光 | Col2a一抗 | Proteintech | -- |
| MMP13一抗 | Proteintech | -- | |
| 山羊抗兔二抗(CoraLite488) | Proteintech | -- | |
| DAPI | Beyotime | -- | |
| 动物实验 | 异氟烷 | -- | -- |
| Micro-CT | SkyScan1276 | Bruke | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| ADSCs分离与培养 | 大鼠品系(SD)、年龄、性别、脂肪组织来源(腹股沟)、胶原酶浓度(0.2%)和时间(1h)、培养条件(DMEM/F12+10% FBS, 37°C, 5% CO2) 阅读提示:Methods 2.1 |
| SIS+ADSC复合物制备 | SIS浓度(10 wt%)、细胞密度(1×10^6 cells/mL)、培养时间(24h)、低氧条件(2% O2)、常氧条件(21% O2) 阅读提示:Methods 2.3 |
| 条件培养基制备 | ADSCs和软骨细胞的接种密度(1×10^6 cells/10cm皿)、SIS浓度(10 wt%)、处理时间(24h)、离心条件(4000 rpm, 10min, 4°C)、过滤孔径(0.22 μm) 阅读提示:Methods 2.6 |
| 体外细胞实验 | IL-1β浓度(10 ng/mL)和处理时间(24h)、CM处理时间(48h)、分组(control, IL-1β, SIS+chondrocyte-CM, SIS+ADSC(N)-CM, SIS+ADSC(H)-CM) 阅读提示:Methods 2.9 |
| 大鼠OA模型 | 大鼠品系(SD)、年龄(6周龄)、体重(200±20g)、性别(雄性)、MIA浓度(30 mg/mL)、注射体积(50 μL)、注射方式(关节内)、治疗频率(每周一次,共4周)、各组注射物(PBS, SIS, SIS+ADSC(N), SIS+ADSC(H)) 阅读提示:Methods 2.10 |