麦角硫因通过双重恢复类固醇生成和线粒体氧化还原稳态来挽救肥胖诱导的睾丸功能障碍

Ergothioneine rescues obesity-induced testicular dysfunction via dual restoration of steroidogenesis and mitochondrial redox homeostasis.

作者信息Xiaomin Li, Jiajing Lin, Man Wu, Feixue Han, Shuyan Chen, Hongfei Ke, Zhiying Huang, Tianwen Peng, Yu Lan, Xin Fu, You Che, Zhicong Chen, Geng An
PMID41719756
发布时间2026-04
DOI10.1016/j.redox.2026.104090

实验完整度

高

包含体内小鼠模型(HFD和ET补充)、体外细胞实验(TM3细胞系)、离体人睾丸组织培养,以及转录组学、代谢组学和蛋白质印迹等多种验证,涵盖功能、机制和转化验证。

主要模型

高脂饮食诱导的肥胖小鼠模型 TM3小鼠Leydig细胞系 离体人睾丸组织培养

重点核对

HFD喂养时长(9周vs14周)及饲料类型(D12492, 60% kcal来自脂肪) ET给药剂量(100 mg/kg/day,口服灌胃)及干预时间(8周) TM3细胞处理浓度(PA 20μM,ET 0.2和0.8mM) 人睾丸样本来源(BMI≥30的OAT患者)及培养条件 统计方法(Shapiro-Wilk正态性检验、单因素/双因素ANOVA及事后检验)

摘要

背景:尽管肥胖与男性生育能力下降密切相关,但驱动精子发生受损的特定睾丸代谢和氧化还原机制仍不清楚。方法:利用高脂饮食(HFD)小鼠模型,结合多组学分析、细胞实验和离体人睾丸培养,我们发现长期HFD喂养会逐渐破坏精子质量、生精小管结构和类固醇生成能力。结果:尽管睾丸重量不变,HFD显著降低了精子密度21.6%和活力44.9%。转录组学和代谢组学分析显示氧化磷酸化显著抑制和类固醇生成中间体耗竭。值得注意的是,麦角硫因(ET)被鉴定为在时间过程分析中唯一持续降低的代谢物,凸显其作为睾丸固有累积氧化应激生物标志物的潜力。ET补充(100mg/kg/天)显著恢复生精上皮组织并增加生精标志物的表达。功能上,ET通过降低脂质过氧化(TBARS水平降低1.5倍)和恢复抗氧化酶活性来减轻细胞内氧化负担。ET增强线粒体稳定性,保持线粒体膜电位(ΔΨm)并减少线粒体超氧化物(O2•−)的过量产生。机制上,ET重新激活Leydig细胞中经典的PKA-CREB-StAR信号级联,恢复雄激素生物合成(体内DHT增加1.3倍,P<0.01)。最后,离体人睾丸培养证实ET减轻氧化应激指标(荧光强度降低2.1倍)并增强睾酮释放1.4倍。结论:这些发现确立了进行性ET耗竭作为肥胖诱导的睾丸功能障碍的标志,并证明ET补充恢复了类固醇生成和线粒体氧化还原稳态,为抗氧化剂指导的男性不育干预提供了强有力的机制基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肥胖如何通过睾丸内在的代谢和氧化还原机制损害精子发生,以及补充麦角硫因(ET)能否恢复睾丸功能?
核心机制
ET通过重新激活Leydig细胞中PKA-CREB-StAR信号通路,恢复胆固醇转运至线粒体的过程,从而恢复类固醇生成;同时ET通过增强抗氧化酶活性、减少线粒体超氧化物产生和维持ΔΨm来稳定线粒体氧化还原稳态。
主要证据
体内HFD小鼠模型显示ET补充恢复精子质量和生精上皮结构,降低TBARS,恢复SOD和CAT活性;体外TM3细胞实验显示ET恢复PKA/CREB磷酸化和StAR表达,增加孕烯醇酮和睾酮分泌,并维持ΔΨm;离体人睾丸培养显示ET降低氧化应激并增加睾酮释放。
研究意义
本研究确立了进行性ET耗竭作为肥胖诱导睾丸功能障碍的生物标志物,并提出ET作为抗氧化剂辅助治疗肥胖相关男性不育的潜在治疗佐剂。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立HFD小鼠模型并评估生殖表型

验证高脂饮食是否导致肥胖并损害小鼠精子质量、生精结构和类固醇生成。

小鼠给予HFD(D12492)14周,测定体重、葡萄糖耐量、精子参数(CASA)、睾丸组织学(H&E)、生精评分(MTBS)、免疫组化(TNP1, γH2AX)及类固醇生成标志(HSD17B11)。

2

多组学分析揭示HFD睾丸代谢重编程

鉴定HFD引起的转录组和代谢组变化,特别是与类固醇生成和氧化还原相关的通路。

对睾丸组织进行RNA-seq和LC-MS/MS非靶向代谢组学分析,进行PCA、PLS-DA、火山图、GO富集、PPI网络和代谢物差异分析。

3

ET补充干预HFD小鼠模型

评估ET补充是否改善HFD小鼠的精子质量、生精结构和类固醇生成。

HFD小鼠给予ET(100mg/kg/天)灌胃8周,测定精子参数、组织学、免疫组化和DHT水平。

4

体外细胞实验验证PA诱导的脂毒性及ET保护

验证脂毒性(PA)对睾丸细胞系的毒性作用,以及ET的细胞保护作用。

用PA处理GC-1 spg, GC-2 spd, TM3, TM4细胞系,进行CCK-8细胞活力测定和BODIPY染色检测脂滴积累;TM3细胞用ET预处理后检测氧化应激、线粒体功能蛋白表达。

5

从分子层验证ET对线粒体和氧化还原稳态的保护作用

阐明ET对线粒体功能、氧化应激和抗氧化酶活性的影响。

检测睾丸组织TBARS、SOD、CAT活性;TM3细胞中DCF荧光、TMRE、MitoSOX、JC-1和MitoTracker染色;Western blot检测SOD2, GPX4, COX IV, TOMM20, Cytochrome c。

6

信号通路和类固醇生成功能验证

验证ET是否通过PKA-CREB-StAR通路恢复类固醇生成。

Western blot检测p-PKA, p-CREB, StAR;ELISA检测TM3细胞上清中孕烯醇酮和睾酮水平;小鼠睾丸DHT水平;人睾丸组织培养中睾酮分泌。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
D12492高脂饲料Research Diets Inc.--
麦角硫因Med Chem Express497-30-3
G-IVF PLUS培养基Vitro life10136
TM3 Leydig细胞系Wuhan ProcellCL-0234
DMEM/F12培养基----
棕榈酸Xi'an Kunchuang Technology Development Co., Ltd.--
CCK-8试剂盒TransGen BiotechR11011
Bodipy 493/503染料Beyotime BiotechnologyC2053S
睾酮ELISA试剂盒FineTestEU0400-HS
孕烯醇酮ELISA试剂盒FineTestEU0380
双氢睾酮ELISA试剂盒Sangon BiotechD751011
超氧化物歧化酶活性检测试剂盒Solarbio Science & TechnologyBC5165
过氧化氢酶活性检测试剂盒Solarbio Science & TechnologyBC0205
DCFH-DA探针Beyotime BiotechnologyS0033M
JC-1线粒体膜电位检测试剂盒Beyotime BiotechnologyC2003S
TMRE染料Thermo Fisher ScientificT669
Mito-Tracker Red CMXRos染料Beyotime BiotechnologyC1049B
MitoSOX Green线粒体超氧化物指示剂Thermo Fisher ScientificM36005
BCA蛋白定量试剂盒Thermo Fisher Scientific23227
GCM-H191培养基Procell Life Science & Technology Co., Ltd.--
氧化荧光检测试剂盒BestBio BiotechnologyBB-470538
RNA Nano 6000分析试剂盒Agilent Technologies--
Bioanalyzer 2100系统Agilent Technologies--
Vanquish超高效液相色谱系统Thermo Fisher--
Orbitrap Q Exactive HF质谱仪Thermo Fisher--
Orbitrap Q Exactive HF-X质谱仪Thermo Fisher--
Hypersil Gold色谱柱Thermo Fisher--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
HFD饲料成分(D12492, 60% kcal来自脂肪)、HFD喂养时长(9或14周)、ET给药方式(口服灌胃)、ET剂量(100 mg/kg/day)、干预持续时间(8周)、对照组(标准饮食)
阅读提示:Materials and methods 2.1 Animals and experimental design
细胞模型
TM3细胞系来源、培养条件(DMEM/F12, 5%马血清, 2.5%胎牛血清, 1%青链霉素)、PA处理浓度(20μM)、ET处理浓度(0.2和0.8mM)、预处理时间(24h)、处理时间(48h)
阅读提示:Materials and methods 2.6 Cell treatment
精子参数检测
检测设备(CASA系统)、培养基(HTF和G-IVF PLUS)、孵育时间(5min和15min)
阅读提示:Materials and methods 2.2 Sperm parameters measurement in mice
组织学分析
固定液(Bouin's fixative)、切片厚度(8μm)、染色(H&E)、MTBS评分标准(Johnsen's score)、GE厚度测量(20个曲细精管)
阅读提示:Materials and methods 2.3 Histological analyses
代谢组学分析
样本量(100mg)、提取液(80%甲醇)、色谱柱(Hypersil Gold, 100×2.1mm, 1.9μm)、梯度洗脱程序、质谱参数
阅读提示:Materials and methods 2.11 Analysis of metabolites using non-targeted metabolomics
氧化应激检测
SOD活性检测试剂盒(BC5165)、CAT检测试剂盒(BC0205)、TBARS检测试剂盒(BC0020)、蛋白浓度定量(BCA)
阅读提示:Materials and methods 2.12 Measurement of testicular antioxidant capacity and lipid peroxidation
线粒体功能评估
DCFH-DA浓度(10μM)、TMRE浓度(200nM)、MitoSOX浓度(5μM)、JC-1工作液制备(1:200)、MitoTracker浓度(100nM)、孵育时间(20或30min)
阅读提示:Materials and methods 2.15-2.18
类固醇生成检测
睾酮ELISA试剂盒(FineTest EU0400-HS)、孕烯醇酮ELISA试剂盒(EU0380)、DHT ELISA试剂盒(Sangon D751011)、标准曲线拟合(4-PL)
阅读提示:Materials and methods 2.9, 2.19, 2.20
人睾丸离体培养
样本来源(肥胖OAT患者,BMI≥30)、组织片段大小(2mm)、培养基(GCM-H191)、培养温度(34°C)、培养箱条件(5%CO2)、培养时间(48h换液)
阅读提示:Materials and methods 2.21 Human testicular tissue collection