IRF4表达分析
验证IRF4在宫颈癌组织和细胞系中的表达水平及其与预后的关系。
使用转录组测序、TCGA数据库、q-PCR、Western blot和免疫组织化学检测IRF4在宫颈癌组织和细胞系中的表达。
IRF4 Enhances Radiosensitivity of Cervical Cancer by Inhibiting the PI3K/Akt/mTOR Pathway to Regulate Autophagy.
包含体外细胞功能实验、流式凋亡周期检测、克隆形成、自噬检测、体内异种移植瘤模型及转录组测序等多层级验证,并有机制验证。
宫颈癌细胞系Siha和HeLa BALB/c裸鼠异种移植瘤模型 宫颈癌患者组织样本
细胞系:Siha和HeLa细胞 IRF4过表达:Ad-IRF4腺病毒感染72小时 照射剂量:0、2、4、6、8 Gy,剂量率1.15 Gy/min 自噬调控:3-MA(自噬抑制剂)和雷帕霉素(自噬激活剂)处理 体内模型:Siha细胞皮下注射,5×10^6细胞/100μL PBS,局部照射8 Gy
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证IRF4在宫颈癌组织和细胞系中的表达水平及其与预后的关系。
使用转录组测序、TCGA数据库、q-PCR、Western blot和免疫组织化学检测IRF4在宫颈癌组织和细胞系中的表达。
评估IRF4过表达对宫颈癌细胞增殖、迁移、侵袭和放射敏感性的影响。
采用CCK-8、EdU、克隆形成、Transwell、划痕实验以及流式细胞术检测IRF4过表达对细胞行为和放射敏感性的影响。
验证IRF4过表达是否通过PI3K/Akt/mTOR通路激活自噬。
通过透射电镜观察自噬体,免疫荧光和Western blot检测自噬相关蛋白LC3、P62、Beclin-1,以及PI3K/Akt/mTOR通路蛋白的表达和磷酸化水平。
验证IRF4过表达在体内对肿瘤生长和放射敏感性的影响。
在裸鼠皮下接种稳定表达IRF4或对照的Siha细胞,建立异种移植瘤模型,给予局部照射和/或雷帕霉素治疗,监测肿瘤生长并分析肿瘤组织中相关蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | -- | -- |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 病毒感染 | Ad-IRF4腺病毒 | GeneChem | -- |
| Ad-NC腺病毒 | GeneChem | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | -- | -- |
| 细胞增殖检测 | EdU试剂盒 | RiboBio | -- |
| Hoechst 33342 | -- | -- | |
| 流式检测 | Annexin V-FITC | 上海翌圣生物科技有限公司 | -- |
| 碘化丙啶 | 上海翌圣生物科技有限公司 | -- | |
| 免疫荧光 | DAPI | Sigma Aldrich | -- |
| 蛋白质印迹 | RIPA裂解液 | Beyotime | P0013B |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | P0010S | |
| SDS-PAGE凝胶 | Beyotime | P0012A | |
| PVDF膜 | Millipore | IPVH00010 | |
| IRF4抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| LC3抗体 | Proteintech | 14600-1-Ig | |
| Beclin-1抗体 | Proteintech | 66665-1-Ig | |
| P62抗体 | Proteintech | 66184-1-Ig | |
| p-AKT抗体 | Proteintech | 80455-1-RR | |
| AKT抗体 | Abcam | ab8805 | |
| p-mTOR抗体 | Proteintech | 80596-1-RR | |
| mTOR抗体 | Abcam | ab109268 | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| 山羊抗兔二抗 | Beyotime | A0286 | |
| 山羊抗小鼠二抗 | Beyotime | A0277 | |
| 免疫组化 | 柠檬酸盐缓冲液 | -- | -- |
| DAB显色液 | -- | -- | |
| 药物处理 | 3-甲基腺嘌呤 | -- | -- |
| 雷帕霉素 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系:Siha和HeLa;培养基:RPMI 1640(Siha)或高糖DMEM(HeLa),添加10% FBS和100 U/mL青霉素-链霉素;培养条件:37°C,5% CO2 阅读提示:参见Materials and Methods 2.4 |
| 腺病毒感染和照射 | 腺病毒:Ad-IRF4和Ad-NC(GeneChem),感染72小时;照射:使用Rad Source Technologies直线加速器,剂量率1.15 Gy/min 阅读提示:参见Materials and Methods 2.4 |
| 细胞活力检测 | 细胞接种密度:3×10^3 cells/well(96孔板),8个平行孔;照射剂量:0、2、4、6、8 Gy;检测时间:照射后24、48、72小时;CCK-8孵育时间:2小时;OD测量:450 nm 阅读提示:参见Materials and Methods 2.5 |
| 克隆形成实验 | 细胞接种密度依据照射剂量调整:0 Gy: 1.5×10^3 cells/well;2 Gy: 3×10^3;4 Gy: 6×10^3;6 Gy: 8×10^3;8 Gy: 1×10^4;形成克隆时间:14天;克隆计数条件:≥50个细胞 阅读提示:参见Materials and Methods 2.6 |
| 流式凋亡检测 | 细胞密度:2×10^5 cells/ml;处理:照射0和6 Gy,48小时后检测 阅读提示:参见Materials and Methods 2.8 |
| 细胞周期检测 | 照射剂量:0和4 Gy,48小时后收集;固定:70%预冷乙醇,4°C过夜;PI染色后检测 阅读提示:参见Materials and Methods 2.8 |
| 免疫荧光 | 照射剂量:0和6 Gy,照射后0和6小时固定;抗体:IRF4抗体(1:400),FITC标记的二抗(1:1000) 阅读提示:参见Materials and Methods 2.9 |
| 蛋白质印迹 | 蛋白上样量:20 μg/孔;抗体浓度:IRF4 1:1000,LC3 1:1000,Beclin-1 1:1000,P62 1:1000,p-AKT 1:5000,AKT 1:1000,p-mTOR 1:10000,mTOR 1:5000,GAPDH 1:5000 阅读提示:参见Materials and Methods 2.10 |
| 体内动物实验 | 动物:5周龄雌性BALB/c裸鼠,体重18-22 g;细胞接种:Siha细胞5×10^6/100 μL PBS皮下注射;照射:8 Gy局部照射,在肿瘤体积约80 mm3时(接种后第5天)给予;肿瘤测量:每3天或4天 阅读提示:参见Materials and Methods 2.11 |
| 统计方法 | 两组比较:未配对双尾Student's t检验;多组比较:单因素方差分析及Tukey检验;体外实验5个生物学重复,体内每组3个生物学重复 阅读提示:参见Materials and Methods 2.12 |