MTPABP-Cl的合成与表征
获得并验证空间约束诱导发射荧光团MTPABP-Cl的化学结构。
通过多步有机合成制备MTPABP-Cl,并用NMR和质谱确认结构。
Steric confinement-induced emission probe for monitoring protein conformations in live cells.
包含多层级验证:体外光物理表征、分子动力学模拟、细胞模型(HEK293T、HeLa、HT22)、功能实验(KCl刺激、雷帕霉素诱导、BoNT/A处理)以及单分子追踪等。
HEK293T细胞 HeLa细胞 HT22小鼠海马神经元细胞
MTPABP-Cl浓度:5 μM,孵育30 min 雷帕霉素浓度:100 nM BoNT/A浓度:25 nM,处理时间1-24 h KCl刺激浓度:70 mM ZnCl2浓度:50 μM
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得并验证空间约束诱导发射荧光团MTPABP-Cl的化学结构。
通过多步有机合成制备MTPABP-Cl,并用NMR和质谱确认结构。
评估MTPABP-Cl的发射特性及空间约束诱导发射行为。
测量吸收和发射光谱,在DMSO/水混合物中测试荧光增强,并测量与HaloTag结合前后的PLQY。
验证空间约束诱导发射机制并预测MTPABP-Cl与HaloTag融合蛋白的结合模式。
进行分子对接(AutoDock)和MD模拟(GROMACS),分析RMSD、RMSF、Rg和SASA。
评估MTPABP-Cl与HaloTag蛋白的结合速率、标记效率及细胞毒性。
通过荧光强度测量、SDS-PAGE、SPR和CCK-8实验评估。
验证MTPABP-Cl在活细胞中对HaloTag融合蛋白的特异性标记及长期成像稳定性。
在HEK293T和HeLa细胞中表达不同的HaloTag融合蛋白(膜、胞质、核定位),用MTPABP-Cl标记后共聚焦成像;进行长时间成像评估荧光稳定性。
验证BIOSCE能否响应钙调蛋白(CaM)构象变化,以报告细胞内Ca²⁺波动。
在HEK293T和HT22细胞中表达SCECaMP(CaM与HaloTag融合),用MTPABP-Cl标记,并用70 mM KCl刺激诱发Ca²⁺瞬变,记录荧光变化。以GCaMP6s为对照。
验证BIOSCE能否以毫秒级分辨率监测雷帕霉素诱导的FKBP-FRB相互作用。
在HeLa细胞中共表达FKBP-Halo/FRB或FKBP/FRB-Halo,用MTPABP-Cl标记,加100 nM雷帕霉素刺激,进行实时荧光成像和FRAP实验。
验证BIOSCE能否追踪BoNT/A切割后SNAP25片段的动态分布和构象变化。
在HT22细胞中表达Halo_SNAP25或SNAP25_Halo融合蛋白,用MTPABP-Cl标记,并用25 nM BoNT/A处理,进行单粒子追踪和荧光成像,同时评估Zn²⁺的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 光谱测量 | MTPABP-Cl | -- | -- |
| PLQY测量 | 滨松量子产率光谱仪 (Quantaurus-QY, C11347) | Hamamatsu | C11347 |
| 分子对接 | AutoDock工具 (1.5.6) | Scripps Research | -- |
| LigPrep模块 (LigPrep, 2018) | Maestro | -- | |
| AutoDock-Vina (1.1.2) | -- | -- | |
| PyMOL (3.2) | -- | -- | |
| 分子动力学模拟 | GROMACS (2023.5) | -- | -- |
| 分子克隆 | FastPure无内毒素质粒小提试剂盒 | Vazyme | -- |
| UV5 Nano | Mettler Toledo | -- | |
| 蛋白表达与纯化 | Ni-NTA 6FF琼脂糖柱 | Sangon | -- |
| Amicon Ultra-30离心过滤器 | Merck | -- | |
| Omni-Easy™即用型BCA蛋白定量试剂盒 | -- | -- | |
| SPR | Reichert 2SPR仪器 | Reichert Technologies | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 低糖DMEM | -- | -- | |
| Opti-MEM | Gibco | -- | |
| 转染 | 脂质体3000 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 细胞活力 | CCK-8试剂盒 | -- | -- |
| 亚细胞定位 | Hoechst 33342染色液 | -- | -- |
| 尼康Eclipse Ti2-E倒置显微镜 | Nikon | -- | |
| 蛋白质印迹 | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| SNAP25抗体 | Cell Signaling Technologies | 5308, | |
| HRP标记的山羊抗兔IgG二抗 | Absin | abs20002, | |
| BeyoECL Plus化学发光试剂 | Beyotime | -- | |
| 抗GAPDH-HRP抗体 | Beyotime | P0971M, | |
| 流式细胞术 | BD FACSAria III流式细胞仪 | BD | -- |
| 单粒子追踪 | Fiji (ImageJ) 粒子追踪插件 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 光物理表征 | MTPABP-Cl浓度、溶剂体系(DMSO/水比例)、激发波长、发射波长、量子产率测量条件 阅读提示:Methods: 吸收和发射光谱测量、绝对PLQY测量 |
| 分子模拟 | PDB ID、力场、水模型、模拟时间、温度、压力 阅读提示:Methods: 分子对接、分子建模分析 |
| 体外标记 | HT蛋白浓度、MTPABP-Cl浓度范围、孵育时间、缓冲液(PBS)、温度(37°C) 阅读提示:Methods: SDS-PAGE分析、体外滴定 |
| 细胞培养与转染 | 细胞系(HEK293T、HeLa、HT22)、培养基、血清浓度、转染试剂(Lipofectamine 3000)、转染比例(DNA:lipo3000=2:7)、转染后培养时间 阅读提示:Methods: 细胞培养、瞬时转染 |
| 标记与成像 | MTPABP-Cl浓度(5 μM)、孵育时间(30 min)、洗涤条件(含1 μM HT蛋白的新鲜培养基)、激光波长(488 nm)、成像分辨率 阅读提示:Methods: 亚细胞定位、传感钙调蛋白构象变化、监测FKBP-FRB模型、追踪SNAP25 |
| 钙离子传感 | KCl浓度(70 mM)、流速(1 mL/min)、帧速率(4帧/秒) 阅读提示:Methods: 传感钙调蛋白构象变化 |
| FKBP-FRB相互作用 | 雷帕霉素浓度(100 nM)、帧速率(30帧/秒) 阅读提示:Methods: 监测FKBP-FRB模型 |
| BoNT/A处理 | BoNT/A浓度(25 nM)、处理时间(1-24 h)、ZnCl2浓度(50 μM) 阅读提示:Methods: 追踪SNAP25 mobility |
| FRAP | 激光功率(100%)、漂白区域、采集模式 阅读提示:Methods: FRAP |
| 单粒子追踪 | 轨迹长度(>30帧)、分析参数(半径、截止值) 阅读提示:Methods: 单粒子追踪 |