数据收集与DRG表达分析
鉴定胆管癌中差异表达的DRGs,为后续分型和预后模型提供基础。
从E-MTAB-6389数据集提取基因表达数据,与正常组织比较,通过Wilcoxon检验筛选差异表达基因。
Exploring the role of disulfidptosis‑related signatures in immune microenvironment, prognosis and therapeutic strategies of cholangiocarcinoma.
包含生物信息学分析(差异表达、聚类、预后模型)和体外功能实验(siRNA敲低、CCK-8、克隆形成、划痕、Transwell、免疫荧光),但缺乏体内实验和临床样本验证。
胆管癌细胞系HuCCT1 胆管癌细胞系RBE 胆管癌细胞系HuH-28 正常人类肝内胆管上皮细胞(HiBEpiCs)
DRG表达数据来源于E-MTAB-6389队列(75例肿瘤,31例正常) 预后模型在TCGA-CHOL队列(35例)中验证 siRNA敲低CD109和EFNB2的效率通过RT-qPCR和Western blot验证 功能实验使用HuCCT1和RBE细胞,包括CCK-8、克隆形成、划痕和Transwell实验 免疫荧光实验使用BAY-876(10 μM)和TCEP(20 mM)处理6小时
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定胆管癌中差异表达的DRGs,为后续分型和预后模型提供基础。
从E-MTAB-6389数据集提取基因表达数据,与正常组织比较,通过Wilcoxon检验筛选差异表达基因。
根据DRG表达将患者分为不同亚型,评估其预后和生物学差异。
使用ConsensusClusterPlus进行无监督一致性聚类,确定最优k值。
构建并验证一个预测胆管癌患者生存的基因签名。
对亚型间差异表达基因进行单变量Cox回归,筛选预后相关基因,再通过LASSO回归构建风险评分模型。
比较不同亚型及风险组的免疫细胞浸润和免疫检查点表达。
使用CIBERSORT、ESTIMATE和ssGSEA评估免疫浸润,比较免疫检查点基因表达。
评估风险组间的化疗敏感性和突变谱差异。
使用pRRophetic预测IC50,比较风险组间差异;使用maftools分析突变。
验证CD109和EFNB2对胆管癌细胞增殖、迁移、侵袭及二硫键死亡的影响。
在HuCCT1和RBE细胞中敲低CD109和EFNB2,进行CCK-8、克隆形成、划痕、Transwell和F-actin免疫荧光实验。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | HyClone; Cytiva | -- |
| 胎牛血清 | Gibco; Thermo Fisher Scientific, Inc. | -- | |
| 细胞冻存液 | Beyotime Biotechnology | C0210 | |
| siRNA转染 | Opti-MEM培养基 | Gibco; Thermo Fisher Scientific, Inc. | -- |
| Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 13778150 | |
| DMEM培养基 | Gibco; Thermo Fisher Scientific Inc. | 11965-118 | |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Thermo Fisher Scientific, Inc. | -- |
| 逆转录酶 | Thermo Fisher Scientific, Inc. | -- | |
| BeyoFast SYBR Green qPCR预混液 | Beyotime Biotechnology | D7260 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime Biotechnology | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime Biotechnology | P0012 | |
| Bis-Tris凝胶 | GenScript | M00657 | |
| CD109抗体 | ABclonal Biotech Co., Ltd. | A23787 | |
| Ephrin B2多克隆抗体 | Proteintech Group, Inc. | 26533-1-AP | |
| HRP偶联二抗 | Cell Signaling Technology Inc. | 7074 | |
| GAPDH (D16H11)兔单克隆抗体(HRP偶联) | Cell Signaling Technology Inc. | 8884 | |
| CCK-8实验 | CCK-8溶液 | Beyotime Biotechnology | -- |
| F-actin免疫荧光 | BAY-876 | MedChemExpress | HY-100017 |
| 三(2-羧乙基)膦盐酸盐 | Sangon Biotech Co., Ltd. | A600974 | |
| Alexa Fluor 594标记鬼笔环肽 | Thermo Fisher Scientific Inc. | A12381 | |
| DAPI | MedChemExpress | HY-D0814 | |
| 抗荧光淬灭封片剂 | MedChemExpress | HY-K1042 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 数据收集与处理 | 训练集E-MTAB-6389(75例肿瘤,31例正常)和验证集TCGA-CHOL(35例)的基因表达数据来源及处理方式(RMA算法,log2转换) 阅读提示:Materials and methods, Data collection and processing |
| 分子亚型鉴定 | 无监督聚类参数(k=2),亚型分组(SubA和SubB) 阅读提示:Materials and methods, 和Results部分 |
| 预后特征构建 | LASSO回归系数,风险评分公式,最佳截断值(EMBL-EBI: 4.595; TCGA: 1.608) 阅读提示:Materials and methods, Identification of DRGs...; Results |
| 细胞培养 | 细胞系来源(HuCCT1, RBE, HuH-28, HiBEpiCs),培养基(RPMI-1640+10%FBS),培养条件(37°C, 5% CO2) 阅读提示:Materials and methods, Cell culture |
| siRNA敲低 | siRNA序列(表II),转染试剂(Lipofectamine RNAiMAX),siRNA浓度(100 pmol/µl),转染时间(6h) 阅读提示:Materials and methods, Small interfering (si)RNA transfection; Table II |
| 功能实验 | CCK-8检测时间点(0,24,48,72h),克隆形成细胞数(100细胞/皿),划痕实验细胞密度(5×10^5),Transwell细胞数(1×10^5),侵袭实验Matrigel包被 阅读提示:Materials and methods, Cell Counting Kit-8 assay; Cell cloning assay; Wound healing assay; Transwell assay |
| 二硫键死亡验证 | BAY-876浓度(10 μM或5 μM在figure legend),TCEP浓度(20 mM或1 μM在figure legend),处理时间(6h或24h),葡萄糖剥夺条件 阅读提示:Materials and methods, F-actin immunofluorescence staining; Figure 10 legend |