临床样本IL-22表达分析
验证IL-22在AE患者中的表达变化及其与疾病进展的相关性。
收集AE患者肝组织和血清,通过免疫组化和ELISA检测IL-22表达,并分析其与PNM分期的相关性。
IL-22-STAT3-CD155 axis in alveolar echinococcosis: a pivotal role in immune exhaustion and therapeutic potential.
包含临床患者样本、小鼠感染模型、体外共培养体系等多个证据层级,并进行了功能验证(rIL-22刺激/阻断)和机制验证(STAT3、CD155、CD8+ T细胞)。
AE患者肝组织及血清样本 E.m感染C57BL/6小鼠模型 RAW264.7巨噬细胞与AML12肝细胞共培养体系
E.m感染小鼠模型通过肝门静脉注射2000个原头节建立 rIL-22或rIL-22BP以0.5 mg/kg每周腹腔注射 巨噬细胞清除使用氯膦酸盐脂质体(100 μl/10 g体重) 体外共培养中PSCs与RAW264.7细胞比例为1:500 在1个月和3个月两个时间点评估病变和纤维化
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证IL-22在AE患者中的表达变化及其与疾病进展的相关性。
收集AE患者肝组织和血清,通过免疫组化和ELISA检测IL-22表达,并分析其与PNM分期的相关性。
评估IL-22在体内对E.m感染病理的影响。
建立E.m感染小鼠模型,给予rIL-22或rIL-22BP处理,检测肝脏病变、纤维化和血清转氨酶水平。
明确巨噬细胞是否为IL-22的主要来源。
使用氯膦酸盐脂质体清除E.m感染小鼠的巨噬细胞,检测肝组织和血清中IL-22水平。
验证巨噬细胞来源的IL-22对肝细胞CD155表达的调节作用。
将RAW264.7细胞与PSCs共培养,收集条件培养基处理AML12细胞,检测CD155表达。
阐明IL-22调节CD155表达的分子机制。
通过Western blotting和免疫组化检测IL-22RA1、STAT3、p-STAT3和CD155的表达。
评估IL-22阻断对CD8+ T细胞功能和免疫耗竭的影响。
通过免疫组化检测CD155、TIGIT和CD8的表达,分析免疫检查点和T细胞浸润。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 小鼠巨噬细胞系RAW264.7 | Procell Life Science & Technology Co., Ltd. | CL-0190 |
| 小鼠肝细胞系AML12 | Procell Life Science & Technology Co., Ltd. | CL-0602 | |
| 动物实验 | 重组IL-22蛋白 | -- | -- |
| 重组IL-22结合蛋白 | -- | -- | |
| 血清生化检测 | 谷丙转氨酶活性检测试剂盒 | Solarbio | BC1555 |
| 谷草转氨酶检测试剂盒 | Solarbio | BC1565 | |
| 流式细胞术 | 抗小鼠CD155-PE/Cy7抗体 | Biolegend | 131512 |
| Western blotting | RIPA裂解液 | Thermo Fisher | 87787 |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher | 23225 | |
| PVDF膜 | Millipore | IPVH00010 | |
| 抗IL-22RA1兔多克隆抗体 | Servicebio | GB11302-100 | |
| 抗STAT3兔多克隆抗体 | Servicebio | GB11176-100 | |
| 抗CD155兔多克隆抗体 | Proteintech | 31447 | |
| ELISA | IL-22 ELISA试剂盒 | Thermo Fisher | BMS2047 |
| IL-22 ELISA试剂盒 | Thermo Fisher | 88-7422-22 | |
| 人CD155/PVR ELISA试剂盒 | Thermo Fisher | EH79RB | |
| 组织染色 | 天狼星红染色 | Solarbio | G1472 |
| 免疫组化 | 柠檬酸盐缓冲液 | ZSGB-BIO | ZLI-9064 |
| 山羊血清 | ZSGB-BIO | ZLI-9056 | |
| 抗IL-22兔多克隆抗体 | Servicebio | GB11259-100 | |
| 抗IL-22RA1兔多克隆抗体 | Servicebio | GB11302-100 | |
| 抗STAT3兔多克隆抗体 | Servicebio | GB11176-100 | |
| 抗磷酸化STAT3兔多克隆抗体 | Servicebio | GB150001-100 | |
| 抗CD155兔多克隆抗体 | Proteintech | 31447 | |
| 抗TIGIT兔单克隆抗体 | Abcam | ab300073 | |
| 抗F4/80兔多克隆抗体 | Proteintech | 29414 | |
| 抗CD8α兔单克隆抗体 | Abcam | ab217344 | |
| HRP标记的山羊抗兔IgG | Abcam | ab6013 | |
| DAB底物试剂盒 | Abcam | ab64238 | |
| 流式细胞术 | BD FACSAria II流式细胞仪 | BD | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism 10 | GraphPad | -- |
| 图像分析 | Image-Pro Plus | Media Cybernetics | -- |
| ImageJ | -- | -- | |
| 流式分析 | FlowJo | Tree Star | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本收集 | 患者纳入标准(排除免疫抑制相关疾病)、WHO PNM分期分组、组织样本分类(CLT和DLT) 阅读提示:Methods: Clinical specimens, Table 1 |
| 小鼠感染模型 | C57BL/6小鼠周龄(7-8周)、性别(雌性)、感染剂量(2000个原头节/只)、注射途径(肝门静脉) 阅读提示:Methods: Experimental animals, In vivo experimental design |
| IL-22干预 | rIL-22和rIL-22BP剂量(0.5 mg/kg)、给药频率(每周)、给药途径(腹腔注射)、给药时间(感染后2周开始) 阅读提示:Methods: In vivo experimental design |
| 巨噬细胞清除 | 氯膦酸盐脂质体剂量(100 μl/10 g体重)、给药频率(每周)、持续时间(4周) 阅读提示:Methods: In vivo experimental design |
| 体外共培养 | RAW264.7与PSCs比例(1:500)、共培养时间(24小时)、条件培养基处理AML12细胞时间(48小时) 阅读提示:Methods: Co-culture assay with RAW264.7 and AML12 cells |