脂肪量和肥胖相关蛋白通过抑制Myc的N6-甲基腺苷甲基化促进弥漫性大B细胞淋巴瘤的肿瘤发生和耐药性

Fat Mass and Obesity-Associated Protein Contributes to Tumorigenesis and Drug Resistance of Diffuse Large B-Cell Lymphoma by Suppressing N6-Methyladenosine Methylation of Myc.

作者信息Ting-Ting Lu, Jin-Hao Chen, Yan-Fang Wang, Xiao Wu, Hui-Yun Ni, Qiu-Rong Zhang
PMID41527993
发布时间2026-07
DOI10.1002/kjm2.70158

实验完整度

包含细胞功能验证、机制验证(RIP、MeRIP-qPCR、mRNA稳定性)和体内异种移植模型验证,证据层级独立且完整。

主要模型

OCI-Ly1细胞系 U2932细胞系 SU-DHL-8细胞系 NOD/SCID小鼠皮下异种移植模型

重点核对

FTO敲除和敲低对DLBCL细胞增殖和集落形成的影响 FTO过表达对依鲁替尼IC50的影响 FTO与Myc mRNA的直接结合及m6A修饰水平变化 Myc表达对FTO介导的增殖和耐药表型的恢复作用 体内异种移植模型中FTO对肿瘤生长和依鲁替尼耐药的影响

摘要

依鲁替尼耐药仍然是弥漫性大B细胞淋巴瘤(DLBCL)治疗的主要障碍。脂肪量和肥胖相关蛋白(FTO)通过调节N6-甲基腺苷(m6A)修饰参与耐药性;然而,FTO是否介导DLBCL中的依鲁替尼耐药尚不清楚。在本研究中,我们发现FTO表达在患者样本和DLBCL细胞系中显著上调。功能分析表明,FTO敲除或敲低抑制了细胞增殖和集落形成,而FTO过表达促进了肿瘤生长并增加了依鲁替尼半数抑制浓度。机制上,FTO直接结合骨髓细胞瘤癌基因(Myc)mRNA并去除m6A修饰,稳定Myc转录本并增强Myc蛋白表达。甲基化RNA免疫沉淀-定量聚合酶链反应证实,FTO敲除增加了Myc mRNA上的m6A富集,导致Myc稳定性降低。拯救实验表明,重新引入Myc部分恢复了FTO缺陷细胞的增殖和耐药表型。一致地,在异种移植模型中,FTO以部分依赖于Myc的方式促进肿瘤生长和依鲁替尼耐药。总之,FTO通过去甲基化Myc mRNA并稳定其表达来促进DLBCL进展和依鲁替尼耐药。这些发现强调了FTO-m6A-Myc轴作为克服DLBCL耐药性的潜在治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
FTO是否通过m6A去甲基化调节Myc表达,从而促进DLBCL肿瘤发生和依鲁替尼耐药?
核心机制
FTO直接结合Myc mRNA并去除m6A修饰,稳定Myc转录本并增强其蛋白表达,进而促进DLBCL进展和依鲁替尼耐药。
主要证据
在DLBCL细胞系和皮下异种移植模型中,FTO敲除或敲低抑制增殖和肿瘤生长,而FTO过表达增强增殖、增加依鲁替尼IC50并促进肿瘤生长;RIP和MeRIP-qPCR证实FTO结合Myc mRNA并调节其m6A水平;Myc拯救实验部分恢复FTO缺陷细胞的表型。
研究意义
FTO-m6A-Myc轴可能作为克服DLBCL依鲁替尼耐药的潜在治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

FTO表达水平分析

明确FTO在DLBCL中的表达情况及其临床相关性。

利用GEPIA数据库分析DLBCL患者样本中FTO的表达;通过RT-qPCR和Western blot检测DLBCL细胞系中FTO的表达水平。

2

FTO功能获得和缺失实验

验证FTO对DLBCL细胞增殖、集落形成和依鲁替尼敏感性的影响。

通过慢病毒转导FTO shRNA或过表达载体,检测细胞增殖(CCK-8)、集落形成和依鲁替尼IC50的变化。

3

机制验证:FTO与Myc的相互作用及m6A修饰

验证FTO是否直接结合Myc mRNA并调节其m6A修饰水平。

通过RIP检测FTO与Myc mRNA的结合;通过MeRIP-qPCR检测FTO敲低或过表达后Myc mRNA的m6A富集水平;通过mRNA稳定性实验(放线菌素D处理)检测Myc mRNA稳定性。

4

体内异种移植模型验证

验证FTO对体内肿瘤生长和依鲁替尼耐药的影响,以及Myc在其中的作用。

将稳定表达sgCon或sgFTO的OCI-Ly1细胞注射入NOD/SCID小鼠皮下;将表达LV-Con或LV-FTO的SU-DHL-8细胞注射入小鼠皮下,并给予依鲁替尼或安慰剂处理;通过肿瘤体积和重量评估FTO和Myc的作用。

5

Myc功能验证和表型拯救实验

验证FTO是否通过Myc依赖和非依赖途径发挥功能。

在SU-DHL-8细胞中敲低Myc(Myc-sh1)或过表达Myc(LV-Myc),检测细胞增殖、集落形成和依鲁替尼敏感性变化;在FTO过表达细胞中敲低Myc,观察表型变化;在体内验证Myc敲除和FTO过表达对肿瘤生长的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Iscove改良杜氏培养基Gibco12440053
RPMI-1640培养基Gibco11875093
胎牛血清Gibco10091148
青霉素-链霉素溶液ProcellPB180120
pLKO.1-puro慢病毒载体Addgene8453
pLVX-Puro慢病毒载体Clontech632164
lentiCRISPR v2载体Addgene52961
嘌呤霉素BeyotimeC0351
MolPure细胞RNA提取试剂盒Yeasen19231ES50
Hifair AdvanceFast第一链cDNA合成试剂盒Yeasen11149ES60
Hieff UNICON高级qPCR SYBR预混液Yeasen11185ES08
RIPA裂解液BeyotimeP0038
FTO抗体BeyotimeAF6936
Myc抗体GeneTexGTX628459
GAPDH抗体BeyotimeAF1186
HRP标记二抗BeyotimeA0208
化学发光检测试剂盒VazymeE422
CCK-8溶液Yeasen40203ES76
酶标仪Bio-TekSynergy
结晶紫BeyotimeC0121
倒置光学显微镜OlympusIX73
Annexin V-FITC/碘化丙啶凋亡检测试剂盒VazymeA211
FACScan流式细胞仪Becton Dickinson--
BersinBio RIP试剂盒BersinBioBes5101
抗FTO抗体Cell Signaling Technology14692
抗IgG抗体Abcamab6715
Magna MeRIP m6A试剂盒Millipore--
GraphPad Prism 8GraphPad Software--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源、培养基类型和血清浓度(FBS 10%或20%);青霉素-链霉素浓度。
阅读提示:Methods 2.2 Cell Culture
基因敲除和过表达
shRNA和sgRNA序列(见表S1);慢病毒载体(pLKO.1、pLVX、lentiCRISPR v2);嘌呤霉素浓度(1或2 μg/mL)和处理时间(3天)。
阅读提示:Methods 2.3 Plasmid Construction, Cell Transfection, and Lentiviral Infection; Table S1
细胞增殖和药物敏感性检测
细胞接种密度(5×10^3细胞/孔)、处理时间(0-72h)、依鲁替尼浓度梯度(0-32nM)和处理时间(24h);IC50计算方法。
阅读提示:Methods 2.6 Cell Counting Kit-8 Assay; Figure 2C
体内异种移植模型
小鼠品系(NOD/SCID)、性别、年龄、体重;细胞注射数量(1×10^7)和途径(皮下);依鲁替尼剂量(6 mg/kg/天)和给药途径(口服);肿瘤体积测量方法(每48h)和观察周期(4周)。
阅读提示:Methods 2.12 Experimental Animals; 2.13 Subcutaneous Xenograft Assay
FTO与Myc相互作用验证
RIP抗体(anti-FTO #14692, anti-IgG #ab6715);MeRIP试剂盒(Millipore);mRNA稳定性实验中的放线菌素D浓度(10 μg/mL)和时间点(0, 50, 100, 150min)。
阅读提示:Methods 2.9 RNA Immunoprecipitation; 2.10 MeRIP-qPCR Assay; 2.11 mRNA Stability Assay